Kim, Min-Jeong;Lee, Hae-Ahm;Quan, Fu-Shi;Kong, Hyun-Hee;Moon, Eun-Kyung
Parasites, Hosts and Diseases
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v.60
no.1
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pp.7-14
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2022
Acanthamoeba keratitis (AK) is a rare infectious disease and accurate diagnosis has remained arduous as clinical manifestations of AK were similar to keratitis of viral, bacterial, or fungal origins. In this study, we described the production of a polyclonal peptide antibody against the adenylyl cyclase-associated protein (ACAP) of A. castellanii, and evaluated its differential diagnostic potential. Enzyme-linked immunosorbent assay revealed high titers of A. castellanii-specific IgG and IgA antibodies being present in low dilutions of immunized rabbit serum. Western blot analysis revealed that the ACAP antibody specifically interacted with A. castellanii, while not interacting with human corneal epithelial (HCE) cells and other causes of keratitis such as Fusarium solani, Pseudomonas aeruginosa, and Staphylococcus aureus. Immunocytochemistry (ICC) results confirmed the specific detection of trophozoites and cysts of A. castellanii co-cultured with HCE cells. The ACAP antibody also specifically interacted with the trophozoites and cysts of 5 other Acanthamoeba species. These results indicate that the ACAP antibody of A. castellanii can specifically detect multiple AK-causing members belonging to the genus Acanthamoeba and may be useful for differentially diagnosing Acanthamoeba infections.
The existence of symbiotic relationships between Acanthamoeba and a variety of bacteria is well-documented. However, the ability of Acanthamoeba interacting with host bacterial pathogens has gained particular attention. Here, to understand the interactions of Escherichia coli K1 and E. coli K5 strains with Acanthamoeba castellanii trophozoites and cysts, association assay, invasion assay, survival assay, and the measurement of bacterial numbers from cysts were performed, and nonpathogenic E. coli K12 was also applied. The association ratio of E. coli K1 with A. castellanii was 4.3 cfu per amoeba for 1 hr but E. coli K5 with A. castellanii was 1 cfu per amoeba for 1 hr. By invasion and survival assays, E. coli K5 was recovered less than E. coli K1 but still alive inside A. castellanii. E. coli K1 and K5 survived and multiplied intracellularly in A. castellanii. The survival assay was performed under a favourable condition for 22 hr and 43 hr with the encystment of A. castellanii. Under the favourable condition for the transformation of trophozoites into cysts, E. coli K5 multiplied significantly. Moreover, the pathogenic potential of E. coli K1 from A. castellanii cysts exhibited no changes as compared with E. coli K1 from A. castellanii trophozoites. E. coli K5 was multiplied in A. castellanii trophozoites and survived in A. castellanii cysts. Therefore, this study suggests that E. coli K5 can use A. castellanii as a reservoir host or a vector for the bacterial transmission.
Anwar, Ayaz;Siddiqui, Ruqaiyyah;Shah, Muhammad Raza;Khan, Naveed Ahmed
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.29
no.5
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pp.713-720
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2019
Acanthamoeba castellanii belonging to the T4 genotype may cause a fatal brain infection known as granulomatous amoebic encephalitis, and the vision-threatening eye infection Acanthamoeba keratitis. The aim of this study was to evaluate the antiamoebic effects of three clinically available antidiabetic drugs, Glimepiride, Vildagliptin and Repaglinide, against A. castellanii belonging to the T4 genotype. Furthermore, we attempted to conjugate these drugs with silver nanoparticles (AgNPs) to enhance their antiamoebic effects. Amoebicidal, encystation, excystation, and host cell cytotoxicity assays were performed to unravel any antiacanthamoebic effects. Vildagliptin conjugated silver nanoparticles (Vgt-AgNPs) characterized by spectroscopic techniques and atomic force microscopy were synthesized. All three drugs showed antiamoebic effects against A. castellanii and significantly blocked the encystation. These drugs also showed significant cysticidal effects and reduced host cell cytotoxicity caused by A. castellanii. Moreover, Vildagliptin-coated silver nanoparticles were successfully synthesized and are shown to enhance its antiacanthamoebic potency at significantly reduced concentration. The repurposed application of the tested antidiabetic drugs and their nanoparticles against free-living amoeba such as Acanthamoeba castellanii described here is a novel outcome that holds tremendous potential for future applications against devastating infection.
