한라산에 자생하는 왕벚나무(Prunus yedoensis)의 미성숙 접합자배로부터 배발생 캘러스를 거쳐 체세포배를 유도할 수 있었으며, 이들 체세포배로부터 식물체를 재분화시킬 수 있었다. 배발생 캘러스는 1.0 mg/L 2,4-D와 0.1 mg/L BAP가 혼합 처리된 MS 배지에서 가장 효과적으로 유도되었으며, 그 중에서 90%가 배발생 캘러스였다. 또한 배발생 캘러스는 만개 후 45일된 종자의 접합자배에서 전체 60%가 발생되어 가장 양호하였다. 유도된 배발생 캘러스를 1.0 mg/L 2,4-D와 0.1 mg/L BAP가 혼합처리된 MS 배지에서 4주 간격으로 계대배양하여 구형 또는 심장형으로 발달한 체세포배를 얻을 수 있었고, 이들 체세포배는 식물생장조절제가 첨가되지 않은 MS 배지에서 배양하여 정상적인 자엽을 갖는 체세포배를 얻을 수 있었다. 이들 체세포배들은 배지의 종류에 따라 발아율은 0~49%로 맡은 차이를 보였으나, 식물생장조절제가 첨가되지 않은 1/2 MS 배지에서 49%의 발아율을 보여 가장 양호하게 식물체로 재분화되었다.
Bulbophyllum auricomum Lindl. is very popular among orchid growers due to the attractive fragrance of its flowers and has become an endangered orchid in Myanmar. In this study, we carried out an aseptic technique that can be used to conserve this endangered orchid species. The seeds of B. auricomum Lindl. were obtained from artificial pollination and cultured in MS basal medium for seed germination. The effect of coconut water and BAP in MS basal medium on callus induction was investigated. The highest callus induction was found at 2.0 mg/L BAP. The maximum growth of protocorm-like bodies (PLBs) was evaluated, and the best response was observed on MS medium supplemented with 150 mL/L coconut water at pH 5.6. MS basal medium supplemented with 150 mL/L coconut water along with 2.0 mg/L BAP and 1.0 mg/L NAA (MCBN) showed the highest number of plantlets at 15℃ at the second week of culture. At the second and third week of culture, MS medium supplemented with 2.0 mg/L BAP and 1.0 mg/L NAA (MBN) showed the best result in terms of the number of leaves and the longest leaves at 15℃ and 25℃, respectively. The present study showed evidence of successful in vitro propagation of B. auricomum Lindl.
작약 뿌리 절편으로부터 유도된 캘러스 클론으로부터 부정근 발생에 대한 최적의 배양조건을 조사하기 위하여 뿌리 절편으로부터 캘러스 유도를 위해서 먼저 0.5, 1.0, 2.0, 3.0, 4.0 mg/L 농도의 오옥신(IAA, NAA, IBA, 2,4-D)과 0, 0.5, 1.0, 2.0 mg/L 농도의 싸이토카닌(kinetin, zeatin, BAP)를 조합한 MS 배지에서 배양하였다. 캘러스 클론으로부터 부정근 유도와 길이 생장은 0.1, 0.5, 1.0 mg/L 농도의 오옥신(IAA, NAA, IBA) 또는 싸이토카닌(kinetin, zeatin, BAP)을 단독으로 첨가한 배지에서 암 조건으로 그리고 0.1, 0.5, 1.0 mg/L 농도의 IBA와 zeatin을 각각 조합 첨가한 배지에서 명/암 조건으로 6주 동안 배양하였다. 캘러스 형성은 다른 조합 처리보다 1.0 mg/L 농도의 NAA와 zeatin을 조합 첨가한 배지에서 가장 효과적이었으며, 캘러스 클론으로부터 부정근 발생 수와 부정근의 길이 생장은 IBA 단독처리의 경우 각각 6.66개와 4.82 cm, zeatin 단독 처리의 경우 2.32개와 0.92 cm로 다른 호르몬에 비해 우수하였다. 특히 0.1 mg/L IBA와 0.5 mg/L zeatin을 조합 첨가한 배지에서 광 조건으로 배양할 경우 가장 많은 부정근이(14.06) 형성되었으며, 동일배지에서 암 조건으로 배양할 경우 부정근의 길이가 가장 긴 5.45 cm로 측정되어 가장 효과적인 농도와 조합임을 알 수 있었다. 이러한 작약의 기내 배양에 대한 최적의 배양 조건은 기내배양을 통해 작약 부정근의 대량 생산을 위한 배지로 사용할 수 있음을 보여 주었다.
