For in vitro myelination system, Schwann cells and neuronal cells of rat were cocultured. Schwann cells and neuronal cells, respectively, were obtained from dorsal root ganglion of rat embryos (E15). This method includes four steps: first step of suspension of the embryonic dorsal root ganglion cells, second step of addition of anti-mitotic cocktail, third step of purification of dorsal root cells, and fourth step of addition of Schwann cells to dorsal root ganglion cells. We made a highly purified population of myelination in a short period through this procedure and identified myelination basic protein using antibody of myelination basic protein.
Motility contrast imaging is a coherence-domain imaging technique that uses cellular motility as a fully endogenous imaging contrast agent. Motility is measured inside tissue using a digital holographic coherence gate that extracts dynamic speckle from fixed depths. The dynamic speckle arises from the normal organelle motion inside cells, and from the movement of the cellular membranes driven by the cytoskeleton. It measures cellular activity and the effects of temperature and osmolarity. Motion is sensitive to cytoskeletal drugs, such as the antimitotic drugs used for cancer chemotherapy, and the effects of drug combinations also can be monitored. Motility contrast imaging is a potential tissue-based assay platform for highthroughput screening of pharmaceuticals.
For myelination, Schwann cells and neuron cells from dorsal root ganglion (DRG) of rat embryos (E16) were cultured in vitro system. The purified DRG cells with anti-mitotic agents and purified Schwann cells were cocultured and then accomplished myelination processing. Treatment of M. leprae-specific phenolic glycolipid-1 (PGL-1) into this coculture system was performed and then accomplished demyelination. Therefore, we identified demyelination processing using antibody of myelin basic protein (MBP).
Proceedings of the Korean Institute of Information and Commucation Sciences Conference
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2014.10a
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pp.989-992
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2014
Myelination using Schwann cells and neuron cells was performed in rat. Schwann cells and neuron cells from dorsal root ganglion (DRG) of rat embryos (E16) were cultured, respectively. The embryonic DRG cells purified were cultured and anti-mitotic agents were added. Purified the embryonic Schwann cells were cultured and added to the embryonic DRG cells purified. A purified population of myelination in vitro system was accomplished and identified formation of myelination using antibody of neurofilament protein.
Mitotic centromere-associated kinesin (MCAK), which is a novel kinesin with a central motor domain, is believed to playa role in mitotic segregation of chromosome during the M phase of the cell cycle. In the present study, it is shown that a rabbit polyclonal antibody has been produced using the N-terminal region (187 aa) of human MCAK expressed in E. coli as the antigen. To express the N-terminal region in E. coli, the MCAK cDNA fragment encoding N-terminal 187 aa was obtained by PCR and was then inserted into the pET 3d expression vector. Molecular mass of the N-terminal region overexpressed in the presence of IPTG was 23.2 kDa on SDS-PAGE, and the protein was insoluble and mainly localized in the inclusion body that could be easily purified from the other cellular proteins. The N-terminal region was purified by electro-elution from the gel after the inclusion body was resolved on the SDS-PAGE. The antiserum obtained after tertiary immunization with the purified protein specifically recognized HsMCAK when subjected to Western blot analysis, and showed a fluctuation of the protein level during the cell cycle of human Jurkat T cells. Synchronization of the cell-cycle progression required for recovery of cells at a specific stage of the cell cycle was performed by either hydroxyurea or nocadazole, and subsequent release from each blocking at 2, 4, and 7 h. Northern and Western analyses revealed that both mRNA and protein of HsMCAK reached a maximum level in the S phase and declined to a basal level in the G1 phase. These results indicate that a polyclonal antibody raised against the N-terminal region (187 aa) of HsMCAK, overexpressed in E. coli, specifically detects HsMCAK (81 kDa), and it can analyze the differential expression of HsMCAK protein during the cell cycle.
In Vitro fertilization of U. unicinctus eggs observed by immunofluorescence and electron microscopes revealed an overview of the meiotic pattern of the tide animals. The eggs have been fertilized early at germinal vesicle stage, followed by germinal vesicle break down (GVBD), but pre-mitotic aster like structure could not be resolved by the methods employed in this work. The meiotic features, such as rotation-shift movement of spindle fibers, behavior of spermatozoonmonaster in the egg cytoplasm and active spindle fiber of the 1st polar body, have been observed. The antitubulin-FITC fluorescence show the 2nd meiotic apparatus appeared firstly parallel to the tangential line of the oolemma, proceeding the meiosis, its bipolarity is rotated and shifted towards the oolemma. The polar bodysite of the oolemma was not amorphous, but active in a sense of anti-tubulin-FITC reactions during the extrusions of the polar bodies. The immunofluorescence reactions of the spermatozoon centriole appeared at a later stage of the 2nd meiosis. During the time periods, the fertilized spermatozoon resided in the egg cytoplasm. Activating the centrioles, spermatozoon approaches towards the chromosomal materials of the 2nd oocyte. This suggests that spermatozoon centrioles initiate and play a roll to fuse male and female pronuclei.
