Park, Jin-Chul;Yoo, Ji-Hyun;Cha, Jae-Young;Kim, Min-Seok;Cho, Young-Su
Applied Biological Chemistry
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v.47
no.4
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pp.373-378
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2004
In this study, established soil-borne Bacillus sp. FF-9 with strong antifungal activity was isolated for identification and to determine optimal culture condition. By using 16s rDNA sequencing method, FF-9 of the selected bacteria was identified as genus Bacillus sp., Bacillus sp. FF-9 was cultured at $30^{\circ}C$, for 24 h in the LB medium. Cell growth increased quickly after 6 h and the highest cell growth was indicated at 12 h. The most antifungal activity against Rhizoctoina solani AGII-II appeared at 18 h and the optimal temperature and pH were 30 and pH 8.0, respectively. A testing of carbon and nitrogen sources showed the highest antifungal activity at 1% lactose and 1% yeast extract Furthermore an addition of salt showed the most antibiotic activity in the 0.15% $K_2HPO_4$.
A bacterial strain capable of producing high level of extracellular xylanase was isolated from soil. The characteristics of the isolated strain No.236 were identified to be Bacillus stearothermophilus. The maximal xylanase production was observed in the medium containing 0.75% xylan, 0.35% yeast extract, 1.06% $K_2$HPO$_4$and 0.05% CaCO$_3$with initial pH of 6.5 when the strain was cultured at 5$0^{\circ}C$ for 28 hrs with reciprocal shaking. Hydrolysis of xylan by the xylanase revealed that xylose was the only product of the reaction. This suggested that the enzyme produced by Bacillus stearothermophilus No. 236 was an exe-acting xylanase.
A chitosanase-producing bacteria was isolated on chitosan agar plate from soil samples. The strain was spore-forming gram positive bacteria, catalase positive, and rod shape. The strain was identified as Bacillus cereus. The strain did not need an inducer for the synthesis of chitosanase. Chitosanase from Bacillus sp. HW-002 was constitutive enzyme. The optimal medium for the production of the enzyme was composed of 0.5$\%$ sucrose and $1.5\%$ yeast extract-tryptone (1:1 w/w) mixture at pH 6.5. After Bacillus sp. HW-002 was cultivated at $32^{\circ}C$ for 32 h, maximal productivity was gained to be about 27, 200 U/l. Chitosanase from Bacillus sp. HW-002 was a mixed growth-linked metabolite.
Bacillus cereus BS229 was identified as a bacteriocin producer with a bactericidal activity against Bacillus thuringiensis subsp. Thomsoni BR-40. Bacillus cereus BS229 and cerein BS229, named tentatively as the bacteriocin produced by Bacillus cereus BS229, showed a narrow spectrum of actibity against Gram-positive and Gram-negative bacteria, along with yeast and molds. Production of cerein BS229 in a 5-1 fermenter followed typical kinetics of primary metabolite synthesis. The antibacterial activity of cerein BS229 on sensitive indicator cells disappeared completely by ${\alpha}-chmotrypsin$ or proteinase K, which indicates its proteinaceous nature. Cerein BS229 seemed to be very stable throughout the pH range of 2.0 of 9.0 and it was relatively heat labile, despite the fact that bacteriocin activity was still detected after being boied for 30min. Cerein BS229 actibity has been changed with some of the organic solvents such as toluene, ethanol, and chloroform. Direct detection of cerein BS229 actibity on SDS-PAGE suggested that it had an apparent molecular mass of about 8.2 kDa.
Subtilisin (EC 3.4.21.14) is the major extracellular alkaline serine protease of Bacillus species. Previously, we found that subtilisins did not migrate in the electrophoretic field in the Laemmili buffer system due to their high pI values (over 8.8); however, it formed a 'binding mode' at the top of the separating gel [5]. Utilizing this characteristic, four subtilisins from Bacillus sp. strains (e.g., B. subtilis 168, B. subtilis KCTC 1021, B. amyloliquefaciens KCTC 3002, and Bacillus sp. DJ-1 and DJ-4) were easily and quickly identified by an over-running electrophoretic technique with a miniscale culture supernatant (less than 20 ml) without any column chromatographic steps. Two subtilisins (DJ-l and a recombinant version) from Bacillus sp. DJ-l were characterized, and the enzymatic properties were determined by SDS-fibrin zymography and densitometric analysis. Based on this observation, the recombinant pro-subtilisin DJ-l showed the same 'binding mode,' similar to native subtilisin DJ-l. On the other hand, mature subtilisin DJ -1 without pro-peptide showed no enzymatic activity.
