Amin, Aatif;Sarwar, Arslan;Saleem, Mushtaq A.;Latif, Zakia;Opella, Stanley J.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.29
no.2
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pp.274-282
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2019
Mercury-resistant ($Hg^R$) bacteria were isolated from heavy metal polluted wastewater and soil collected near to tanneries of district Kasur, Pakistan. Bacterial isolates AZ-1, AZ-2 and AZ-3 showed resistance up to $40{\mu}g/ml$ against mercuric chloride ($HgCl_2$). 16S rDNA ribotyping and phylogenetic analysis were performed for the characterization of selected isolates as Bacillus sp. AZ-1 (KT270477), Bacillus cereus AZ-2 (KT270478) and Bacillus cereus AZ-3 (KT270479). Phylogenetic relationship on the basis of merA nucleotide sequence confirmed 51-100% homology with the corresponding region of the merA gene of already reported mercury-resistant Gram-positive bacteria. The merE gene involved in the transportation of elemental mercury ($Hg^0$) via cell membrane was cloned for the first time into pHLV vector and transformed in overexpressed C43(DE3) E. coli cells. The recombinant plasmid (pHLMerE) was expressed and the native MerE protein was obtained after thrombin cleavage by size exclusion chromatography (SEC). The purification of fusion/recombinant and native protein MerE by Ni-NTA column, dialysis and fast protein liquid chromatography (FPLC/SEC) involved unfolding/refolding techniques. A small-scale reservoir of wastewater containing $30{\mu}g/ml$ of $HgCl_2$ was designed to check the detoxification ability of selected strains. It resulted in 83% detoxification of mercury by B. cereus AZ-2 and B. cereus AZ-3, and 76% detoxification by Bacillus sp. AZ-1 respectively (p < 0.05).
Two Gram positive bacterial strains, designated strain GC-1 and GC-4, were isolated from coastal seawater near Jeju Island in the Republic of Korea. The two strains were identified as members of the genus Bacillus, based on 16S rRNA gene sequencing and data for physiological characteristics analyses. A subtle difference in physiological and genotypical characteristics has led us to designate the strains GC-1 and GC-4. The strain GC-1 showed a 99.91% similarity in 16S rRNA gene sequencing with B. tequiliensis and B. subtilis subsp. inaquosorum and the strain GC-4 showed a 100% similarity in 16S rRNA gene sequencing with those of B. altitudinis, B. stratosphericus, and B. aerophilus. However, both strains exhibited different physiological and genotypical characteristics in many aspects from those of their phylogenetically closest neighbors listed above, which implies that genus Bacillus has diversified into various species during its evolutionary process.
A new Bacillus strain degrading starch, named Bacillus sp. UEB-S, was isolated from a southern Tunisian area. Amylase production using solid-state fermentation on millet, an inexpensive and available agro-resource, was investigated. Response surface methodology was applied to establish the relationship between enzyme production and four variables: inoculum size, moisture-to-millet ratio, temperature, and fermentation duration. The maximum enzyme activity recovered was 680 U/g of dry substrate when using $1.38{\times}10^9$ CFU/g as inoculation level, 5.6:1 (ml/g) as moisture ratio (86%), for 4 days of cultivation at $37^{\circ}C$, which was in perfect agreement with the predicted model value. Amylase was purified by Q-Sepharose anion-exchange and Sephacryl S-200 gel filtration chromatography with a 14-fold increase in specific activity. Its molecular mass was estimated at 130 kDa. The enzyme showed maximal activity at pH 5 and $70^{\circ}C$, and efficiently hydrolyzed starch to yield glucose and maltose as end products. The enzyme proved its efficiency for digesting raw cereal below gelatinization temperature and, hence, its potentiality to be used in industrial processes.
In order to develop an effective antifungal antibiotics, over 700 isolates of bacteria, mold and actinomytes were screened from soil, and LAM 97-44 were selected as a strain producing the strong antifungal antibiotics against Candida albicans. Morphological, cultural and physiological characteristics of LAM 97-44 were investigated for the indentification. The cell size of LAM 97-44 was $2{\sim}3{\times}1{\sim}1.5\;{\mu}m$, and the shape of spore was of ellipsoidal. As a carbon source, LAM 97-44 utilized fructose, glucose, glycerol, maltose and raffinose but did not utilize arabinose, cellulose and xylose. The fatty acids of the cells included various iso-type and anteiso-type. Conclusively, the strain LAM 97-44 was proved to be Bacillus subtilis.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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1986.12a
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pp.529.2-529
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1986
pSp-Si (1.6kbp) was originally found in pediococcus halophilus to be a cryptic multicopy-plasmid. Hoping that the plasmid can also replicate in Bacillus subtilis, protoplast transformation of strain 207-25 (recE) was performed using pSP-Sl onto which was added the marker of tmrB8 (on 4.9 kbp EcoRI fragment ) or tmrB+ (on 0.9 kbp xbaI fragment) gene. Though the tmrB8 gene can expres tunicamycin-resistance at the single copy state, and the tmrB+ gene exerts the resistance only at the multicopy state, we could not confirm the replication of pSP-Sl (tmrB8) or pSP-Sl(tmrB+) in B. subtilis. During the experiment, however, we unexpectedly found that the circularized 0.9 kbp xgaI fragment (tmrB+) itself, which had no replication origin, could transform strain 207-25 to tunicamycin-resistant by protoplast transformation. Southern hybridization analyses with tmrB+ and other probes revealed the integration of the fragment at a single copy state into a position other than the homologous tmrB gene. This recE independent integration of another tmrB+ gene into the chromosome may contribute to the tunicamycinresistance in the transformants.