Apoptosis induction has been proposed as an efficient mechanism by which malignant tumor cells can be removed following chemotherapy. The intrinsic mitochondria-dependent apoptotic pathway is frequently implicated in chemotherapy-induced tumor cell apoptosis. Since DNA-damaging agent (DDA)-induced apoptosis is mainly regulated by the tumor suppressor protein p53, and since more than half of clinical cancers possess inactive p53 mutants, microtubule-damaging agents (MDAs), of which apoptotic effect is mainly exerted via p53-independent routes, can be promising choice for cancer chemotherapy. Recently, we found that the apoptotic signaling pathway induced by MDAs (nocodazole, 17α-estradiol, or 2-methoxyestradiol) commonly proceeded through mitotic spindle defect-mediated prometaphase arrest, prolonged Cdk1 activation, and subsequent phosphorylation of Bcl-2, Mcl-1, and Bim in human acute leukemia Jurkat T cells. These microtubule damage-mediated alterations could render the cellular context susceptible to the onset of mitochondria-dependent apoptosis by triggering Bak activation, Δψm loss, and resultant caspase cascade activation. In contrast, when the MDA-induced Bak activation was inhibited by overexpression of anti-apoptotic Bcl-2 family proteins (Bcl-2 or Bcl-xL), the cells in prometaphase arrest failed to induce apoptosis, and instead underwent mitotic slippage and endoreduplication cycle, leading to formation of populations with 8N and 16N DNA content. These data indicate that cellular apoptogenic mechanism is critical for preventing polyploid formation following MDA treatment. Since the formation of polyploid cells, which are genetically unstable, may cause acquisition of therapy resistance and disease relapse, there is a growing interest in developing new combination chemotherapies to prevent polyploidization in tumors after MDA treatment.
Mitotic centromere-associated kinesin (MCAK), which is a member of the Kin I (internal motor domain) subfamily of kinesin-related proteins, is known to play a role in mitotic segregation of chromosome during M phase of the cell cycle. In the present study, we have produced a rat polyclonal antibody using human MCAK (HsMCAK) expressed in E. coli as the antigen. The antibody specifically recognized the HsMCAK protein (81 kDa), and could detect its nuclear localization in human Jurkat T cells and 293T cells by Western blot analysis. The specific stage of the cell cycle was obtained through blocking by either hydroxyl urea or nocodazole and subsequent releasing from each blocking for 2, 4, and 7 h. While the protein level of HsMCAK reached a maximum level in the S phase with slight decline in the $G_{2}-M$ phase, the electrophoretic mobility shift from $p81^{MCAK}\;to\;p84^{MCAK}$ began to be induced in the late S phase and reached a maximum level in the $G_{2}/M $ phase, and then it disappeared as the cells enter into the $G_{1}$ phase. Immunocytochemical analysis revealed that HsMCAK protein localized to centrosome and nucleus at the interphase, whereas it appeared to localize to the spindle pole, centromere of the condensed mitotic DNA, spindle fiber, or midbody, depending on the specific stage of the M phase. These results demonstrate that a rat polyclonal antibody raised against recombinant HsMCAK expressed in E. coli specifically detects human MCAK, and indicate that the electrophoretic mobility shift from $p81^{MCAK}\;to\;p84^{MCAK}$, which may be associated with its differential intracellular localization during the cell cycle, fluctuates with a maximum level of the shift at the $G_{2}-M$ phase.
Ji, Hyang Hwa;Jeong, Hyun Young;Jin, Soojung;Kwon, Hyun Ju;Kim, Byung Woo
Journal of Life Science
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v.22
no.12
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pp.1688-1696
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2012
Oenanthe javanica has been used as a food source and also in traditional folk medicine for its detoxifying properties and anti-microbial effects since ancient times. In this study, we evaluated the effect and mechanism of O. javanica seed methanol extract (OJSE) on adipocyte differentiation by 3T3-L1 preadipocytes. Under non-toxic conditions, OJSE treatment resulted in a dose-dependent inhibition of lipid droplet generation and triglyceride accumulation by suppressing adipocyte differentiation, which are associated with the decreased expression of key proadipogenic transcription factors including CCAAR/enhancer binding protein ${\alpha}$, ${\beta}$ ($C/EBP{\alpha}$, $C/EBP{\beta}$) and peroxisome proliferator-activated receptor ${\gamma}$ ($PPAR{\gamma}$). OJSE also significantly inhibited proliferation and differentiation of 3T3-L1 preadipocytes through G1-phase arrest, indicating that OJSE blocked mitotic clonal expansion during adipocyte differentiation. Investigation of the alteration of G1 phase arrest-related proteins indicated a dose-dependent increase in the expression of p21 and reduction in expression of cyclin E, Cdk2, E2F-1 and phospho-Rb by OSJE. Taken together, these results suggest that OJSE inhibits adipocyte differentiation by blocking the mitotic clonal expansion, which is accompanied by preadipocyte cell cycle arrest.
In this study, the effects of a methanol (MeOH) extract of Carduus crispus L. (Asteraceae) on adipogenesis was investigated in 3T3-L1 cells. To differentiate preadipocytes to adipocytes, confluent 3T3-L1 preadipocytes were treated with a hormone mixture, which included isobutylmethylxanthine, dexamethasone, and insulin (MDI). The methanol extract of C. crispus significantly decreased fat accumulation by inhibiting adipogenic signal transcriptional factors in MDI-induced 3T3-L1 cells in a dose-dependent manner. In MTT assays and on PI-staining, methanol extract of C. crispus inhibited the proliferation of 3T3-L1 cells during mitotic clonal expansion (MCE). The anti-adipogenic effect of the Carduus extract seemed to be associated with the upregulation of extracellular signal-regulated kinase (ERK) and p38 mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathways within the first 2 days after MDI treatment. These results suggest that methanol extract of C. crispus might be beneficial for the treatment of obesity.
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