Some of the physiological properties of Sp816 bacteriophage of Bacillus subtilis SNU816 were characterized. It could form plaques on either B. subtilis SNU816 or B. natto 8102, but not on any other bacillus strains investrgated. Its plaque morphology was circular with a diameter of less than 1.0mm and had a narrow halo surrounding the clear center. Its latent period was 34-36 min and had a burst size of 547. It was most stable at pH 6.0, and rapidly inactivated at $60^{\circ}C$ with a initial deaty rate of -0.216 $min^{-1}$. Host range, thermal inactivation rate at $60^{\circ}C$, pH stability, and UV sensitivity revealed that SP816 was quite different from any other phages investigated together but seemed to be rather related to B. natto phages.
A microbial strain having high keratinase activity was isolated from the soil of poultry factories of Gyeonggi or Chungcheong-do. The isolated strain was identified as Bacillus sp. based on its morphological and biochemical characteristics. In this study, the optimal conditions for the production of keratinase by this strain were investigated. The optimal medium composition for the keratinase production was determined to be 3.5% chicken feather as carbon source, 1.0% tryptone as organic nitrogen source, 1.0% $KNO_3$ as inorganic nitrogen source and 0.05% KCl, 0.05% $KH_2PO_4$, 0.03% $K_2HPO_4$ as mineral source and 0.01% yeast extract as growth factor. The optimal temperature and pH was $40^{\circ}C$ and 8.5 with shaking culture (200 rpm), respectively. The maximum keratinase production reached to 123 units/ml after 42 hr of cultivation under the optimal condition. When the hair was used as the sole carbon source, the maximum enzyme activity was 88 units/ml after 120 hr and in this case, the hair added in the medium was not degraded completely but got thinner than the control by 20%.
The characterization of a partially purified, cellulase-free, thermostable alkaline xylanase from thermoalkalophilic Bacillus sp. JB-99 was investigated. The xylanase production was the highest when birchwood xylan was added to a medium containing finely powdered rice bran, showing 4,826 IU$ml^-1$ of activity for 15 h of incubation. The partially purified xylanase exhibited an optimum temperature and pH at $70^C{\circ}$ and 10, respectively. The enzyme was stable at pH 5-11 at $50^C{\circ}$. The xylanase activity was strongly inhibited by $Hg^2+$, while dithiothreitol, cysteine, and ${\beta}$-mercaptoethanol enhanced the activity.
The functional characteristics of a ${\beta}$-cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) excreted from alkalophilic Bacillus sp. BL-31 that is highly specific for the intermolecular transglycosylation of bioflavonoids were investigated. The new ${\beta}$-CGTase showed high specificities for glycosyl acceptor bioflavonoids, including naringin, rutin, and hesperidin, and especially naringin. The transglycosylation of naringin into glycosyl naringin was then carried out under the conditions of 80 units of CGTase per gram of maltodextrin, 5 g/l of naringin, 25 g/l of maltodextrin, and 1 mM $Mn^{2+}$ ion at $40^{\circ}C$ for 6 h, resulting in a high conversion yield of 92.1%.
The NCS(Non-Cariogenicity Sugar) from Bacillus sp. S-1013 was purified by cold acetone and methanol precipitation, and DEAE-cellulose ion-exchange and Sephadex G-100 column chromatographies, to yield an amorphous yellow syrup. The melting point and $[\alpha]_D^{20}$ were 155-$157^{\circ}C$ and +53, respectively. Instrumental analyses such as FT-IR, $^1H-NMR, and ^{13}C-NMR$ showed that the NCS contained an O-H group, C-H, C=O, $NH_2$, anomeric carbon, anomeric proton, N-acetylgalactose, fucose, and neuramic acid, thus, the NCS was determined to be a trisaccharide of Fuc($1\longrightarrow4$)GalNAc($2\longrightarrow6$) NeuAc.
A bacterial strain, designated as WY22, producing extracellular chitinase was isolated from the soil around the Youngduck area, after enrichment culture in a medium containing $1{\%}$ (w/v) wet colloidal chitin as a sole carbon source. The isolate was identified as a strain of Bacillus sp. based on its morphological and physiological characteristics. It was observed that Bacillus sp. WY22 could inhibit the growth of Fusarium oxysporum with hyphal extention-inhibition assay on potato dextrose agar plate supplemented with $1{\%}$ collidal chitin. Optimum culture conditions of Bacillus sp. WY22 were examined for chitinase production in a chitin medium. High level production of chitinase was observed not only in the chitin medium but in a medium supplemented with $1{\%}$ N-glucosamine or lactose instead of chitin. The optimum concentrations of colloidal chitin and yeast extract were 3.0 and $0.5{\%}$, and the optimum culture conditions for initial pH of medium and temperature were 7.0 and $30^{\circ}C$, respectively, for the production of chitinase.
