Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.30
no.3
s.47
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pp.295-305
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2004
Colloid and surface chemistry have been focused on surface area and surface energy. Local surface properties such as surface density, interaction, molecular orientation and reactivity have been one of interesting subjects. Systems of such surface energy being important would be listed as association colloid, emulsion, particle dispersion, foam, and 2-D surface and film. Such nanoparticle systems would be applied to drug delivery systems and functional cosmetics with biocompatible and degradable materials, while nanoparticles having its size of several nm to micron, and wide surface area, have been accepted as a possible drug carrier because their preparation, characteristics and drug loading have been inves-tigated. The biocompatible carriers were also used for the solubilization of insoluble drugs, the enhancement of skin absorption, the block out of UV radiation, the chemical stabilization and controlled release. Nano/micro emulstion system is classified into nano/microsphere, nano/microcapsule, nano/microemulsion, polymeric micelle, liposome according to its prep-aration method and size. Specially, the preparation method and industrial applications have been introduced for polymeric micelles self-assembled in aqueous solution, nano/microapsules controlling the concentration and activity of high concen-tration and activity materials, and monolayer or multilayer liposomes carrying bioactive ingredients.
The purpose of the present study was to examine the pharmacokinetics and lymphatic delivery of the oligopeptide, a model peptide of X antigen epitope peptides, after the intramuscular administration of the peptide-bearing liposomes in rats. $^{14}C$-labelled peptide was used as a tracer to analyze the peptide levels in plasma, bile, urine, tissue homogenates, and lymph nodes (superior cervical nodes, brachial nodes and superior mesenteric nodes). Model peptide rapidly disappeared from the plasma by 30 min (${\alpha}$ phase) after i.v. administration, which was followed by the late disappearance. The apparent plasma half-lives ($t_{1/2({\alpha}),app}$) of the peptide at the ${\alpha}$ phase when administered at a dose of 0.2-1.0 mg/kg were about 5 min. The maximum plasma concentration ($C_{max}$) was $1.52\;{\mu}g/mL$, after the i.m. administration of the peptide at a dose of 1.0 mg/kg. The bioavailability, which was calculated from the time zero to last quantitative time, of the i.m. administered peptide was over 60%. Of the various tissues tested, the peptide was mainly distributed in the kidney after the i.m. administration. The peptide levels in the kidney 3 hr after the i.m. administration were higher than those of maximum plasma concentration ($C_{max}$). The cumulative amounts of the peptide found in the urine 72 hr after the administration of 1.0 mg/kg were 2-folder higher than those in the bile, suggesting that the peptide is mostly excreted in the urine. Moreover, the concentrations of the peptide in the lymph nodes were as high as that of the plasma and the tissues. In conclusion, the peptide concentration in the lymph nodes was maintained by 24 hr after the i.m. administration of the peptide-bearing liposomes.
Liposomes as one of the efficient drug carriers have some shortcomings such as their short circulation time, fast clearance from human body by reticuloendothelial system (RES) and limited intracellular uptake to target cell. In this study, polyethylenglycol (PEG)-incorporated cationic liposomes were prepared by ionic complexation of positively charged liposomes with carboxylated polyethyleneglycol (mPEG-COOH). The cationic liposomes had approximately $98.6{\pm}1.0nm$ of mean particle diameter and $42.8{\pm}0.8mV$ of zeta potential value. The PEG-incorporated cationic liposomes had $110.1{\pm}1.2nm$ of mean particle diameter with an increase of about 10 nm compared to the cationic liposomes. Zeta potential value of them was $12.9{\pm}0.6mV$ indicating 30mV decrease of cationic charge compared to the cationic liposomes. The amount of PEG which was incorporated onto the cationic liposomes was assayed by using picrate assay method and the incorporation efficiency was $58.4{\pm}1.1%$. Loading efficiency of model drug, doxorubicin, into cationic liposomes or PEG-incorporated cationic liposomes was about $96.0{\pm}0.7%$. Results of intracellular uptake which were evaluated by flow cytometry analysis of doxorubicin loaded liposomes showed that intracellular uptake of PEG-incorporated cationic liposomes was higher than the cationic liposomes or DSPE-mPEG liposomes. In addition, cytotoxicity of PEG-incorporated cationic liposomes was comparable to cationic liposomes. Consequently, the PEG-incorporated cationic liposomes of which surface was incorporated with PEG by ionic complex may be applicable as anticancer drug carriers that can increase therapeutic efficacy.