Leaf explants of the cucumber (Cucumis sativus L.) were cultured on Murashige and Skoog's (MS) medium supplemented with various concentrations of $\alpha$-naphthalene acetic acid (NAA) and 6-benzylaminopurine (BAP). Direct shoot orgnogenesis as well as callus formation with somatic embryos and multiple shoots was observed from leaf explants of cvs. Shinhukjinju and Chungjang. The highest frequency of shoot formation 80% was observed on MS medium supplemented with NAA/BAP (5.0 ${\mu}{\textrm}{m}$/2.5 ${\mu}{\textrm}{m}$), with explants forming 3-7 shoots. Shoots formation occured within 3 to 4 weeks. Only one subculture of calli was required for plant regeneration on normal growth regulator-free medium. Plantlets transferred to soil developed into plants of normal appearance, which flowered and set fruits.
Shoot proliferation was obtained from shoot tips and nodal explants of Vitex negundo L. on MS medium supplemented with either BAP or KIN (0.1-2.0 mg/L) alone or in combination with NAA (0.1 mg/L). The concentrations of cytokinins combined with NAA produced multiple shoots from shoot tips and nodal explants. The highest mean percentage (84.3$\pm$8.0) of shoot multiplication's were observed on nodal explants in the presence of BAP (1.5 mg/L) and NAA (0.1 mg/L) followed by shoot tips (65.0$\pm$5.0). The regenerated shootlets were rooted on MS basal medium IAA, IBA, NAA (0.1-1.5 mg/L). The maximum number of roots (51.0$\pm$2.6) was achieved on the medium containing IBA (1.0 mg/L) followed by other auxins (NAA, IAA). The regenerated plants were successfully transferred to a mixture of vermiculate and soil. About 95% of the plantlets survived when transferred to the field.
Callus-inducing ability of Alnus hirsuta was examined by culturing various tissues (leaf, hypocotyl, cotyledon and seed) on NT (Nagata & Takebe) medium, supplemented with 2.5$\mu$M 2,4-D. Leaf-originated callus was cultured on media varying in auxin (IBA and NAA) and cytokinin (BAP) concentrations to examine the effects of auxin and cytokinin on callus growth. Maximum growth was obtained at 10 $\mu$M IBA+10$\mu$M BAP and 10$\mu$M NAA without cytokinin. Cell suspensions established from cotyledon-originated callus yielded viable protoplasts after incubation for 16-18 hours in an enzyme mixture (1% (w/v) Onozuka R-10 0.5% (w/v) Macerozyme, CPW salts and 13% (w/v) mannitol, pH 5.8). Protoplasts were cultured on NT medium, supplemented with glucose, hormones and coconut milk. After 6 weeks of culture, protoplasts sustained cell divisions to form microcallus, which showed various colors from red to white.
For mass multiplication of an important medicinal plant Coleus forskohlii, a procedure for the high frequency regeneration of Coleus forskohlii has been developed using leaf explants via callus culture. Callus formation occurred in MS medium supplemented with 1-2 mg/L each of NAA and BAP. A large number of shoots were formed on MS + 1 mg/L BAP from 50-60 days old greenish calli. Rooting of healthy shoots occurred on 0.1-0.4 mg/L NAA. The protocol described could be useful in future for genetic manipulation of this plant species.
본 연구는 수수의 성숙 종자로부터 캘러스유기 및 재분화 효율 조사하기위하여 수행되었다. 배발생 캘러스 형성을 살펴보기 위해 생장조절제 효과를 조사하였다. 수수 성숙종자로부터 캘러스 유기에 적합한 생장조절제 종류와 농도는 2 mg/L 2,4-D인 것으로 나타났다. 배발생 캘러스의 고효율 빈도는 B5 배지에 2 mg/L 2,4-D을 첨가하였을 때 가장 양호한 것으로 나타났다. 배발생 캘러스로부터 식물체 재분화는 BAP와 IBA를 넣은 MS 배지가 가장 적절한 것으로 나타났다. BAP 농도가 높을수록 신초재분화가 활발하였다. 따라서, 본 연구 결과로부터 수수 기내배양시 신초와 발근 형성에 효과적인 생장조절제 조합은 0.5 $mg\;l^{-1}$ BAP와 0.25 $mg\;l^{-1}$ IBA인 것으로 나타났다.
