Properties of unitary ATP-sensitive $K^+$ channels were studied using planar lipid bilayer technique. Vesicles were prepared from bullfrog (Rana catesbeiana) skeletal muscle. ATP-sensitive $K^+$ (K (ATP)) channels were identified by their unitary conductance and sensitivity to ATP. In the symmetrical solution containing 200mM KCI, 10mM Hepes, 1mM EGTA and pH 7.2, single K (ATP) channels showed a linear current-voltage relations with slight inward rectification. Slope conductance at reversal potential was $60.1{\pm}0.43$ pS(n=3)). Micromolar ATP reversibly inhibited the channel activity when applied to the cytoplasmic side. In the range of -50~+50 mV, the channel activity was not voltage-dependent, but the channel gating within a burst was more frequent at negative voltage range. Varying the concentrations of external/internal KCl(mM) to 40/200, 200/200, 200/100 and 200/40 shifted reversal potentials to $-30.8{\pm}2.9$(n=3), $-1.1{\pm}2.7$(n=3), 10.5 and 30.6(mV), respecrivety. These reversal potentials were close to the expected values by the Nernst equation, indicating nearly ideal selectivity for $K^+$ over $Cl^-$. Under bi-ionic conditions of 200mM external test ions and 200mM internal $K^+$, the reversal potentials for each test ion/K pair were measured. The measured reversal potentials were used for the calculation of the releative permeability of alkali cations to $K^+$ ions using the Goldman-Hodgkin-Katz equation. The permeability sequence of 5 cations relative to $K^+$ was $K^+$(1), $Rb^+$(0.49), $Cs^+$(0.27), $Na^+$(0.027) and $Li^+$(0.021). This sequence was recognized as Eisenman's selectivity sequence IV. In addition, modelling the permeation of $K^+$ ion through ATP-sensitive $K^+$ channel revealed that a 3-barrier 2-site multiple occupancy model can reasonably predict the observed current-voltage relations.
To explore whether $Cl^-$ channel blockers interact with the ATP-sensitive $K^+\;(K_{ATP})$ channel, I have examined the effect of two common $Cl^-$ channel blockers on the $K_{ATP}$ channel activity in isolated rat ventricular myocytes using patch clamp techniques. In inside-out patches, 4,4'-diisothio-cyanatostilbene- 2,2'-disulfonic acid (DIDS) and niflumic acid applied to bath solution inhibited the $K_{ATP}$ channel activity in a concentration-dependent manner with $IC_{50}$ of 0.24 and 927 ${\mu}M,$ respectively. The inhibitory action of DIDS was irreversible whereas that of niflumic acid was reversible. Furthermore, DIDS-induced block was not recovered despite exposure to ATP (1 mM). In cell-attached and inside-out patches, DIDS blocked the pinacidil- or 2,4-dinitrophenol (DNP)-induced $K_{ATP}$ channel openings. In contrast, niflumic acid did not block the pinacidil-induced $K_{ATP}$ channel openings in inside-out patches, but inhibited it in cell-attached patches. DIDS and niflumic acid produced additional block in the presence of ATP and did not affect current-voltage relationship and channel kinetics. All these results indicate that DIDS among $Cl^-$ channel blockers specifically blocks the cardiac $K_{ATP}$ channel.
The objective of the present study was to characterize the role of adenosine in regulation of ATP-sensitive $K^+\;channel\;(K_{ATP}\;channel)$ activity in isolated rabbit ventricular myocytes using the patch clamp technique. Internal adenosine had little effects on KaTr channel activity. In an outside-out patch with intrapipette GTP and ATP, external adenosine stimulated $K_{ATP}\;channel$ activity. In an inside-out Patch with intrapipette adenosine, ATP reduced $K_{ATP}\;channel$ activity, and GTP stimulated $K_{ATP}\;channel$ activity. Adenosine receptor activation shifted the half-maximal inhibition Of $K_{ATP}\;channel\;from\;70\;to\;241\;{\mu}m$. These results Suggest that activation of adenosine receptors stimulates $K_{ATP}\;channels$ in rabbit ventricular myocytes by reducing the apparent affinity of the channel for ATP. The effect may be important for activating $K_{ATP}\;channels$ during early phase of myocardial ischemia.
