Han, Mu Seok;Noh, Seol Ah;Kwak, Myung Cheol;Moon, Heung Kyu
Journal of Plant Biotechnology
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v.41
no.2
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pp.100-106
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2014
In order to develop an efficient in vitro micropropagation technique for a rare plant species, Astragalus membranaceus Bunge var. alpinus N., shoot proliferation and in vitro or in vivo rootings were conducted and hyperhydrated leaf generated from cultures was histologically observed. During shoot induction, no distinct effect on multiple shoot induction was found between BA and kinetin treatment. BA enhanced the number of internodes, whereas kinetin stimulated shoot elongation. Hyperhydrated leaf composed of bigger cells and retarded palisade parenchyma and showed irregular cell arrangement compared to normal leaf. Especially starch content in hyperhydrated leaf was significantly reduced. The best rooting rate was achieved by B5 medium among three different medium (B5, MS and WPM) and 0.1mg/L IBA treatment induced the highest rooting ratio (80%). No statistical difference was induced by explant types (apical bud or axillary bud) in terms of rooting ratio. In vivo cutting induced rooting rate up to 65% by 0.5% IBA/Talc powder treatment. Although in vivo rooting rate was less efficient compared to in vitro rooting, better survival rate was observed after soil acclimatization. Present study suggested that above micropropagation techniques can be used for rapid multiplication as well as in vitro or in vivo conservation of the species.
In order to develop an efficient micropropagation technique for an endangered species, Stellera rosea N., stem node cultures were conducted on MS medium supplemented with cytokinins. Generally, BA was better than zeatin on shoot proliferation from stem nodes, whereas zeatin showed more effective on shoot elongation. In vitro rooting of shoots was achieved by application of an auxin pre-culturing method. Overall rooting rate was relatively low and differed depending on the culture period. Pre-culturing of shoots for 15 days at 1.0mg/L IBA revealed a slightly better rooting efficiency reaching 30% rooting rate than NAA. Root induction rate by NAA also varied with concentration of NAA and culture periods. Total 51% of the rooted plantlets survived on artificial soil mixture and grew normally without any distinct morphological variation. The results suggest that the endangered Stetllera plants are propagated via in vitro culture system, but still need to more study for the improvement of rooting and acclimatization of the plantlets in soil.
This experiment was carried out to develop rapid mass propagation via shoot organogenesis system from adventitious roots of Rehmannia glutinosa. The induction of adventitious roots from leaf explants was most favorable to MS solid medium supplemented with 2mg/L IBA. However, the growth of adventitious roots was highest when they were cultured on 1/3 strength MS liquid medium supplemented with 2mg/L IBA. When the adventitious roots were grown in 10L bioreactor, 10g roots as initial inoculum was increased to 225g after 6 weeks of culture. The harvested roots were cultured onto solid medium to induce plant regeneration. The optimal adventitious shoot formation was observed on MS medium supplemented with 2mg/L BA. Rooting of individual shoots was induced after transfer to half strength MS medium without growth regulators. Plantlets after acclimatization were successfully transplanted in the field and no phenotypic variation was observed among them.
To establish the optimum conditions of in vitro plant regeneration, the leaf, rhizome, and root explants of Belamcanda chinensis were cultured on the MS medium supplemented with different concentration of 2,4-D and BA. The callus induction was more effective in the root explants than the leaf and rhizome explants, and was the best on MS medium containing 3.0 mg/L 2,4-D or 1.0 mg/L 2,4-D and 3.0 mg/L BA. The highest numbers of shoots were regenerated when callus were cultured on MS medium containing 3.0 mg/L 2,4-D for 4 weeks. However, the multiple shoots were induced on MS medium supplemented with the combination of 2,4-D and BA. The normal root formation from shoot was effective on the MS medium lacking any plant growth regulators. For acclimatization, the regenerated plantlets were cultured on MS medium without sucrose and plant growth regulators for 2 weeks, and then transferred to the pot.
