Lee, H.;Kim, S. U.;Kim, J. S.;Byun, T. H.;Lee, S. H.
Journal of Embryo Transfer
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v.9
no.3
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pp.255-260
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1994
원시생식세포(primordial germ cell; PGC)는 성성숙 이후에 기능을 갖는 생식세포의 근원이 되는 세포로서, 다능성을 갖고 있는 것으로 알려져 있다. 그러므로 chimera 및 유전자 변환동물 생산을 위해 널리 사용되어 온 배아주(embrynic stem; ES)세포를 대신할 다른 세포계라고 생각되어져 많은 연구가 진행되고 있다. 본 실험은 체외배양을 통하여 원시생식세포의 증식과 확립을 위해 배양조건을 구명하고, 또한 성장인자의 효과를 검증하기 위하여 실시되었다. 원시생식세포는 12.5일째의 ICR 생쥐태아의 원시생식선 융기조직으로부터 추출하였으며, DMEM + 20% FCS + nucleosides + antibiotics로 조성된 sDMEM 배양액을 사용하여 mitomycin C로 전처리한 되먹임세포단층(feeder layer)위에서 체외배양하였다. bFGF 및 LIF를 20, 40ng/ml농도로 각각 또는 함께 첨가하여 성장인자의 효과를 검토하였다. 원시생식세포는 성에 따라 유의적인 colony 형성율을 보였고(♂:1.9 colonies / genital ridge, ♀:1.3 colonies / genital ridge), bFGF 및 LIF의 첨가 및 첨가농도에 따라서도 유의성 있는 결과를 보였다(0.3~1.9 colonies / genital riege). 그러나 3회 이상 계대배양을 할 경우, 원시생식세포의 colony를 4% prarformaldehyde로 20분간 고정한 후, tris-maleate buffer(pH 9.0)로 10분간 3회 세정하였다. Fast Red로 염색을 실시한 결과, 대부분의 colony가 염색반응을 보여 다능성을 갖는 원시생식세포의 colony임이 입증되었다. 그러나 대부분의 colony가 3회 이상의 계대배양시 생종율이 급격히 떨어지는 것을 감안하면, 또 다른 미지의 성장인자나 보다 적절한 배양조건이 요구된다고 생각된다.
When porcine primordial germ cells (PGCs) isolated from the genital ridge and placed in culture to establish EG cells, a large proportion of PGCs are lost during the early period of culture. To characterize the in vitro death of porcine PGCs, PGCs were cultured in suspension, and apoptosis analyzed using a fluorescent activated cell sorter-based DNA fragmentation assay. The results from flow cytometric analysis showed an increase in apoptosis in cultured cells. However, the cells isolated from the genital ridges are a mixture of PGCs and somatic cells. To detect apoptotic signals specific from porcine PGCs, quantitative TUNEL assay was performed at different time of culture (0 ∼ 24 h). The proportion of apoptotic porcine PGCs determined by double staining with alkaline phosphatase activity and in situ TUNEL assay increased as the time of culture progressed and continued at least 24 h. These results demonstrate that one of the causes of loss of porcine PGCs in vitro is apoptosis.
This study was conducted to identify optimistic primordial germ cells'(PGCs) migration activity using heat activated busulfan treatment for the increasing germline chimerism. Donar PGCs viability tests of important conditions for useful germ line chimerism indicated approximately $70{\sim}80%$ viability was time dependent. Transplantation experiments of PGCs into recipient embryos after busulfun treatment, showed the treatment group having 23.5% viability. By comparison, the control group showed 4.8% viability. The 96 hour treatment group and the 118 hour treatment group of the cultured PGCs showed high migration activity. Generally, the transplantation method would consider morphological and physiological characteristics before transplantation. In the present study, the effect of busulfan on migration activity showed viability highest at 53.4% after 48-hour incubation time. However, a previous study showed the best condition for transplantation time to be prior to the 48-hour incubation period, when the chicken embryo does not yet have a developed blood vessel system. In conclusion, an important condition for the production of a transgenic chicken is that most donor PGCs migrate into the recipient embryo without any inhibitory factors. The present results suggest, perhaps by using this modified method of transplantation, it can produce a more efficient chimeric germ line, transgenic chicken.
This study was conducted to examine early gonadogenesis by using a histological method for the appearance of primordial germ cells (PGCs), protrude of genital ridge, and formation of primitive gonads in diploid and triploid mud loach, Misgurnus mizolepis. The pattern of early gonadogenesis including appearance of PGCs, formation of genital ridge, and development of primitive gonad in both diploid and triploid were not different histologically. Characteristics of PGCs of triploid were also the same as those of diploid. However, gonadal length of diploid was significantly longer than that of triploid (P<0.05).
This study was conducted to establish methods for preserving chicken primordial germ cells (PGCs) for long-term storage in liquid nitrogen and for developmental engineering or preservation of species. The purpose of this study is to clarify the effects of fetal bovine serum (FBS) or chicken serum (CS) treatment on the viability of cryopreserved PGCs from Korean Native Chicken (Ogye). PGCs separated from a germinal gonad of an early embryo at day 5.5-6 (stage 28) were suspended in a freezing medium containing freezing and protective agents (dimethyl sulfoxide (DMSO), ethylene glycol (EG) and glycerol). The values from 0, 5, 10, and 15 % DMSO plus FBS treatment were 21.6, 30.36, 36.42, 50.39, and 48.36 %, respectively. The viability of PGCs after freeze-thawing was significantly higher for 10% EG plus FBS treatment than for 10% EG + FCS treatment (p<0.05) (64.36% vs. 50.66%). This study establishes a method for preserving chicken PGC that enables systematic storage and labeling of cryopreserved PGC in liquid nitrogen at a germplasm repository and an ease of entry into a database. In the future, the importance for this new technology is that poultry lines can be conserved while work is being conducted to improve the production of germline chimeras.
