Accurate and efficient microbial diagnosis is crucial for effective molecular diagnostics, especially in the field of human healthcare. The gold standard equipment widely employed for detecting specific microorganisms in molecular diagnosis is quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR). However, its limitations in low metagenomic DNA yield samples necessitate exploring alternative approaches. Digital PCR, by quantifying the number of copies of the target sequence, provides absolute quantification results for the bacterial strain. In this study, we compared the diagnostic efficiency of qRT-PCR and digital PCR in detecting a particular bacterial strain (Staphylococcus aureus), focusing on skin-derived DNA samples. Experimentally, specific primer for S. aureus were designed at transcription elongation factor (greA) gene and the target amplicon were cloned and sequenced to validate efficiency of specificity to the greA gene of S. aureus. To quantify the absolute amount of microorganisms present on the skin, the variable region 5 (V5) of the 16S rRNA gene was used, and primers for S. aureus identification were used to relative their amount in the subject's skin. The findings demonstrate the absolute convenience and efficiency of digital PCR in microbial diagnostics. We suggest that the high sensitivity and precise quantification provided by digital PCR could be a promising tool for detecting specific microorganisms, especially in skin-derived DNA samples with low metagenomic DNA yields, and that further research and implementation is needed to improve medical practice and diagnosis.
A Bacillus sp. strain producing celluase and xylanase was isolated from environmental soil with LB agar plate containing carboxymethylcellulose (CM-cellulose) and beechwood xylan stained with trypan blue as substrates, respectively. Based on the 16S rRNA gene sequence and API 50 CHL test, the strain was identified as B. subtilis and named B. subtilis NC1. The cellulase and xylanase from B. subtilis NC1 exhibited the highest activities for CM-cellulose and beechwood xylan as substrate, respectively, and both enzymes showed the maximum activity at pH 5.0 and $50^{\circ}C$. We cloned and sequenced the genes for cellulase and xylanase from genomic DNA of the B. subtilis NC1 by the shot-gun cloning method. The cloned cellulase and xylanase genes consisted of a 1,500 bp open reading frame (ORF) encoding a 499 amino acid protein with a calculated molecular mass of 55,251 Da and a 1,269 bp ORF encoding a 422 amino acid protein with a calculated molecular mass of 47,423 Da, respectively. The deduced amino acid sequences from the genes of cellulase and xylanase showed high identity with glycosyl hydrolases family (GH) 5 and 30, respectively.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.42
no.11
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pp.1872-1877
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2013
Lactic acid bacteria were selected on the basis of lactic acid producing ability from kimchi, a traditional Korean fermented food. Among the initial screening of over 150 strains selected from the sample, 27 strains were selected as lactic acid producing bacteria, and 4 strains were finally selected based on their ability to produce relatively high levels of lactic acid. The four strains were identified as Lactobacillus (L.) plantarum Gk04, Pediococcus pentosaceus Gk07, L. brevis Gk35 and L. curvatus Gk36 by the conventional morphological, cultural, physiological and biochemical characteristics, as well as by 16S rRNA sequence analysis. Among the identified lactic acid bacteria, L. curvatus Gk36 was used for soymilk fermentation. The viable cell counts and acidity values measured for the L. curvatus Gk36 were comparable to the commmercial L. acidopillus. Thus, the L. curvatus Gk36 is a potential probiotic strain to prepare fermented soy products, such as kephir, yogurt, tempeh and soy sauce.
A bacterium producing the extracellular mannanase was isolated from Korean soybean paste. The isolate WL-7 has been identified as Bacillus subtiis on the basis on its 16S rRNA sequence, fatty acid composition, morphology and biochemical properties. The mannanase of culture supernatant was the most active around $55^{\circ}C$ and pH $6.0^{\circ}C$, and retained 90% of its maximum activity at range of pH 5.0∼7.5 and $50∼60^{\circ}C$. The additional carbohydrates including lactose, $\alpha$-cellulose, avicel, locust bean gum (LBG), wheat bran and konjak increased dramatically the mannanase productivity of strain WL-7. Especially, the maximum mannanase productivity was reached to 224 U/ml in LB medium supplemented with both 0.5% LBG and 0.5% konjak, which was approximately 200-folds more than that in LB medium. It was suggested that the increase of mannanase production was owing to induction of mannanase biosynthesis by both LBG and konjak hydrolysates transported following initial hydrolysis by extracellular mannanase during the cell growth.
