$TiO_2$ photocatalyst has been known to exhibit a notable disinfecting activity against a broad spectrum of microorganisms. A lot of commercial $TiO_2$ photocatalyst products have been developed for antimicrobial purposes. However, a standard method has not yet been proposed for use in testing antimicrobial activity. In this study, we developed a $TiO_2$ photocatalytic adhesion test method with film as the standard testing method for the evaluation of antimicrobial activity. This method was devised by modifying the previous antimicrobial products test method, which has been widely used, and considering the characteristics of $TiO_2$ photocatalytic reaction. The apparatus for testing the antimicrobial activity was composed of a Black Light Blue (BLB) lamp as UV-A light source, a Petri dish as the cover material, and a polypropylene film as the adhesion film. The standard $TiO_2$ photocatalyst sample, Degussa P25 $TiO_2$ - coated glass, could only be used once. The optimal initial concentration of the microorganism, proper light intensity, and light irradiation time were determined to be $10^6$ CFU/mL, 1.0 mW/$cm^2$, and 3 hr, respectively, for testing and evaluating antimicrobial activity on the $TiO_2$ surface.
The antibacterial activity of a antimicrobial (organic synthetic or organic natural material) on the bacteria (Bacillus megaterium, Arthrobacter oxydans, Micrococcus luteus, Methylobacterium aquaticum) detected in the automobiles showed 99.9% bacteria decrease rate within 30 min of being in contact with the tested bacteria culture. The MIC of the organic synthetic material based antimicrobials and the organic natural material based antimicrobial on the bacteria were 31~500 mg/mL and 8~250 mg/mL, respectively. The bacteria and biofilms were formed on the surface of aluminum after 5 ~8 days in the case of addition of the organic synthetic material based antimicrobial to the MIC values for the tested bacteria culture. On the other hand, there was no proliferation of bacteria and formation of biofilms on the surface of aluminum even after 30 days in the case of addition of the organic natural material based antimicrobial to the MIC values for the tested bacteria culture. As a result, the organic natural material based antimicrobial was confirmed to be more excellent effect of inhibition of bacterial proliferation and restraint of biofilms formation than the organic synthetic material based antimicrobial.
There are several methods currently being used to diagnose tuberculosis in patients, such as smear, PCR, tuberculosis culture and X-ray. For a proper medical treatment, antimicrobial susceptibility test and rapid drug susceptibility testing have been operated. Tuberculosis bacilli usually need 3~8 weeks of culture period because of delay in RNA synthesis and require 15~22 hours for generation. After a germ raises in culture, we initiated antimicrobial susceptibility test for a proper treatment. It has some difficulties to give a proper prescription for a tuberculosis patient because antimicrobial susceptibility test requires 4 weeks. To supplement this, we are practicing drug susceptibility testing which allow us to know the sensibility of RMP and INH after 2 or 3 days. But this is only possible when more than 2 positive germ. Therefore, we should practice rapid drug susceptibility testing with culture test. But if media is contaminated by other germs except Mycobacterium tuberculosis, it's hard to interpret result about culture test and to practice antimicrobial susceptibility test and rapid drug susceptibility testing. Because we have to practice again smear, culture test after extracting specimen from the patient, time is consumed and proper patient treatment is postponed. To address these problems and quick patient treatment, rapid drug susceptibility testing is practiced by using GenoType$^{(R)}$ MTDRplus method. As a result of this method we detected sensibility 10 and 7 cases and resistance 0 and 3 cases using RIM and INH respectively with other 1 case toward medicals out of the total 11 test. In conclusion rapid drug susceptibility testing can be used from the contaminated specimen after elimination of contaminated source from culture and proved that it can be practiced for rapid examination of a tuberculosis patient.
A new method for antimicrobial susceptibility testing of vitro-cultured bacteria on an ordinary fluorescence spectrometer was developed. The viable bacteria reduced 3-(4,5 dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl tetrazolium bromide (MTT) to produce insoluble particles that displayed intense resonance scattering light. The assay showed a linear relationship between the number of viable bacteria and the intensity of resonance scattering light. Dead bacteria were unable to reduce MTT. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus exposed to flavonoids from Marchantia convoluta showed a flavonoids concentration-dependent inhibition of the ability to reduce MTT. In the assay, less than 12 h was required to attain susceptibility results and fewer bacteria were utilized than in traditional methods. The RLS technique could, in combination with the MTT assay, be a rapid and sensitive measuring method to determine the in vitro activity of new antimicrobials.
