Purpose To investigate the physico-chemical properties of CB-ph [2-benzoyloxycinnamaldehyde], an anticancer drug obtained from Cinnamomum cassia using methylenechloride. and its stability in various aqueous solutions. Results CB-ph was rarely soluble in water but soluble in methanol and very soluble in ether. Kinetic salt effect on degradation of CB-ph in buffer solutions at pH 4.0 and 6$0^{\circ}C$ showed a linear relationship having a positive slope that means reactions between hydronium ions and protonated substrates. (omitted)
Comamonas sp. strain DJ-12 is a 4-chlobiphenyl(4CB)-degrading bacterium that was reidentified from Pseudomonas sp. DJ-12. The genomic DNA was isolated from the strain DJ-12 and amplified by PCR with primers for cloning pcbABCD genes responsible for degradation of 4CB. The amino acid sequences deduced from the nucleotide sequences of pcbA1, pcbA2, pcbA3, pcbA4, pcbB, pcbC2, and pcbD2 genes showed 91, 87, 99, 87, 97, 90 and 87% homologies with those of Pseudomonas sp. KKS102, respectively. The pcbC1D1 genes that are involved in the degradation of (4-chloro)1,2-dihydroxybiphenyl produced from 4CB by pcbAB gene products were previously reported in the recombinant plasmid pCU1 from Pseudomonas sp. DJ-12. However, the pcbC2D2 genes in the plasmid pCT4 and pCT5 cloned from Comamonas sp. DJ-12 in this study showed 51 and 62% homologies with those of pcbC1D1 in their nucleotide sequences. The pcbC1D1 and pcbC2D2 genes were found by Southern hybridization to be located at different loci on the chromosome of DJ-12 strain. These results indicate that Comamonas sp. strain DJ-12 has two different sets of pcbCD genes responsible for deg-radation of (4-chloro)1,2-dihydroxybiphenyl.
Pseudomonas sp. P20 was a bacterial isolate which has the ability to degrade 4-chlorobi- phenyl(4CB) to 4-chlorobenzoic acid via the process of meta-cleavage. The recombinant plasmid pCK1 was constructed by insetting the 14-kb EcoRI fragment of the chromosomal DNA containing the 4CB-degrading genes into the vector pBluescript SK(+). Subsequently, E. coli XL1-Blue was transformed with the hybrid plasmid producing the recombinant E. coli CK1. The recombinant cells degraded 4CB and 2,3-dihydroxybiphenyl(2,3-DHBP) by the pcbAB and pcbCD gene products, respectively. The pcbC gene was expressed most abundantly at the late exponential phase in E. coli CK1 as well as in Pseudomonas sp. P20, and the level of the pcbC gene product, 2,3-DHBP dioxygenase, expressed in E. coli CK1 was about two-times higher than in Pseudomonas sp. P20. The activities of 2,3-DHBP dioxygenase on catechol and 3-methylcatechol were about 26 to 31% of its activity on 2,3-DHBP, but the enzyme did not reveal any activities on 4-methylcatechol and 4-chlorocatechol.
The competitive quantitative PCR method targeting pcbC gene was developed for monitoring 4-chlorobiphenyl(4CB)-degrading bacteria, Pseudomonas sp. strain DJ-12, in soil microcosms. The method involves extraction of DNA from soil contaminated with 4CB, PCR amplification of a pcbC gene fragment from the introduced strain with a set of strain-specific primers, and quantification of the elec-trophoresed PCR product by densitometry. To test the adequacy of the method, Pseudomonas sp. strain DJ-12 was introduced into both contaminated and non-contaminated soil microcosms amended with 4CB. Pseudomonas sp. strain DJ-12 was monitored and quantified by a competitive quantitative PCR in comparison with 4CB degradation and the result was compared to those obtained by using the conventional cultivation method. We successfully detected and monitored 4CB-degrading bacteria in each microcosm and found a significant linear relationship between the number of 4CB-degrading bacteria and the capacity for 4CB biodegradation. The results of DNA spiking and cell-spreading experiments suggest that this competitive quantitative PCR method targeting the pcbC gene for monitoring 4CB- degrading bacteria appears to be rapid, sensitive and more suitable than the microbiological approach in estimating the capacity of 4CB biodegradation in environmental samples.
The homology among the genes coding for degradation of bipheny(BP) and 4-chlorobiphenyl(4CB) was comparatively analyzed by Southern hybridization in several BP/4CB degrading bacterial strains. As the hybridization results of their genomic DNAs with pcbABCD as the DNA probe, the group of Pseudomonas sp. DJ-12. P08 and P27 strain was separated by the group of P20 and P1242 strains. The P. pseudoalcaligenes KF707 showed the hybidization signal which was homologous to the group of DJ-12, but they had different restriction endonuclease sites. The pcbAB genes in pCUl recombinant plasmid from Pseudomonas sp. DJ-12 appeared to be homologous to pchAB genes in pKTF20 cloned from P. pseudoalcaligenes KF707, but the C genes in both strains were not homologous. The bphABC in pKTF20 showed the signals homologous to the cbp ACB in pAW6194 cloned from P. putida OU83, but homologous signal was not found botween the pcbABCD genes in pCUl and the cbpADCB genes in pAW6194 recombbinant plasmid.