${\gamma}$-PGA(poly-${\gamma}$-glutamic acid) is an unusual anionic polypeptide that is made of D- and L-glutamic acid units connected by amide linkages between ${\alpha}$-amino and ${\gamma}$-carboxylic acid groups. ${\gamma}$-PGA has been isolated from many kinds of organisms. Many Bacillus strains produce ${\gamma}$-PGA as a capsular material of an extracellular viscous material. It is safe for eating as a viscosity element of fermented soybean products such as Chungkookjang and Natto. It is biodegradable, edible and nontoxic toward humans and the environment and its molecular weight varies from ten thousand to several hundred thousand depending on the kinds of strains used. Therefore, potential applications of ${\gamma}$-PGA and its derivatives have been of interest in the past few years in a broad range of industrial fields such as food, cosmetics, medicine, water-treatment, etc. In this study, a bacterium, Bacillus subtilis GS-2 isolated from the Korean traditional seasoning food, Chungkookjang could produce a large amount of ${\gamma}$-PGA with high productivity and had a simple nutrient requirement. Based on carbon utilization pattern and partial 16S rRNA sequence analysis, the GS-2 strain was identified as B. subtilis. The determination of purified ${\gamma}$-PGA was confirmed with thin layer chromatography (TLC), high performance liquid chromatography (HPLC), fourier transform infrared (FT-IR) spectra, and $^1H$-nuclear magnetic resonance ($^1H$-NMR) spectroscopy.
Kim, Byung-Hyuk;Baek, Kyung-Hwa;Sung, Youl-Boong;Choi, Gang-Kook;Cho, Dae-Hyun;Oh, Hee-Mock;Kim, Hee-Sik
Proceedings of KOSOMES biannual meeting
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2007.11a
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pp.185-185
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2007
Starting at the beginning q the 20th century, increasing amounts of tetrach1oroethene (PCE) and trichloroethene (TCE)were manufactured due to the extensive use of these compounds in industry, in the military, and in private households, mainly as nonflammable solvents. This widespread use, along with careless handling and storage, are among the most serious contaminants of soil, sediment and groundwater. Highly chlorinated ethenes are typically not degraded through oxygenation by aerobic bacteria Since complete reductive dechlorination of PCE and TCE to ethene (ETH) has been observed in anaerobic enrichment culture, anaerobic dehalorespiring bacteria have received increased attention in the last decade. Under anaerobic conditions, these compounds con be reductively dehalogenated to less-chlorinated ethenes or innocuous ethene by microorganism through dehalorespiration. We have been studying anaerobic enrichment culture which used lactate as the electron donor for reductive dechlorination of PCE to ETH the anaerobic mixed microbial culture was enriched from the sediment sample taken from site contaminated with PCE. PCE was consistently and completely converted to ethene. In addition, the accumulation of intermediate products such as 1,2-ds-dichloroethene (cis-DCE) and vinyl chloride (VC) was observed in the anaerobic mixed microbial culture. the established dechlorinating enrichment culture was analyzed by DGGE using primers specific to DefrJ1ococcoides 16S rRNA gene sequences. In conclusion, we established the PCE dechlorinating enrichment culture and confirmed the existence of Dehalococcoides in an enrichment culture.
Oh, HyeonHwa;Ryu, MyeongSeon;Heo, Jun;Jeon, SaeBom;Kim, Young Sang;Jeong, DoYoun;Uhm, Tai-Boong
Korean Journal of Microbiology
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v.50
no.4
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pp.319-326
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2014
Two bacterial strains, named as LE17 and LE22, were isolated from traditionally fermented soybean products in order to select lactic acid bacteria for the reduction of biogenic amines and harmful bacteria. Both strains were identified as Pediococcus pentosaceus by 16S rRNA sequence analysis and additional biochemical tests. The strain LE17 reduced the amines by 13.7% for histamine and by 25.9% for tyramine, when it grew in minimal synthetic media containing 0.1% (w/v) histamine and 0.1% tyramine at $30^{\circ}C$ for 48 h, while the strain LE22 reduced the amines by 23.7% for histamine and by 15.7% for tyramine. Both strains also had broad inhibition spectra against pathogens. Considering their properties, they could be used as starters for industrial soybean fermentation.
