Among 68 strains of lactic acid bacteria (LAB) isolated from Dongchimi, a strain K11 was selected due to its bactericidal activity against Escherichia coli O157 The strain K11 was identified as Lactobacillus plantarum, based on physiological and biochemical characteristics. In the late exponential phase, La. plantarum K11 showed maximum bacteriocin activity (12,800 BU/mL) and maintained until the early stationary phase. The bacteriocin activity was completely inactivated by all the proteolytic enzymes such as pepsin, protease, proteinase K, papain, chymotrypsin, and trypsin, but the activity was not affected by catalase, a-amylase, lysozyme, and lipase, suggesting proteinaceous nature of the bacteriocin. Additionally, this activity was not affected in the pH range from 3.0 to 9.0 and under storage conditions like 30 days at -20,4, or $25^{\circ}C$. Although the bacteriocin activity was absolutely lost after 15 min treatment at 121, it was relatively stable at $70^{\circ}C$ for 60 min or $100^{\circ}C$ for 30 min. The activity was disappeared by treatment with acetone, benzene, ethanol, or methanol, but it was not affected by treatment with chloroform or hexane. The antibacterial activity of the bacteriocin was good against some LAB including Lactobacillus spp., Enterococcus spp., and Streptococcus spp., but not against food-borne pathogens such as Bacillus spp., Listeria spp., and Staphylococcus spp. as well as yeasts and molds. Especially, some intestinal bacteria such as Enterobacter aerogenes and E. coli were significantly affected by the bacteriocin of La, plantarum K11. Furthermore, the addition of 640 BU/mL resulted in the complete clearance of E. coli O157 after 10 hr.
Bacteriocin-producing lactic acid bacterium having antagonistic activity against Bacillus cereus, was isolated from Kimchi. The selected strain was identified as Lactococcus lactis by the Bergey's manual and 16S rDNA analysis, and named as L. lactis ET45. The bacteriocin was stable in the pH range 3.0-11.0. The bacteriocin was active over a wide temperature range from $40^{\circ}C$ to $121^{\circ}C$. Optimal culture condition for producing bacteriocin was obtained by growing the cells on MRS medium at pH 7.5 and $30^{\circ}C$ for 18 h. Antibacterial activity of the bacteriocin was completely disappeared by proteinase K, and this means that bacteriocin is a proteinous substance. The molecular weight of bacteriocin was estimated to be about 4.5 kDa by tricine sodium dodecyl sulfate polyacryamide gel electrophoresis (TSDS-PAGE).
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.41
no.5
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pp.721-726
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2012
Lactic acid bacteria (LAB) are able to secrete antimicrobial peptides called bacteriocins, which inhibit other bacteria such as pathogenic microorganisms. Therefore, bacteriocin-producing starters can be used as natural biopreservatives for various foods. The objective of this study was to screen and characterize bacteriocin-producing LAB from Kimchi and to investigate their applicability as a starter in Kimchi fermentation. To screen bacteriocin-producing LAB, gram-positive and gram-negative bacteria were used as indicators. To measure the antimicrobial activities of isolates, agar well diffusion assay method was used. According to the results, bacteriocin produced by $Lb.$$sakei$ B16 showed antimicrobial activity against $Listeria$$monocytogenes$ ATCC 19115, $Escherichia$$coli$ KCTC 1467, and$Lactobacillus$$plantarum$ KTCT 3104. Furthermore, bacteriocin was very stable after treatment with high temperature and high and low pH, but its effects were inhibited by treatment with proteolytic enzymes such as trypsin, proteinase K, and ${\alpha}$-chymotrypsin, revealing their bacteriocin-like protein- based structure. These results suggest that $Lb.$$sakei$ B16 and its bacteriocin are good candidates as a functional probiotic and natural biopreservative, respectively, in fermented foods.