The effects of dimethyl sulfoxide (DMSO) were studied in two groups of Xenopus oocytes, one expressing ATP sensitive $K^+\;(K_{ATP})$ channel comprised of sulfonylurea receptor SUR1 and inwardly rectifying $K^+$ channel subunit Kir6.2, and the other expressing renal $K_{ATP}$ channel ROMK2. At concentrations of $0.3{\sim}10%$ (vol/vol) DMSO inhibited whole cell Kir6.2/SUR1 currents elicited by bath application of sodium azide (3 mM) in a concentration-dependent manner. The inhibition constant and Hill coefficient were 2.93% and 1.62, respectively. ROMK2 currents, however, was not affected significantly by DMSO. The results support the idea that DMSO inhibits $K_{ATP}$ channel expressed in Xenopus oocyte through a protein-specific mechanism(s) that remains to be further elucidated.
Kim, Na-Ri;Han, Jin;Kim, Eui-Yong;Ho, Won-Kyung;Earm, Yung E.
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제2권5호
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pp.581-589
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1998
A regulating mechanism of the ATP-sensitive potassium channels $(K_{ATP}\;channels)$ is yet to fully explained. This study was carried out to investigate the effects of intracellular application of monocarboxylates (acetate, formate, lactate, and pyruvate) on $K_{ATP}$ channels in isolated rabbit ventricular myocytes. Single channel currents of $K_{ATP}$ channels were recorded using the excised inside-out or permeabilized attached (open-cell) patch-clamp technique at room temperature. Intracellular application of acetate, formate and pyruvate led to an inhibition of channel activity, whereas intracellular application of lactate increased channel activity. These effects were reversible upon washout. Analysis of single channel kinetics showed that monocarboxylates did not affect open-time constant and close-time constant. These results suggest that monocarboxylates participate in modulating $K_{ATP}$ channels activity in cardiac cells and that modulation of $K_{ATP}$ channels activity may resolve the discrepancy between the low $K_i$ in excised membrane patches and high levels of intracellular ATP concentration during myocardial ischemia or hypoxia.
Substantia nigra is known to highly express glibenclamide binding site, a protein associated to ATP-sensitive $K^{+}$ ($K_{ATP}$) channel in the brain. However, the functional expression of $K_{ATP}$ channels in the area is not yet known. In this work, we attempted to estimate the functional expression of $K_{ATP}$ channels in neurons of the substantia nigra pars compacta (SNC) in young rats using slice patch clamp technique. Membrane properties and whole cell currents attributable to $K_{ATP}$ channel were examined by the current and voltage clamp method, respectively. In SNC, two sub-populations of neurons were identified. Type I (rhythmic) neurons had low frequency rebound action potentials ($4.5{\pm}0.25Hz$, n=75) with rhythmic pattern. Type II (phasic) neurons were characterized by faster firing ($22.7{\pm}3.16Hz$, n=12). Both time constants and membrane capacitance in rhythmic neurons ($34.0{\pm}1.27$ ms, $270.0{\pm}11.83$ pF) and phasic neurons ($23.7{\pm}4.16$ ms, $184{\pm}35.2$ pF) were also significantly different. The current density of $K_{ATP}$ channels was $6.1{\pm}1.47$ pA/pF (2.44~15.43 pA/pF, n=8) at rhythmic neurons of young rats. Our data show that in SNC there are two types of neurons with different electrical properties and the density of $K_{ATP}$, channel of rhythmic neuron is about 600 channels per neuron.
Cellular redox state is known to be perturbed during ischemia and that $Ca^{2+}$ and $K^2$ channels have been shown to have functional thiol groups. In this study, the properties of thiol redox modulation of the ATP-sensitive $K^2$ ($K_{ATP}$) channel were examined in rabbit ventricular myocytes. Rabbit ventricular myocytes were isolated using a Langendorff column for coronary perfusion and collagenase. Single-channel currents were measured in excised membrane patch configuration of patch-clamp technique. The thiol oxidizing agent 5,5'-dithio-bis-(2-nitro-benzoic acid) (DTNB) inhibited the channel activity, and the inhibitory effect of DTNB was reversed by dithiothreitol (disulfide reducing agent; DTT). DTT itself did not have any effect on the channel activity. However, in the patches excised from the metabolically compromised cells, DTT increased the channel activity. DTT had no effect on the inhibitory action by ATP, showing that thiol oxidation was not involved in the blocking mechanism of ATP. There were no statistical difference in the single channel conductance for the oxidized and reduced states of the channel. Analysis of the open and closed time distributions showed that DTNB had no effect on open and closed time distributions shorter than 4 ms. On the other hand, DTNB decreased the life time of bursts and increased the interburst interval. N-ethylmaleimide (NEM), a substance that reacts with thiol groups of cystein residues in proteins, induced irreversible closure of the channel. The thiol oxidizing agents (DTNB, NEM) inhibited of the $K_{ATP}$ channel only, when added to the cytoplasmic side. The results suggested that metabolism-induced changes in the thiol redox can also modulate $K_{ATP}$ channel activity and that a modulatory site of thiol redox may be located on the cytoplasmic side of the $K_{ATP}$ channel in rabbit ventricular myocytes.