The absorption of a P-gp substrate, rhodamine 123, from a liposomal dosage form was investigated across Caco-2 cell monolayers, rat intestines and rat intestinal Peyer's patches in Ussing chamber, Rhodamine 123 was incorporated into liposomes according to the standard evaporation method, which led to a production of liposomes with a mean diameter of 71.3 nm. The permeability (Papp of rhodamine 123 from a water solution across the monolayer was $2.45{\times}10^{-6}$ cm/s for $A{\leftrightarrow}B$ (apical to basal) and $14.0{\times}10^{-6}$ cm/s for $B{\leftrightarrow}A$ (basal to apical) directions, consistent with the fact that rhodamine 123 is one of the P-gp substrates. The transport of rhodamine 123 from the liposomal dosage form was much lower for both directions compared to the solution of rhodamine 123. The transport of rhodamine 123 across the rat intestine was also significantly decreased for both directions, I.e., influx and efflux, by the liposomal incorporation of the compound. The transport of rhodamine 123 across the Peyer's patch was substantially reduced by liposomal incorporation. No difference was found in the transport between the Peyer's patch and non-Peyer's patch. These observations suggest that the contribution of transport via Peyer's patches in the uptake of liposomes may be minimal, especially for rapidly absorbed compounds like rhodamine 123. Therefore, the increased absorption of P-gp substrates does not appear to be feasible by incorporating the compounds in liposomes, due to negligible involvement of Peyer's patches in the uptake of particulate dosage forms like liposomes. Liposomes may rather represent a sustained release dosage form of incorporated compounds.
Recently, intelligent packaging of foods has been increasingly developed in response to the growing interest of consumers in checking food quality. Indicators, an important element in intelligent packaging, change color to detect specific substances or indicate food quality changes. Gas indicators can be built into food packaging to detect volatile substances that are released when food quality changes. Ethylene gas is produced as climacteric fruits ripen. Climacteric fruit ripening results from a rapid increase in ethylene production and respiration. In the case of packaged fruits, the ethylene gas concentration in the headspace is closely related to the ripeness of each fruit variety. If an ethylene gas indicator that can be used in fruit packaging is available, the consumer will be able to eat the fruit at the optimal time. In this paper, the characteristics and pros and cons of the ethylene gas indicators developed so far were analyzed by reviewing various types of indicators such as metal reduction-based indicator, fluorescence-based indicator, pH indicator-based indicator, and liposome-based indicator.
The vesicle system of DPPC(dipalmitoylphosphaticylcholine)/Chol(Cholesterol) has been modified by incorporating various mole fractions of flourinated surfactant($C_8F_{17}(CH_2)_2OCO-CH_2CH(SO_3Na)COO(CH_2)_2C_8F_{17}$. Sodium bis(1H,1H,2H,2H-heptadecaflurododecyl)-2-sulfosuccinate, FS)/fluorinated fatty acid salt ($C_7F_{15}COONH_4$, ammoniumpentadecaflurooctyrate, FFS), and their physicochemical properties have been investigated in an attempt to enhance the stability of phospholipid vesicle system. The ${\zeta}$-potential measurement by use of Zetamaster sub-micron Particle Electrophoresis Analyzer (Malvern Co.) showed that a charged homogeneous DPPC/Chol/FS vesicle has been formed owing to the incorporated FFS effect on the membrane, playing a role as a cosurfactant in the bilayer between DPPC and FS components. With increase in the concentration of FFS, it was found that the particle size and also surface charge of the DPPC/Chol/FS vesicle decreased. The stability of DPPC/Chol/FS/FFS liposome was found to be enhanced significantly compared to that of DPPC/Chol/FS according to the dispersity change as a function of time. The release rate of dye molecule of Methylene Blue from the DPPC/Chol/FS/FFS vesicle was determined to be slower than that of DPPC/Chol/FS system, and it may be attributed to the increase in microviscosity of the hydrophobic region in the bilayer. The affinfinity of DPPC/Chol/FS/FFS vesicles to albumin was found to be slightly lowered compared to that of DPPC/Chol/FS. Based on these findings, it was confirmed that a more stable and homogeneous vesicle system of DPPC/Chol/FS could be prepared by addition of FFS, acting as a cosurfactant in the aggregate formation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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