Protein arginine methyltransferase (PRMT) is an important epigenetic regulator in eukaryotic cells. During encystation, an essential process for Acanthamoeba survival, the expression of a lot of genes involved in the encystation process has to be regulated in order to be induced or inhibited. However, the regulation mechanism of these genes is yet unknown. In this study, the full-length 1,059 bp cDNA sequence of Acanthamoeba castellanii PRMT1 (AcPRMT1) was cloned for the first time. The AcPRMT1 protein comprised of 352 amino acids with a SAM-dependent methyltransferase PRMT-type domain. The expression level of AcPRMT1 was highly increased during encystation of A. castellanii. The EGFP-AcPRMT1 fusion protein was distributed over the cytoplasm, but it was mainly localized in the nucleus of Acanthamoeba. Knock down of AcPRMT1 by synthetic siRNA with a complementary sequence failed to form mature cysts. These findings suggested that AcPRMT1 plays a critical role in the regulation of encystation of A. castellanii. The target gene of AcPRMT1 regulation and the detailed mechanisms need to be investigated by further studies.
Min-Jeong Kim;Eun-Kyung Moon;Hye-Jeong Jo;Fu-Shi Quan;Hyun-Hee Kong
Parasites, Hosts and Diseases
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v.61
no.4
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pp.397-404
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2023
Acanthamoeba species are free-living amoebae those are widely distributed in the environment. They feed on various microorganisms, including bacteria, fungi, and algae. Although majority of the microbes phagocytosed by Acanthamoeba spp. are digested, some pathogenic bacteria thrive within them. Here, we identified the roles of 3 phagocytosis-associated genes (ACA1_077100, ACA1_175060, and AFD36229.1) in A. castellanii. These 3 genes were upregulated after the ingestion of Escherichia coli. However, after the ingestion of Legionella pneumophila, the expression of these 3 genes was not altered after the consumption of L. pneumophila. Furthermore, A. castellanii transfected with small interfering RNS (siRNA) targeting the 3 phagocytosis-associated genes failed to digest phagocytized E. coli. Silencing of ACA1_077100 disabled phagosome formation in the E. coli-ingesting A. castellanii. Alternatively, silencing of ACA1_175060 enabled phagosome formation; however, phagolysosome formation was inhibited. Moreover, suppression of AFD36229.1 expression prevented E. coli digestion and consequently led to the rupturing of A. castellanii. Our results demonstrated that the ACA1_077100, ACA1_175060, and AFD36229.1 genes of Acanthamoeba played crucial roles not only in the formation of phagosome and phagolysosome but also in the digestion of E. coli.
Kim, Min-Jeong;Quan, Fu-Shi;Kong, Hyun-Hee;Kim, Jong-Hyun;Moon, Eun-Kyung
Parasites, Hosts and Diseases
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v.60
no.2
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pp.143-147
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2022
Acanthamoeba keratitis (AK) is a rare ocular disease, but it is a painful and sight-threatening infectious disease. Early diagnosis and adequate treatment are necessary to prevent serious complications. While AK is frequently diagnosis via several PCR assays or Acanthamoeba-specific antibodies, a more specific and effective diagnostic method is required. This study described the production of a polyclonal peptide antibody against the periplasmic binding protein (PBP) of A. castellanii and investigated its diagnostic potential. Western blot analysis showed that the PBP antibody specifically reacted with the cell lysates of A. castellanii. However, the PBP antibody did not interact with human corneal epithelial (HCE) cells and the other 3 major causative agents of keratitis. Immunocytochemistry (ICC) results revealed the specific detection of A. castellanii trophozoites and cysts by PBP antibodies when A. castellanii were co-cultured with HCE cells. PBP antibody specificity was further confirmed by co-culture of A. castellanii trophozoites with F. solani, S. aureus, and P. aeruginosa via ICC. The PBP antibody specifically reacted with the trophozoites and cysts of A. polyphaga, A. hatchetti, A. culbertsoni, A. royreba, and A. healyi, thus demonstrated its genus-specific nature. These results showed that the PBP polyclonal peptide antibody of A. castellanii could specifically detect several species of Acanthamoeba, contributing to the development of an effective antibody-based AK diagnostics.