Erm proteins, MLS (macrolide-lincosamide-streptogramin B) resistance factor proteins, show high degree of amino acid sequence homology and comprise of a group of structurally homologous N-methyltransferases. On the basis of the recently determined structures of ErmC` and ErmAM, ErmSF was divided into two domains, N-terminal end catalytic domain and C-terminal end substrate binding domain and attempted to overexpress catalytic domain in E. coli using various pET expression systems. Three DNA fragments were used to express the catalytic domain: DNA fragment 1 encoding Met 1 through Glu 186, DNA fragment 2 encoding Arg 60 to Glu 186 and DNA fragment 3 encoding Arg 60 through Arg 240. Among the pET expression vectors used, pET 19b successfully expressed the DNA fragment 3 and pET23b succeeded in expression of DNA fragment 1 and 2. But the overexpressed catalytic domains existed as inclusion body, a insoluble aggregate. To assist the soluble expression of ErmSF catalytic domains, Coexpression of chaperone GroESL or Thioredoxin and lowering the incubation temperature to $22^{\circ}C$ were attempted, as did in the soluble expression of the whole ErmSF protein. Both strategies did not seem to be helpful. Solubilization with guanidine-HCl and renaturation with gradual removal of denaturant and partial digestion of overexpressed whole ErmSF protein (expressed to the level of 126 mg/ι culture as a soluble protein) with proteinase K, nonspecific proteinase are under way.
An antimicrobial peptide producing bacterium, Bacillus subtilis A405, was screened and identified among 700 of antagonistic bacteria. The heat-resistant antimicrobial peptide, AMP-405, was purified from the broth culture of B. subtilis A405 through $20{\sim}40%$ ammonium sulfate precipitation and ultrafiltration. The AMP-405 exhibited strong antimicrobial activities against Botrytis cinerea, Cercospora sp., Fusarium oxysporum, Penicillium digitatum, Celletotrichum gloeosporioides, Rhizoctonia solani, Pythium ultimum, Pyricularia oryzae, Escherichia coli, Pseudomonas spp. and Candida albicans. The molecular weight of the peptide was about 3.0 kDa determined by SDS-PAGE, Native-PAGE and Tris-Tricine gradient electrophoresis, and composed of 9 kinds of amino acid such as aspartic acid, glycine, serine, glutamine, valine, leucine, isoleucine, proline, tyrocine. To determine the efficiency of AMP-405 as a potential maintenance of fruits freshness, cherry tomato was srored at $25^{\circ}C$ for 2 weeks after treatment with $50{\mu}g/ml$ of AMP-405 and $10^{5}$ spores/ml of Botrytis cinerea simultaneously. Treatment with AMP-405 resulted in significantly less infection by Botrytis cinerea, than the treatment with tap water as a control.
One bacterium with high proteinase production and spore-forming ability was isolated from korean traditional soybean paste(doenjang). The isolated strain was identified as Bacillus subtilis, based on gram-staining, biochemical properties and l6S rRNA gene sequencing, and designated as B. subtilis DJI. Its growth rate was very fast, and it reached its stationary phase within 9 h, and then started to form spores. Bacterial-koji and doenjang were prepared using B. subtilis DJI. Chemical components of the doenjang were determined after 2 months of aging period: amino nitrogen 507 mg%, crude protein 14.3%, crude fat 4.8% and water 54.9%. The composition of total and free amino acids and their ratios of doenjang were changed during the aging period. Among total amino acids in DJI doenjang, glutamic acid, aspartic acid, leucine and arginine were the major amino acids. The fibrinolytic activities of DJI doenjang and traditional doenjangs were 909.7 units/ml and $363.3{\sim}618.6\;units/ml$, respectively. Flavor compounds of DJI doenjang and traditional doenjang were extracted by SDE(simultaneous steam distillation and extraction), and analyzed by GC/MS; DJI doenjang possessed the typically favorable flavor compounds in traditional korean doenjang, with reduced off-flavor compounds.
Growth stimulatory material for lactic acid bacteria was extracted from radish and radish green juice and its growth stimulatory effect was tested. Dried methanol-precipitated growth stimulatory material was lightly grayish white powder, Its ash content is 44% and approximately 50% of the ash is sulfur. It has reddish brown color upon solubilization in water. The material had unchanged stimulatory effect when it was treated with proteinase or pectinase, or ashed. The growth stimulatory activity was dialyzable. The material was able to counteract the growth inhibitory effect of EDTA. When selected lactic acid bacteria were grown at $30^{\circ}C$ for 24 hours in peptone(0.5%)-yeast extract(0.5%)-glucose(2%) broth with and without 0.5% growth stimulatory material, the material stimulated the growth of Lactobacillus plantarum, L. fermentum, L. leichmanii, L. sake, L. brevis, L. acidophilus, L. casei, Pediococcus pentosaceus, Leuconostoc mesenteroides, Streptococcus faecalis, S. lactis, S. cremoris and S. thermophilus by 19, 1833, 133, 444, 840, 32, 14, 18, 6, 17, 4, 5 and 4 times, respectively.