Brown spot and sheath rot of rice are caused by fungal pathogens such as Curvularia lunata, Cochliobolus miyabeanus, and Sarocladium oryzae, and cause losses such as reduced rice yield and quality, which is an enormous problem with serious long-term effects. To search biological control agents of phytopathogenic fungi, five kinds of useful Bacillus-like isolates which are excellent in extracellular enzyme activity and produce siderophore were selected from paddy soil of Sunchang in Korea. The selected isolates were tested for excellent antifungal activity against three of the phytopathogenic fungi that frequently occur in rice, and JSRB 177 strain had the most excellent antifungal activity. Based on the experimental results, JSRB 177 is finally selected as a candidate for biological control and identified to Bacillus subtilis through 16S rRNA sequence analysis. In addition, physiological characteristics of JSRB 177 confirmed by analysis of carbohydrate fermentation patterns and enzyme production ability. Based on the above results, JSRB 177 is expected to be used as a biological control agent for the rice pathogenic fungi. In the future, further studies related to industrialization such as port test and establishment of mass production process are needed.
Go-Wun Yeo;Dong-Geun Lee;Ju-Hui Kim;Min-Joo Park;Jin Sun Kim;Yuck Yong Kim;Ki Hwan Yoo;Yong Jae Choi;Sang-Hyeon Lee
Journal of Life Science
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v.33
no.6
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pp.506-511
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2023
The purposes of this study were to isolate and characterize lactic acid bacteria with antibacterial activity against Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) from fermented food and to confirm the antibacterial activities of fermented rice products using the isolated lactic acid bacterium. Three bacteria, namely, Weissella sp. ISF-1, ISF-2, and ISF-3, were selected from fermented squid based on the 16S rRNA gene sequence. All three strains grew well in an MRS medium containing 5% (w/v) NaCl and showed antibacterial activity against Bacillus cereus, Staphylococcus aureus, and MRSA. Their growth was excellent at 0% ~ 5% (w/v) NaCl and relatively good up to 7% (w/v) NaCl. The initial pH of 8 was optimal for their growth, and good growth was also observed at pH 6, 7, and 9. The lyophilisates of the fermented rice using Weissella sp. ISF-1 showed antibacterial activities against B. cereus, S. aureus, and MRSA. We inferred that isolated lactic acid bacteria could be useful in the development of probiotics and biopreservatives for foods and in the treatment of MRSA and may increase the value of rice products.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2010.10a
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pp.18-18
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2010
Molecular insights on the role of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) in potato tuberization are reported in the present study. The PGPRwere isolated from the soil collected from potato fields of Highland Agricultural Research Centre, Pyeongchang, Korea and they were identified to the genus level based on the 16S rRNA sequence analysis. These PGPR were heat-killed, filtered and the filtrates were addedindividually at a concentration of $10^7\;cfu\;mL^{-1}$ in MS (Murashige and Skoog's) medium supplemented with 7% (w/v) sucrose to study their influence on in vitro potato tuberization. Tuber initiation occurred early in untreated control, while tuber growth was pronounced in case of PGPR treatments. The control explants showed tuber formation as a result of sub-apical swelling of stolons while several sessile tubers formed directly in the axils of nodal cuttings in case of PGPR treatments, which is an indication of strong induction for tuberization. Theexplants cultured on MS medium supplemented with bacterial isolate 6 (Bacillus firmus strain 40) showed highest average tuber yield (Ca. 12.56 g per treatment) after 30 days of culture, which was 3 folds increase over the untreated control. A significant increase in lipoxygenase (LOX1) mRNA expression and activity of LOX enzyme were also detected in the tubers induced on PGPR treatments as compared to untreated control. This LOX expression level correlated with increased tuber growth and tuber yield. Further studies focused on the role of bacteria cell wall components, growth regulators and signal molecules released by PGPR are under investigation to elicit clues for PGPR-mediated signal pathway controlling potato tuberization.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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