Hong, Sun Hwa;Kim, Ji Seul;Sim, Jun Gyu;Lee, Eun Young
Korean Journal of Soil Science and Fertilizer
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v.48
no.1
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pp.36-43
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2015
Excess use of chemical fertilizer causes soil acidification and accumulation of salt, and thus might bring to desertification of soil. To overcome this problem, it needs limited usage of chemical fertilizer and increased usage of natural fertilizer as an alternative. In this study, dry soil-borne Bacillus sp. SHL-3, which was isolated from arid and barren soil, with plant growth promoting activity was isolated for identification and to determine optimal culture condition. A bacterial strain SHL-3 had the IAA productivity ($5.16{\pm}0.10mg\;L^{-1}$), ACC deaminase activity ($0.36{\pm}0.09$ at 51 hours) and siderophore synthesis. It was identified as genus Bacillus sp.. Also, optimal culture condition of SHL-3 were $20^{\circ}C$ and pH 7 in LB medium. Bacillus sp. SHL-3 had up to 4% salt tolerance in the medium. We evaluated the plant growth promotion ability of SHL-3 using yam (Dioscorea japonica Thunb.). As a result, Bacillus sp. SHL-3 was effective on the increase of the shoot length (202.4% increase for 91 days). These results indicate that Bacillus sp. SHL-3 can serve as a promising microbial resource for the biofertilizers of soil.
In 2015, Bacillus paralicheniformis was separated from B. licheniformis on the basis of phylogenomic and phylogenetic studies, and urease activity was reported as a phenotypic property that differentiates between the two species. Subsequently, we have found that the urease activity of B. paralicheniformis is strain-specific, and does not reliably discriminate between species, as strains having the same urease gene cluster were identified in B. licheniformis and B. sonorensis, the closest relatives of B. paralicheniformis. We developed a multilocus sequence typing scheme using eight housekeeping genes, adk, ccpA, glpF, gmk, ilvD, pur, spo0A, and tpi to clearly identify B. paralicheniformis from closely related Bacillus species and to find a molecular marker for the rapid identification of B. paralicheniformis. The scheme differentiated 33 B. paralicheniformis strains from 90 strains formerly identified as B. licheniformis. Among the eight housekeeping genes, spo0A possesses appropriate polymorphic sites for the design of a B. paralichenofomis-specific PCR primer set. The primer set designed in this study perfectly separated B. paralicheniformis from B. licheniformis and B. sonorensis.
The objective of this study was to identify the fermentation characteristics of Bacillus thuringiensis and emetic, non-emetic Bacillus cereus using analytical profile index (API) test. Ten strains of B. thuringiensis and 10 strains of B. cereus including 3 strains of emetic type were used at the same concentrations. The differences of fermentation characteristics between the B. thuringiensis and B. cereus was not obvious, but the differences between the non-emetic and emetic B. cereus were distinctive. Seven among 50 substrates were negative for all non-emetic B. cereus strains and positive for all emetic strains, and three substrates among additional 12 substrates had the same tendency. From these differences, 3 emetic B. cereus strains were not indicated as B. cereus by API test. These results indicate that API test is not a suitable method to identify some strains of emetic B. cereus, and the distinctive differences in substrate utilization can be used to improve selective media.
In order to screen the antagonistic bacteria which inhibit the growth of the apple pathogen, Penicillum expansum, we isolated an effective bacterial strain and investigated into the antifungal activity of the antagonist and it's identification. The eleven strains of bacteria which strongly inhibited P. expansum were isolated from the nature, and the best antagonistic bacterial strain designated as CH142, was selected. The antagonistic strain CH142 was identified to be the genus Bacillus subtilis based on morphological and biochemical characterization. The CH142 showed 55.9% of antifungal activity against the growth of P. expansum. By the treatment of the culture broth and the heat treated culture filtrate of it, the B. subtilis CH142 showed 90% and 15% of antifungal activity, respectively.
A bacterium producing the extracellular xylanase was isolated from soil and has been identified as a Bacillus sp. strain. The isolate, named Bacillus sp. AMX-4, was shown to be similar to B. subtilis strain on the basis of its chemical compositions. The xylanase of culture supernatant was most active at 50℃ and pH 6.0. The additional carbon sources including monosaccharides, disaccharides, wheat bran, and rice straw increased the enzyme productivity. Especially, the maximum xylanase productivity was reached 29.2 units/ml in LB medium supplemented with 1.5% (w/v) xylose, which was 16-folds more than that in LB medium. As the results of investigating the effects of xylose on cell growth and xylanase productivity of Bacillus sp. AMX-4, increase of xylanase production was owing to the induction of xylanase biosynthesis. It was also found that the enzyme production was in association with the growth of Bacillus sp. AMX-4.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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