Prospecting of local grapevine (Vitis vinifera L.) germplasm revealed that Tunisia possesses a rich patrimony which presents diversified organoleptic characteristics. However, viral diseases seriously affect all local grapevine cultivars which risk a complete extinction. Sanitation programs need to be established to preserve and exploit, as a gene pool, the Tunisian vineyards areas. The presence of the Grapevine leafroll associated virus-3 (GLRaV-3), Grapevine stem pitting associated virus (GRSPaV) and Grapevine virus A (GVA), were confirmed in a Tunisian grapevine cultivar using serological and molecular analyses. The association between GRSPaV and GVA viruses induces more rugose wood symptoms and damages. For this reason the cleansing of the infected cultivar is highly advisable. Direct and recurrent somatic embryos of cv. 'Hencha' were successfully induced from filament, when cultured on $Ch{\acute{e}}e$and Pool (1987). based-medium, enriched with $2mg1^{-1}$ of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and $2.5mg1^{-1}$ of Thidiazuron, after 36 weeks of culture. After six months of acclimatization, RT-PCR carried on 50 somaplants confirmed the absence of GVA, GRSPaV as well as GLRaV-3 viruses in all somaplants. Ampelographic analysis, based on eight OIV descriptors, was carried out on two years acclimated somaplants, compared to the mother plant. Results demonstrated that the shape and contours of 46 somaclones leaves are identical to mother plant leaves and four phenotypically off-type plants were observed. The healthy state of 100% 'Hencha' somaclones and the high percentage of phenotypically true-to-type plants demonstrate that somatic embryogenesis is a promising technique to adopt for grapevine viruses elimination.
Lee, Joung Kwan;Kwon, Young Hee;Kim, Hee Kyu;Kim, Kyung Ok;Park, Jae Seong;Jeong, Mi Jin;Son, Sung Won;Suh, Gang Uk
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2018.10a
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pp.37-37
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2018
We use two different methods for laboratory propagation from seed of lady's slipper orchid(Cypripedium macranthos Sw.); immature seed which also called green capsule or fully mature seed about 120~130 days from pollination. In green capsule culture, the seed pods should be collected within precisely right time. The right time of seed collection could be diverse under the wether conditions or nutritional factors of the plants. In fully matured seed culture, the more complicated procedures are needed to break the dormancy of the seed; thermal or chemical treatment. The seedlings in this study were easily germinated from immature seeds in Harvais medium; 53 days after pollination(DAP) in Cypripedium pubescens, DAP 65 in C. parviflorum and C. macranthos. The germinated seedlings were transplanted to hormone free media immediately to avoid abnormal growth of seedlings. When the seedlings have roots with a minimum length of around 2-3cm and have visible dormant buds, the seedlings were removed from the flask and stored in refrigerator for vernalization. To examine the correlation of seedlings and maternal plants, the 125 seedlings of C. macranthos were transplanted in the soil bed at a distance of 20-100 cm from mother plants on April 20. The survival rate of seedlings were 92% in 20 cm distance from the ripe plants, and 56 % in 100 cm distance. The seedlings which were transplanted near mother plants showed vigorous growth in plant height, leaf width, and especially dormant buds. Considering the existence of mycorrhiza which is a symbiotic association between a fungus and the roots of a orchid vascular, the various fungus from mother plants could affect the growth of the seedlings. These results indicate the possibility of high and stable production and practical industrialization of endangered lady's slipper orchids.
Park, Cheol-Ho;Yu, Chang-Yeon;Seo, Jeong-Sik;Kim, Ki-Sik;Park, Seung-Ue;Chang, Byoung-Ho;Ahn, Sang-Deuk
Korean Journal of Medicinal Crop Science
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v.3
no.3
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pp.207-216
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1995
This study was conducted to establish technologies for plug seedling production using somatic embryos-derived regenerants and their seeds in Bupleurum falcatum L. Among distilled water, GA (0.1mg/l) and putrescine (0.lmg/l) treated to regenerants for acclimatization, GA was most effective to develop shoots and roots, 1/2X MS medium and NAA 0.1mg/l + BA 0. 5mg/l enhanced the growth rates of the regenerants and increased dry weight. Activated charcoal effected to grow markedly leaves and roots of the regenerants at the level of 0.4 %. Regenerants increased their plant height, root length and dry weight at $30^{\circ}C$. Plug seedlings originated from seeds of the tissue culture regenerants showed the maxium growth on the mixture of peatmoss soil (2) and mountain sand (1) .Root length, leaf area and dry weight of plug seedlings increased significantly when No.1, 2 and 3 of Wondergrow solution were mixed in the ratio of 1.3 - 0.9 - 0.1. Light supplement (4%) and high temperature $(30^{\circ}C)$ promoted the growth of plug seedlings as well as dry weight. Ninety days seedlings were more vigorous and adaptable for transplanting than other seedlings.