Legionella pneumophila is an opportunistic pathogen that survives and proliferates within protists such as Acanthamoeba spp. in environment. However, intracellular pathogenic endosymbiosis and its implications within Acanthamoeba spp. remain poorly understood. In this study, RNA sequencing analysis was used to investigate transcriptional changes in A. castellanii in response to L. pneumophila infection. Based on RNA sequencing data, we identified 1,211 upregulated genes and 1,131 downregulated genes in A. castellanii infected with L. pneumophila for 12 hr. After 24 hr, 1,321 upregulated genes and 1,379 downregulated genes were identified. Gene ontology (GO) analysis revealed that L. pneumophila endosymbiosis enhanced hydrolase activity, catalytic activity, and DNA binding while reducing oxidoreductase activity in the molecular function (MF) domain. In particular, multiple genes associated with the GO term 'integral component of membrane' were downregulated during endosymbiosis. The endosymbiont also induced differential expression of various methyltransferases and acetyltransferases in A. castellanii. Findings herein are may significantly contribute to understanding endosymbiosis of L. pneumophila within A. castellanii.
Acanthamoeba spp. commonly cause Acanthamoeba keratitis which is typically associated with the wear of contact lenses. Therefore, finding an economic, efficient, and safe therapy of natural origin is of outmost importance. This study examined the in vitro lethal potential of ethyl acetate and methanol extracts of Helianthemum lippii (L.) (sun roses) against Acanthamoeba castellanii cysts isolated from patients with amoebic keratitis. Both extracts proved to be potent as regard to their lethal effects on A. castellanii cysts with comparable results to chlorhexidine. The ethyl acetate was more promising with cumulative lethality. It showed a highly significant lethal percentage along the duration of treatment. The analysis of the more potent ethyl acetate extract revealed the presence of 2.96 mg/100 g of total phenolics, 0.289 mg/100 ml of total flavonoids and 37 mg/100 mg of total tannins which highlighted their phytomedicinal role.
Acanthamoeba keratitis has been increasing in recent years. Main risk factors are contact lens wear and their cleaning solutions. Most contact lens wearers use multipurpose disinfecting solutions (MPDS) for cleansing and disinfecting microorganisms because of its convenience. We determined amoebicidal effects of MPDS made in Korea and their cytotoxicity on human corneal epithelium cells. Fifteen commercial MPDS (A to O) were tested for their amoebicidal effects on Acanthamoeba castellanii trophozoites and cysts by using a most probable number (MPN) technique. Among them, 7 kinds of MPDS showed little or no amoebicidal effects for 24 hr exposure. Solutions A, B, G, H, L, and O showed positive amoebicidal effects, and solutions M and N killed almost all trophozoites and cysts after 24 hr exposure. However, 50%-N solution showed 56% cytotoxicity on human corneal epithelial cells within 4 hr exposure, and 50%-O solution also showed 62% cytotoxicity on human cells within 4 hr exposure. Solution A did not show any cytotoxicity on human cells. These results revealed that most MPDS made in Korea were ineffective to kill Acanthamoeba. The solutions having amoebicidal activity also showed high levels of cytotoxicity on human corneal epithelial cells. New formulations for improved MPDS that are amoebicidal but safe for host cells are needed to prevent Acanthamoeba keratitis.
Encystation is an essential process for Acanthamoeba survival under nutrient-limiting conditions and exposure to drugs. The expression of several genes has been observed to increase or decrease during encystation. Epigenetic processes involved in regulation of gene expression have been shown to play a role in several pathogenic parasites. In the present study, we identified the protein arginine methyltransferase 5 (PRMT5), a known epigenetic regulator, in Acanthamoeba castellanii. PRMT5 of A. castellanii (AcPRMT5) contained domains found in S-adenosylmethionine-dependent methyltransferases and in PRMT5 arginine-N-methyltransferase. Expression levels of AcPRMT5 were increased during encystation of A. castellanii. The EGFP-PRMT5 fusion protein was mainly localized in the nucleus of trophozoites. A. castellanii transfected with siRNA designed against AcPRMT5 failed to form mature cysts. The findings of this study lead to a better understanding of epigenetic mechanisms behind the regulation of encystation in cyst-forming pathogenic protozoa.
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