담배 (Nicotiana tabacum cv. BY4)의 약을 Nakata배지에 치상하여 반수체식물을 유도하였고, 반수체와 이배체 식물의 잎절편으로부터 0.5 mg/L 2,4-D가 첨가된 MS배지에서 캘러 스를 유도하였다. 이배체와 반수체의 캘러스를 배양 4주 후 2.0 mg/L 2,4-D와 0.1 mg/L BAP, 2.0 mg/L Kinetin이 조합 처리된 MS기본배지에서 계대배양 및 현탁배양을 실시하였 다. 현탁배양된 세포들을 100$\mu\textrm{m}$와 65$\mu\textrm{m}$의 나일론 망으로 걸러서 0.8% low melting agarose를 사용하여 카드뮴과 PFP 가 조합된 선발배지에 도말하였다. 도말 배양 30일 후 형성된 저항성 세포주를 선발하여 경화시키기 위해 카드뮴을 500 $\mu$M과 1,000 $\mu$M 을 처리한 다음 500 $\mu$M에서 세포주를 선발하였다. 선발된 세포주를 0.5, 1.5, 2.0 mg/L BAP 단독 및 500$\mu$M과 1,000$\mu$M의 카드뮴이 첨가된 BAP와 auxin의 조합처리구에서 식물체 재생을 유도하였다. 이때 식물체 재생은 카드뮴이 첨가되지 않은 처리구에서 일어났으며, 이배체인 경 우에는 카드뮴 단독처리시 선발된 세포주에서, 반수체인 경우에는 카드뮴과 PFP 조합처리시 선발된 세포주에서 식물체 재생이 일어났다. 세포의 생장이 왕성한 카드뮴 500$\mu$M의 것을 선발하여 식물체를 재생시켰고, 재생된 시물체의 잎, 줄기 및 뿌리의 단백질 유형을 분석하였다. 대조구로서는 스트레스를 받지 아니한 식물체를 사용하였다. Bradford방법으로 정량하였고, 그 함량은 재생된 식물체의 잎에서 6.5188 $\mu\textrm{g}$/mg.fr.wt., 줄기에서 5.3611 $\mu\textrm{g}$/mg.fr.wt. 뿌리에서 3.0213 $\mu\textrm{g}$/mg.fr.wt.이었다. 반면에 대조구의 잎에서는 5.9652 $\mu\textrm{g}$/mg.fr.wt., 줄기에서 3.5974 $\mu\textrm{g}$/mg.fr.wt. 뿌리에서 4.3766 $\mu\textrm{g}$/mg.fr.wt.이었다. 일차원 SDS-PAGE를 Laemmli 방법으로 수행한 경우 잎은 카드뮴 스트레스에 대하여 내성이 있는 것은 198.7 KD등 49개가 나타났다. 스트레스로 인하여 사라진 밴드는 160.5 KD등 4개, 합성된 단백질 밴드는 83.4 KD 등 3개이었다. 줄기에서는 카드뮴 스트레스 내성의 단백질 밴드는 43 KD등 41개가 나타났고, 사라진 밴드는 114.8 KD등 5개이었다. 또한 합성되어진 단백질 밴드는 128.7 KD 등 6개가 나타났다. 뿌리에서는 내성 단백질 밴드는 166.9 KD 등 27개, 사라진 밴드는 198.7 KD 이었고, 83.4 KD 등 5개의 단백질 밴드가 나타났다.
주목의 줄기절간 조직배양에 의한 다경줄기 유도를 위해 식물생장조절물질 중 4가지 형태의 싸이토키닌 효과를 조사 한 바, BAP, kinetin 및 thidiazuron의 경우 거의 반응을 보이지 않았으나, zeatin을 5 $\times$$10^{-5}$M 처리하였을 경우 평균 6 개 이상의 다경줄기를 얻을 수 있었으며, 배양시료에 따라서 는 12개 이상의 다경을 형성하는 경우도 관찰되었다. 유도된 다경줄기를 지속적으로 계대배양하여 줄기를 신장시킨 후 이로부터 2 cm 크기의 기내삽목도 가능하였다. 기내발근율은 LP기본배지를 이용하는 것이 비교적 양호하였으나 효율은 3%에 지나지 않았다. 기외발근의 경우, 약 34%까지 발근율을 올릴 수 있었으며 포지에 이식시킨 조직배양묘는 1년이상 정상적인 생육을 보이고 있음이 관찰되었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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