Proceedings of the Korea Society of Poultry Science Conference
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2004.11a
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pp.9-10
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2004
We developed a new panel of markers for the characterization of chicken PGCs. The results of immunostaining demonstrated that anti-SSEA-3, anti-SSEA-4, anti-integrin 6, and anti-integrin 1 antibodies. and STA and DBA bound specifically to chicken PGCs. These reagents could be used to characterize chicken PGCs together with conventional marker reagents such as PAS and anti-SSEA-1 antibody. We also showed that double staining of PGCs with the newly developed markers was feasible, which might contribute to rapid detection and accurate characterization of chicken PGCs.
The primitive gonad development in Paralichthys olivaceus was classified into (ⅰ) primordial germ cell (PGC), (ⅱ) genital ridge type (GRT), (ⅲ) primitive gonad type I (PGT I) and (ⅳ) primitive gonad type II stages. In the control group, PGC was recognizable on the 3rd days after hatching, and the primodial gonad after 24th days, while it was around the 22nd day after hatching in the group exposed to PCBs 3.0 $\mu\textrm{g}$/L for 30 days. Likewise, the progress of kidney development was recognized in four stages; unitubular type of mesonephric duct (UTMD), the branched mesonephric duct (BMD), convoluted tubule formation (CTF) and glomerulus appearing (GA) stage. It was structurally completed between the 25th and 30th day after hatching in two groups. There was no significant difference (p>0.05) in the time scale of development of gonad, and kidney between control and the PCBs - exposed group.
This study was conducted to establish the method for preserving PGCs that enables long-term storage in liquid nitrogen for developmental engineering or preservation of species. The purpose of this study is to clarify the effects of freeze-thaw treatment on viability of PGCs in chickens. PGCs were collected separately from a germinal gonad of an early embryo of 5.5~6 day (stage 28) of Isa brown, Korean Oge (KO), White Leghorn and Commercial breeds. PGCs separated from a germinal gonad of an early embryo of 5.5~6 day (stage 28) are suspended in a freezing medium containing a freezing and protecting agents (e.g. dimethyl sulfoxide (DMSO), ethylene glycol (EG) and glycerol). The PGCs were then purified using magnetic activated cell sorting (MACS) method. The viability of PGCs after thawing was $87.4{\pm}0.4%$ and $89.4{\pm}0.2%$ with the 10% EG treatments with no significant difference between the Isa brown and Commercial breeds. The viability of PGCs after freeze- thawing was significantly higher for Isa brown ($87.4{\pm}0.4%$) and Commercial breeds ($89.4{\pm}0.2%$) than Korean Oge (KO) ($77.6{\pm}1.1%$) and White Leghorn ($76.2{\pm}0.9%$)(p<0.05) using 10% EG cryoprotectant. This study established a method for pre- serving chicken PGCs that enables systematic storage and labeling of cryopreserved PGCs in liquid ($LN_2$) at agermplasm repository and ease of entry into a data base. In the future, the importance for this new technology is that poultry lines can be conserved while work is being conducted on improving the production of germline chimeras.
Park, Kyung-Je;Kim, Tae-Min;Lee, Hyung-Chul;Jang, Hyun-Jun;Song, Gwon-Hwa;Han, Jae-Yong
Korean Journal of Poultry Science
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v.37
no.2
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pp.139-143
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2010
Quail is a very useful animal model for studying vertebrate development because of its small body size and unique reproductive traits. This species is also ideal model for producing germline chimeras via transferring exogenous primordial germ cells (PGCs) into the recipient embryo. To increase the contribution efficiency of donor PGCs into recipients' tissues, decreasing the population of endogenous PGCs has been rate-limiting factor. We therefore conducted this study to investigate if gamma ($\gamma$)-irradiation depletes endogenous PGCs in developing quail embryo. Firstly, freshly laid stage X quail embryos were irradiated with various output of $\gamma$-irradiation and its teratogenic effect on the embryo was evaluated. Although a dose-dependent increase in the number of embryo showing malformation was found as the output increased (0, 250, 500, 750, and 1,000 rads), only a maximum of 10.1% of embryos were abnormal in 1,000 rads. Immunocytochemical analysis using the QCR1 antibody, which is specific marker for quail PGCs, was conducted to analyze the effect of sterilization. As results, $\gamma$-rays at a dose-rate of 500 rads/73 sec onto undeveloped stage X embryo significantly reduced the number of germ cells to an average of 75.55 % and 82.03 % in male and female embryos, respectively. We conclude that $\gamma$-ray selectively targets PGCs while affects minimally to the somatic development in quail embryo. Our results will not only provide important data for germline chimera production but can be used for analyzing the effect of ionized rays on the differentiating germ cells in various stages during animal development.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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