Background: Nerve ligation injury may produce mechanical allodynia, but this can be reversed after an intrathecal administration of adenosine analogues. In many animal and human studies, ATP-sensitive potassium channel blockers have been known to reverse the antinociceptive effect of various drugs. This study was performed to evaluate the mechanical antiallodynic effects of spinal R-PIA (Adenosine A1 receptor agonist) and the reversal of these effects due to pretreatment with glibenclamide (ATP-sensitive potassium channel blocker). Thus, the relationship between the antiallodynic effects of R-PIA and ATP-sensitive potassium channel were investigated in a neuropathic model. Methods: Male Sprague Dawley rats were prepared by tightly ligating the left lumbar 5th and 6th spinal nerves and implantation of a chronic lumbar intrathecal catheter for drug administration. The mechanical allodynia was measured by applying von Frey filaments ipsilateral to the lesioned hind paw. And the thresholds for paw withdrawal assessed. In study 1, either R-PIA (0.5, 1 and $2{\mu}g$) or saline were administered intrathecally for the examination of the antiallodynic effect of R-PIA. In study 2, glibenclamide (2, 5, 10 and 20 nM) was administered intrathecally 5 min prior to an R-PIA injection for investigation of the reversal of the antiallodynic effects of R-PIA. Results: The antiallodynic effect of R-PIA was produced in a dose dependent manner. In study 1, the paw withdrawal threshold was significantly increased with $2{\mu}g$ R-PIA (P < 0.05). In study 2, the paw withdrawal threshold with $2{\mu}g$ R-PIA was significantly decreased almost dose dependently by intrathecal pretreatment of 5, 10 and 20 nM glibenclamide (P < 0.05). Conclusions: These results demonstrated that an intrathecal injection of ATP-sensitive potassium channel blockers prior to an intrathecal injection of adenosine A1 receptors agonist had an antagonistic effect on R-PIA induced antiallodynia. The results suggest that the mechanism of mechanical antiallodynia, as induced by an intrathecal injection of R-PIA, may involve the ATP-sensitive potassium channel at both the spinal and supraspinal level in a rat nerve ligation injury model.
In anesthetized dogs, antidiuretic action of intravenously administered BRL 34915 (10.0~30.0 $\mu$/kg) was blocked by renal denervation, whereas it was not affected by glibenclamide, a selective $K_{ATP}$ blocker, given into renal artery. Diuretic action in ipsilateral kidney produced by intrarenal administration of BRL 34915 was not influenced by renal denervation, but blocked completely by glibenclamide given into the vein. Above results suggest that the antidiuretic action of BRL 34915 is mediated by renal sympathetic nerves and the diuretic action is caused by opening of $K^+$ channel within kidney.
목적: Guinea pig heart의 ATP sensitive $K^{+}$ channel xenopus oocyte에 발현시켜 연구하고져 본 실험을 행하였다. 실험방법: 기니픽 심장으로부터 ,RNA를 분리하여 50ng/$\mu$l의 농도로 50nl를 xenopusdp 주입하였다. Xenpus oocyte에서 conventional electrode를 이용 막전휘를 측정하였고, pH selective 미세전극으로 세포내 pH를 측정하였다. 막전위에 미치는 potassium channel opener, blocker, KCN의 작용을 관찰하였다. 결과: 기니픽 심장 mRNA를 주입하거나 주입하지 않은 xenopus oocyte에서 $K^{+}$channel opener인 cromakalin, RP49356등은 과분극을 일으키지 못하였다. 그러나 세포내 ATP 감소제인 KCN은 농도 의존적으로 과분극을 일으켰으나 ,glibenclamide에 의해 차단되는 않았다. mRNA를 주입한 oocyte에서 Na-H 자극제인 NH$_4$Cl은 pH 변동을 일으켜 NA-H exchange를 expression 시켰다. 결론: Xenopus oocyte는 cromakalin등에 의해 open되는 $K^{+}$channel 은 없었고, 기니픽 심근의 ATP sensitive $K^{+}$channel로 expression 되지 않았으나 Na-H exchange 는 expression 됨을 알 수 있었다. KCN으로 open 되는 $K^{+}$channel이 있었으나 glibenclamide에는 차단되지 않는 channel이였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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