In this study, we conducted to the development of a rapid antimicrobial susceptibility test method using WST-1 which is known to water-soluble tetrazolium salt, in order to rapidly response against bacterial diseases in fish. Eight of antibiotics which are permissioned for marine organism from government were used to rapid antimicrobial susceptibility testing using the WST-1. As a result, a similar tendency was verified compare to conventional antibiotic susceptibility test results. Generally, the antibiotic susceptibility test method required about 3 days (72 hours) for determine the effective antibiotics, however, we have confirmed that the our method using WST-1 was required at least 36 hours in this study. Consequentially, our method will contribute to development of rapid antimicrobial susceptibility testing for bacterial diseases in fish.
N-(2-Amamantyl)-N-(5-arylhydrazono-6-methyl-4-oxopyrimidin-2-yl) guanidines (IIIa, b), 2-(2-admantyl-amino)-4-amino-s-triazine (IVa) and its 6-chloromethyl derivative (IVb) were prepared by cylization of 1-(2-admantyl) biguanide HCl (I) with ethyl 2-arylhydrazono-3-oxobutyrates (II), ethyl formate and ethyl chloroacetate, respectively. Where 1-(2-admantyl)-3-(4, 5-dioxo-2-imidazolidinylidene)guanidine (V) was used as intermediate for the synthesis of amides (VIIa, b), hydrazide (VIII) and azomethine derivatives (IX, b) of alkyl 2-(2-admantyl-amino)-4-amino-2-triazine-6-carboxylates (VI a, b). The antimicrobial testing of the prepared compounds proved that compound 1Xb was the most active. It showed a marked bacteriostatic effect against Staphylococcus aureus and Bacillus subtilis.
A series of hexahydro-s-triazine derivative were prepard. Cytotoxic activity testing using mouse leukemia cells (p 388) and antimicrobial testing indicated that the compounds which contain isoxazolyl moiety higher activity than those containing other hetercyclic moieties.
In this study the composition and antimicrobial properties of essential oils obtained from Origanum onites, Mentha piperita, Juniperus exalsa, Chrysanthemum indicum, Lavandula hybrida, Rosa damascena, Echinophora tenuifolia, Foeniculum vulgare were examined. To evaluate the in vitro antibacterial activities of these eight aromatic extracts; their in vitro antimicrobial activities were determined by disk diffusion testing, according to the NCCLS criteria. Escherichia coli (ATTC 25922), Staphylococcus aureus (ATCC 25923) and Pseudomonas aeruginosa (ATTC 27853 were used as standard test bacterial strains. Origanum onites recorded antimicrobial activity against all test bacteria, and was strongest against Staphylococcus aureus. For Rosa damascena, Mentha piperita and Lavandula hybrida antimicrobial activity was recorded only to Staphylococcus aureus. Juniperus exalsa, and Chrysanthemum indicum exhibited antibacterial activities against both Staphylococcus aureus and Escherichia coli. We also examined the in vitro artimicrobial activities of some components of the essential oils and found some components with antimicrobial activity.
We compared the antimicrobial resistance and clonal relationships among the community-acquired (CA) and hospital-acquired (HA) methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) strains that were isolated from blood cultures in a university hospital over a 4-year period. A total of 131 MRSA isolates, including 28 CA-MRSA and 103 HA-MRSA strains, were identified; antimicrobial susceptibility testing indicated that the CA-MRSA isolates were more susceptible to erythromycin (21 % vs 6% ; P=0.02), clindamycin (46% vs 12%; P<0.01), ciprofloxacin (43% vs 11%; P<0.01), and gentamicin (43% vs 6%; P<0.01) than were the HA-MRSA isolates. Pulsed-field gel electrophoresis (PFGE) typing and antimicrobial resistance profiles separated the 20 CA-MRSA isolates into 14 and 10 different patterns, respectively, and the 53 HA-MRSA isolates were separated into 24 and 7 different patterns, respectively. Twenty-one (40%) of the 53 HA-MRSA isolates belonged to two predominant PFGE types, and most of them showed multi-drug resistant patterns. Four (20%) of the 20 CA-MRSA and 10 (19%) of the 53 HA-MRSA isolates fell into two common PFGE patterns, and each of them showed the same multi-drug resistant pattern. This study suggests that, although the CA-MRSA blood isolates showed diverse PFGE and antimicrobial resistance patterns, some of these isolates may have originated from the HA-MRSA strains.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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