This study was carried out to find the effects of plant growth regulators on callus formation, rooting and shooting from cotyledon explant in oriental me]on. Various combinations of 0.1 mg/L auxins (IAA, NAA) and 0.5, 1.0. 1.5, 2.0 mg/L cytokinins (BA, kinetin, zeatin) were treated to the MS basal medium, respectively. Callus was induced mort effectively as 2,437.0 mg (FW)/explant in MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA and 2.0 mg/L BA, but that was non-embryogenic callus as colored yellow white and broke easily. Root was induced most effectively at a frequency of 98.0% in MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA and 0-5 mg/L kinetin. Shoots formed on cut part of vein at a frequency of 98.0% in MS medium supplemented with 0.1 mg/L IAA and 2.0 mg/L BA, that were multiple shoots. in case of its concentration, BA and lower concentration of IAA and NAA (0.01 and 0.05 mg/L). respectively. shooting ratio was not increased. The result of treatment with BA 0-5 mg/L and IAA 0.1 mg/L, callus induced at a week, and shoot start to form multiple shoots about 3 weeks after inoculation. After 2 times subculture as 2 weeks intervals, divided shoots rooted and developed into intact plantlets at 10 weeks and then that grown normally on pots after acclimatization.
Plant regeneration system from zygotic embryos (2n=24) of Lilium lancifolium Thunb. via bulblet formation was estabished. Zygotic embryos of Lilium lancifolium formed bulblets and somatic embryos simultaneously when they cultured on MS medium supplemented with low concentration of 2,4-D. The highest frequency of bulblet and somatic embryo formation from zygotic embryos of Lilium lancifolium was 66.7% and 56.7%, respectively. The frequency of bulblet and somatic embryo formation was decreased when they cultured on MS medium over than 1 mg/L of 2,4-D. To regenerate whole plants, somatic embryos formed on zygotic embryos were transferred to MS basal medium. However somatic embryos did not fully converted into plantlets. Further incubation in the light, elongated somatic embryos formed numerous bulblets at the base of somatic embryos. Upon transfer to MS basal medium, bulblets were successfully converted into plantlets after further 4 weeks of culture in the light. After acclimatization, plantets from bulblets were transferred to soil and grown to normal plants in growth chamber (approximately $30\;{\mu}mol\;m^{-2}s^{-1}$, 16/8h photo period, $25^{\circ}C$) The chromosome analysis revealed that plants regenerated from zygotic embryos showed 2n=24. These results indicate that chromosome stability of source tissue is maintained during plant regeneration via bulblet formation.
Whole plants were regenerated from callus induced from leaf explants in hybrid kiwi (Actinidia deliciosa${\times}$A. arguta). Callus was induced from leaf explants which cultured on MS solid medium supplemented with combination of auxin (2,4-D, NAA: 0.1~0.5 mg/l) and cytokinin (BA: 0.1~0.2 mg/l). them, the highest callus formation (96.2%) was obtained from the treatment of 0.5 mg/1 2,4-D+0.1 mg/l NAA+0.05 mg/l BA. In the experiment of adventitious shoots induction from primary shoots, only a few shoots were produced in the treatment of 1.0 mg/l BA+0.05 mg/l IBA or 2.0 mg/l BA+0.05 mg/l lBA. As the callus were transferred to the secondary shoot-inducing medium, multiple shoots were obtained from the medium supplemented with 1.0, 2.0 or 5.0 mg/l zeatin in addition to the mixed treatments of BA, thidiazuron (TDZ) or zeatin. However, no multiple shoots were induced on the BA-contained medium of concentrations. Therefore it turned out that addition of BA to medium was less effective for induction of multiple shoots from callus in Actinidia deliciosa${\times}$A. arguta. For producing adventitious roots from shoots, the best frequency of rooting (83.3%) were recorded on the treatment of in vitro rooting (Standardi (St)+1.0 mg/l IBA). On the other side, the lowest result (40.0%) were shown in the treatment of 500 mg/l IBA, 1 hr. Whole plants with shoots and roots were recovered and acclimatized successfully.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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