Kim, Ji-Young;Kim, Young-Chang;You, Lim-Jai;Lee, Ki-Sung;Ok, Ka-Jong;Hee, Min-Kyung;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology
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v.35
no.1
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pp.53-60
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1997
Pseudomonas sp. P20 and Pseudomonas sp. DJ-12 isolated from the polluted environment are capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl (4CB) to produce benzoic acid and 4-chlorobenzoic acid (4CBA) respectively, by pcbABCD-encoded enzymes. 4CBA can be further degraded by Pseudomonas sp. DJ-12, but not by Pseudomonas sp P20. However, the meta-cleavage activities of 2, 3-dihydroxybiphenyl (2, 3-DHBP) and 4-chloro-2, 3-DHBP dioxygenases (2, 3-DHBD) encoded by pcbC in Pseudomonas sp. P20 were stronger than Pseudomonas sp. DJ-12. In this study, the pcbC gene encoding 2, 3-DHBD was cloned from the genomic DNA of Pseudomonas sp. P20 by using pKT230. A hybrid plasmid pKK1 was constructed and E. coli KK1 transformant was selected by transforming the pKK1 hybrid plasmid carrying pcbC into E. coli XL1-Blue. By transferring the pKK1 plasmide of E. coli KK1 into Pseudomonas sp. DJ-12 by conjugation, a recombinant strain Pseudomonas sp. P20, Pseudomonas sp. DJ-12, and the recombinant cell assay methods. Pseudomonas sp. DJ12-C readily degraded 4CB and 2, 3-DHBP to produce 2-hydroxy-6-oxo-6-phenylhexa-2, 4-dienoic acid (HOPDA), and the resulting 4CBA and benzoic acid were continuously catabolized. Pseudomonas sp. DJ12-C degraded 1 mM 4CB completely after incubation for 20 h, but Pseudomonas sp. P20 and Pseudomonas sp. DJ-12 showed only 90% and Pseudomonas sp. DJ-12 had, but its degradation activity to 2, 3-DHBP, 3-methylcatechol, and catechol was improved.
Pseudomonas sp. P20 was shown to be capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl (4CB) to produce the corresponding benzoic acids wnich were not further degraded. But the potential of the strain for biodegradation of 4CB was shown to be excellent. The pcbA, B, C and D genes responsible for the aromatic ring-cleavage of biphenyl and 4CB degradation were cloned from the chromosomal DNA of the strain. In this study, the pebC and D genes specifying degradation of 2, 3-dihydroxybiphenyl (2, 3-DHBP) produced from biphenyl by the pebAB-encoded enzymes were cloned by using pBluescript SK(+) as a vector. From the pCK102 (9.3 kb) containing pebC and D genes, pCK1022 inserted with a EcoRI-HindIII DNA fragment (4.1 kb) carrying pebC and D and a pCK1092 inserted with EcoRI-XbaI fragment (1.95 kb) carrying pebC were constructed. The expression of pcbC and D' in E. coli CK102 and pebC in E. coli CK1092 was examined by gas chromatography and UV-vis spectrophotometry. 2.3-dihydroxybiphenyl was readily degraded to produce meta-cleavage product (MCP) by E. coli CK102 after incubation for 10 min, and then only benzoic acid(BA) was detected in the 24-h old culture. The MCP was detected in E. coli CK1022 containing pebC and 0 genes (by the resting cells assay) for up to 3 h after incubation and then diminished completely in 8 h, whereas the MCP accumulated in the E. coli CK1092 culture even after 6 h of incubation. The 2, 3-DHBP dioxygenases (product of pebC gene) produced by E. coli CK1, CK102, CK1023, and CK1092 strains were measured by native PAGE analysis to be about 250 kDa in molecular weight, which were about same as those of Pseudomonas sp. DJ-12, P. pseudoa1caligenes KF707, and P. putida OU83.
The pchABCD genes in Pseudomonas sp. DJ-12 speciyin degradation o 4-chlorobiphenyl(4CB) were cloned in Eschericia coli. The cloned cells of E. coli CU1 and CU101 showed to produce 2,3-dihydroxybiphenyl (2,3-DHBP) from 4-chlorobiphenyl by dechlorination, as Pseudomonas so. DJ-12 produced 2,3-DHBP from both biphenyl and 4CB. In particular, E. coli CU101 transformed with the recombinant plasmid of pCU101 revealed dechlorination activity to produce 2,3-DHBP from 4CB without production of 4-chlorobenzoic acid. Therefore, the pcbAB genes (2.2 kb in size) cloned from the chromosome of Pseudomonas sp. DJ-12 were found to have dechlorination activity on 4CB to produce 2,3-DHNP.
A bacterial isolate of DJ-12 capable of degrading 4-chlorobenzoic acid (4CBA) as well as 4-chlorobiphenyl (4CB) was used in this study. Its biodegradability of 4CBA was tested and the location of the genes coding for degradation of 4CBA was investigated by the nethod of in vivo cloning. The genes were found to be existed in the plasmid of pDJ121 which is about 65kb in size and which has 9, 11, 10, and 19 restriction sites for EcoRI, HindIII, SalI, and PstI, respectively. The hybrid plasmid of pDK450 was constructed by ligation of the EcoRI fragments of pDJ121 with pKT230 as a vector. In the recombinant cells selected through transformation of the hybrid vector into Pseudomonas putida KT2440, the 4CBA-degrading genes of DJ-12 were proved to be cloned and expressed in the Pseudomonas sp.
The pchAB genes of Pseudomonas sp. DJ-12 produce the enzymes of 4-chlorobipheny] (4CB) dioxygenase and dihydrodiol dehydrogenase which act on the first and second steps in degradation of 4CB and biphenyl. The genes were cloned in E coli XLI-Blue. The pcbAB genes of about 2.2 kb in size were contained in the pCUlO1 hybrid plasmid in the cloned cell of CUIOI. The genes were found to have their own promoter and three restriction sites for HindlII. 2,3-dihydroxybiphenyl was detected by the resting cell assay, as the metabolite transformed from biphenyl by the cloned cell of CUIOI. This means that the pcbAB genes are well expressed in E. coli. But dechlorination was unlikely involved in the pchAB gene expression but was believed to occur by functioning on 4CBA produced after ring-cleavage of 4CB.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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