Microbes in forest are very important due to not only to enhance soil fertility but also maintain a healthy ecosystem by supplying the energy available to living organisms by producing various kinds of enzymes related to degradation of lignocellulosic biomass. In order to isolate a lignocellulosic biomass degrading bacterial strain from the Jurassic park located in Gyeongnam National University of Science and Technology, We used the Luria-Bertani-Carboxymethyl cellulose (CMC) agar trypan blue method containing 0.4 % carboxymethyl cellulose and 0.01 % trypan blue. As a result, we isolated a bacterial strain showing both activity on the CMC and xylan. To identify the isolated strain, 16S rRNA sequencing and API kit analysis were used. The isolated strain turned out to belong to Bacillus species and then named Bacillus sp. GJY. In the CMC zymogram analysis, it showed that one active band of about 28kDa in size is present. Xylan zymogram analysis also showed to have one active band of about 25kDa in size. The optimal growth temperature of Bacillus sp. GJY was $37^{\circ}C$. The maximal activities of CMCase and xylanase were 12 hour after incubation. The optimal pH and temperature for CMCase were 5.0 and $40^{\circ}C$, respectively, whereas the optimal pH and temperature for xylanase was 4.0 and $40^{\circ}C$. Both activities for CMCase and xylanase showed to be thermally stable at 40and $50^{\circ}C$, while both activities rapidly decreased at over $60^{\circ}C$.
Alkaliphilic Bacillus sp. S-1 secretes a large amount (approximately 80% of total pullulanase activity) of an extracellular pullulanase (PUL-E). The pullulanase exists in two forms: a precursor form (PUL-I: $M_r$ 180,000), and a processed form (PUL-E: $M_r$ 140,000). Two forms were purified to homogeneity and their properties were compared. PUL-I was different in molecular weight, isoelectric point, $NH_2$-terminal amino acid sequence, and stabilities over pH and temperature ranges. The catalytic activities of PUL-I were also distinguishable in the $K_m$ and $V_{max}$ values for various substrates, and in the specific activity for pullulan hydrolysis. PUL-E showed 10-fold higher specific activities than PUL-I. However. PUL-I is immunologically identical to PUL-E, suggesting that PUL-I is initially synthesized and proteolytically processed to the mature form of PUL-E. Processing was inhibited by PMSF, but not by pepstatin, suggesting that some intracellular serine proteases could be responsible for processing of the PUL-I. PUL-I has a different conformational structure for antibody recognition from that of PUL-E. It is also postulated that the translocation of alkaline pullulanase(AP) in the bacterium possibly requires processing of the $NH_2$-terminal region of the AP protein. Processing of the precursor involves a conformational shift. resulting in a mature form. Therefore. precursor processing not only cleaves the signal peptide, but also induces conformational shift. allowing development of active form of the enzyme.
A bacterium producing pullulanase was from soil, and was identified Bacillus cereus and named as Bacillus cereus JK36. The optimal culture conditions for the efficident production of pullulanase from B. cereus JK36 was obtained by cultivating with the medium composed of 1% pullulan, 1% teast extract, 1% bactopeptone, 0.1% NaH$_{2}$PO$_{4}$, 2H$_{2}$O, 0.02% MgSO$_{4}$\ulcorner7H$_{2}$O at 40$\circ$C, initial pH 6.5 for 70 hours. Using the culture supernatant as crude enzyme, the optimal pH and temperature of the pullulanase of this strain were 6.5 and 50$\circ$C. In effect of pH and temperature on the stability of the enzyme, the enzyme was stable in the range of pH6.0$\sim$9.5 and up to 40$\circ$C, respectively. The hydrolysis product on pullulan was mainly maltotriose.
Bacterial strains showing the fibrinolytic activity were screened from Chungkook-jang and Natto (Japanese traditional soy food). The strains isolated from Natto revealed a high level of fibrinolytic activity, wherease nearly half of the isolates from Chungkook-jang did not show the relevant activity. However, one strain isolated from Chungkook-jang showed the highest fibrinolytic activity (1.84 plasmin unit), and subsequently identified as Bacillus species. The fibrinolytic strain was designated as Bacillus sp. CK 11-4.
Lee, Jae Pil;Shin, Eun-Sun;Cho, Min Yeol;Lee, Kyung-Dong;Kim, Hoon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.12
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pp.2036-2045
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2018
An endo-${\beta}$-1,4-glucanase gene, cel5L, was cloned using the shot-gun method from Bacillus sp.. The gene, which contained a predicted signal peptide, encoded a protein of 496 amino acid residues, and the molecular mass of the mature Cel5L was estimated to be 51.8 kDa. Cel5L contained a catalytic domain of glycoside hydrolase (GH) family 5 and a carbohydrate-binding module family 3 (CBM_3). Chromatography using HiTrap Q and CHT-II resulted in the isolation of two truncated forms corresponding to 50 (Cel5L-p50) and 35 kDa (Cel5L-p35, CBM_3-deleted form). Both enzymes were optimally active at pH 4.5 and $55^{\circ}C$, but had different half-lives of 4.0 and 22.8 min, respectively, at $70^{\circ}C$. The relative activities of Cel5L-p50 and Cel5L-p35 for barley ${\beta}$-glucan were 377.0 and 246.7%, respectively, compared to those for carboxymethyl-cellulose. The affinity and hydrolysis rate of pNPC by Cel5L-p35 were 1.7 and 3.3 times higher, respectively, than those by Cel5L-p50. Additions of each to a commercial enzyme set increased saccharification of pretreated rice straw powder by 17.5 and 21.0%, respectively. These results suggest CBM_3 is significantly contributing to thermostability, and to affinity and substrate specificity for small substrates, and that these two enzymes could be used as additives to enhance enzymatic saccharification.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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