Newborn dog chymosin was extracted from the stomachs of dogs of 2 weeks of age, and was purified by ion exchange chromatography. Half of the sequence was determined by amino acid sequencing and the complete sequence was deduced from a cloned chymosin cDNA Results showed that the zymogen showed 79% sequence identity with calf prochymosin and 54% identity with porcine pepsinogen A The size of the propart and location of the residue which becomes the amino-terminus in the active enzyme was the same in the prochymosins. The maximum general proteolytic activity at pH 3.2 of newborn dog chymosin was 3-4% of that of porcine pepsin A at pH 2, whereas the milk clotting activity relative to the general proteolytic activity of newborn dog chymosin was much higher than that of calf chymosin. Agar gel electrophoresis at pH 5.2 of stomach extracts of individual dogs showed the existence of two predominant genetic variants of zymogen and enzyme. The two variants could not be distinguished by amino acid composition or amino-terminal sequencing, and no differences in the enzymatic properties of the genetic variants were observed. It was concluded that of the residues that participate in the substrate binding, calf and newborn dog chymosin differ in the following positions (porcine pepsin numbering, subsites in parentheses) : Ser 12 Thr(S$_4$), Leu 30 Val(S$_1$/S$_3$), His 74 Gln(S'$_2$), Val 111 Ile(S$_1$/S$_3$), Lys 220 Met(S$_4$). With regard to the low general proteolytic activity of newborn dog chymosin, the substitution Asp303 Val relative to calf chymosin may contribute to an explanation of this.
This study aimed increase the quality during ripening of Cheddar cheese made with proteinase-negative mutant of Streptococcus lactis KCTC 1913 selected by curing. The degradation of protein during cheese ripening were investigated by electrophoresis and chromatography. The results were summarized as follow ; 1. The number of lactic acid bacteria decreased with the ripening stage, and that of the control cheese decreased faster than that of the cheese made with mutant. 2. Polyacrylamide gel electrophoretic analysis of cheese caseins revealed no difference between the cheese made with mutant and the control cheese, but differences along with the ripening stage were evident. 3. On Sephadex G-25 column chromatography, the extracts of bitter components from the green cheese and 3 month ripended cheese were fractionated into 3 fractions. With the progress of ripening, bitter peptides were degraded to rather small peptides or free amino acids. 4. Sensory evaluation of the 3 month ripended Cheddar cheese found no significant differences in color but the cheese made with mutant evidenced higher palatability in flavor and better texture than the control cheese. 5. The yields of the cheddar cheese made with mutant was 0.14% higher than that of the control cheese.
To determine whether localization of tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) and cathepsin K was associated with rupture of the cranial cruciate ligament (CCL) in dogs. Tissue specimens were obtained from 30 dogs with CCL rupture during surgical treatment, 8 aged normal dogs, and 9 young normal dogs that were necropsied for reasons unrelated to this study and unrelated to musculoskeletal disease. The cranial cruciate ligament was examined histologically. $TRAP^+$ cells and cathepsin $K^+$ cells were identified by histochemical staining and immunohistochemical staining respectively. TRAP and cathepsin $K^+$ were co-localized within the same cells principally located within the epiligamentous region and to a lesser extent in the core region of ruptured CCL. Localization of $TRAP^+$ cells (P < 0.05) and cathepsin $K^+$ cells (P =0.05) within CCL tissue was significantly increased in dogs with CCL rupture, compared with aged-normal dogs, and young normal dogs (P < 0.05 - TRAP, P < 0.001 - cathepsin K). Localization of $TRAP^+$ cells and cathepsin $K^+$ cells within the CCL tissue of aged-normal dogs was also increased compared with young normal dogs (P < 0.05). Small numbers of $TRAP^+$ cells and cathepsin $K^+$ cells were seen in the intact ligaments of aged-normal dogs, which were associated with ligament fasicles in which there was chondroid transformation of ligament fibroblasts and disruption of the organized hierarchical structure of the extracellular matrix. $TRAP^+$ cells and cathepsin $K^+$ cells were not seen in CCL tissue from young-normal dogs. Localization of the proteinases $TRAP^+$ and cathepsin $K^+$ in CCL tissue was significantly associated with CCL rupture. Small numbers of proteinase positive cells were also localized in the CCL of agednormal dogs without CCL rupture, but were not detected in CCL from young-normal dogs. Taken together, these findings suggest that the cell signaling pathways that regulate expression of these proteinases in CCL tissue may form part of the mechanism that leads to upregulation of collagenolytic ligament remodeling and progressive structural failure of the CCL over time.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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