The complete nucleotide sequence of alkalophilic Bacillus sp. K-17 $\beta$-xylosidase gene and its flanking regions were established. A 1263-bp of an open reading frame for $\beta$-xylosidase was observed. The molecular weight (50, 521 dalton), deduced from the nucleotide sequence of $\beta$-xylosidase gene, agreed with the result obtained by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis of the purified enzyme (51, 000 dalton). The Shine-Dalgarno sequence, 5'-GAGGAGG-3', was found 8 bp upstream of the initiation codon ATG. The -10 sequence (TAAAAT) in the promoter region for $\beta$-xylosidase gene was similar to the consensus sequence for Bacillus subtilis RNA polymerase, whereas the -35 sequence (TCGATCA) different from all the known -35 regions in the promoter for Bacillus subtilis RNA polymerase.
We isolated a bacterium which produces antifungal substances from the Lake of Saimaa soils in Fin-land. The isolated strain was identified as Bacillus sp. and shown a strong antifungal activity on plant pathogenic fungi. Bacillus sp. KMU-1011 produced maximum level of antifungal substances under incubation aerobically at $24^{\circ}C$ for 48 hours in nutrient broth containing 1.0% glucose and 1.0% polypeptone at 180 rpm and initiated pH adjusted to 6.0. Precipitate of culture broth by $30{\sim}60%$ ammonium sulfate precipitation exhibited strong antifungal activity against Botrytis cinerea KACC 40573 by dry cell weight. Chloroform extract of cultured broth also shown fungal growth inhibitory activity against C. gloeosporioides KACC 40804, D. bryoniae KACC 40669, F. oxysporum KACC 40037, F. oxysporum KACC 40052, F. oxysporum f. sp. radicis-lycopersici KACC 40537, F. oxysporum KACC 40902, M. cannonballus KACC 40940, P. cambivora KACC 40160, R. solani AG-1 KACC 40101, R. solani AG-4 KACC 40142, and S. scleotiorum KACC by agar diffusion method.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.27
no.1
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pp.51-56
/
1998
A bacteium, KP-6408, capable of hydrolyzing fibrin was isolated from Chungkook-jang, which was possibly identified as a strain of Bacillus sp. The effects of culture condition and medium composition on the enzyme production were investigated. Among nitrogen sources tested, yeast extract was the most effective for the enzyme production, and the level of the concentration for the optimal enzyme production was 0.2%(w/v). For carbon sources, glucose was the best for the enzyme production with the level of 2.0%(w/v). The enzyme was maximally produced by cultivating the enzyme production with the level of 2.0%(w/v). The enzyme was maximally produced by cultivating the organism at the liquid medium of the initial pH 8.0 and temperature of 4$0^{\circ}C$. In Chungkook-jang fermentation, the enzyme was maximally produced when incubated at 35$^{\circ}C$ for 24 hrs using soybean as a solid medium. The addition of various rice starch to the soybean in Chungkook-jang fermentation lowered the enzyme production.
The present study isolated seven different kinds of probiotics from various food sources and identified them with Bacillus sp. and Lactobacillus sp. by 16S rDNA sequencing. Their supernatants were prepared after a 24 hr culture, and their effects on nitric oxide (NO) production in mouse RAW 264.7 cells were investigated. Among the treated samples, the culture supernatants of two strains (Bacillus sp. FG-1 and Lactobacillus sp. FG-6) significantly decreased NO production in LPS-activated RAW 264.7 cells. Moreover, they dramatically reduced the expression of pro-inflammatory genes such as COX-2, iNOS, and TNF-α. To examine whether exopolysaccharide (EPS) is responsible for the anti-inflammatory effects of probiotics, EPS was purified from the culture supernatants of Bacillus sp. FG-1 and Lactobacillus sp. FG-6 strains. The EPS treatment produced by FG-1 and FG-6 strains decreased NO production in a dose-dependent manner in LPS-stimulated RAW 264.7 cells without affecting cell viability, while also reducing pro-inflammatory gene expression. Overall, these results suggest that EPS might be one of the key molecules responsible for the anti-inflammatory effects of probiotics.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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