This study were carried out to evaluate the possibility of nuclear progression of canine immature oocytes, of which was cultured in a reproductive tract, such as oviduct, ovarian bursa and uterus of estrus bitch for 4, 5 and 6 days following immediately collection. Cumulus intact oocytes(COC) fore collected from domestic dog following ovariohysterectomy at local veterinary clinics. In Exp. 1, COCs $of>110\;{\mu}m$ diameter were selected and cultured in vitro at $39^{\circ}C$, $5\%\;CO\_{2} $ in air atmosphere. The nuclear progression of canine oocytes checked at 24, 48 or 72 h after in vitro maturation. There was not increased the nuclear progression to the M II stage depending on culture periods at 24, 48 and 72h $(1.3\%,\;3.7\%\;and\;4.7\%)$. In Exp. 2, to evaluate of nuclear progression of immature oocytes, collected or in vitro cultured oocytes were transfer into a canine reproductive tract (oviduct, ovarian bursa and uterus). The recovery rates of canine oocytes from a reproductive tract after 4 days $(33.7\%)$ in vivo culture were significantly higher than those 5 $(17.7\%)$ 6 day $(3.4\%)$ (P<0.05). The survival rates of collected oocytes after 4 days $(60.0\%)$ were also significantly higher than those of 5 days $(30.2\%)$ and 6 days $(38.9\%)$ (P<0.05). The meiotic resumption rates of canine oocytes were not significantly difference among the culture periods at 4 days $(5.9\%)$, 5 days $(0.0\%)$ and 6 days $(0.0\%)$. These results show that the nuclear progression of canine immature oocytes from in in vivo culture was not affect the nuclear resumption of oocytes.
In order to know the effects of PCB(Arochlor 1248) on the oocyte maturation and proges-terone(P$_4$) production by FPH(Frog pituitary homogenate: 0.01 p.e/$m\ell$) of frog in vitro, the oocytes were cultured for 20 hours in presence of the PCB at various concentrations and exam-ined their maturation(germinal vesicle breakdown: GVBD) rates and P$_4$ levels secreted by the oocyte in the culture medium. The results show that PCB concentration of 10 ppb suppressed the maturation of the oocytes and secretion of P$_4$. To examine the reversibility of the inhibitory effects, the oocytes were exposed to the PCB only for 3 hours, and then transferred to plain medium and cultured further for 17 hours. The oocytes were recovered from the toxic effect of the PCB when they were exposed to 2.5 ppb, but not to 5 ppb of the PCB. These results indi-cate that PCB suppress the maturation of oocytes and secretion of p, at low concentration, sug-gesting that the frog oocyte culture system can be used as a useful tool to evaluate the toxicity of the pollutants in the environment.
Han, Hyuck-Dong;Lim, Chang-Kyo;Youm, Hyun-Sik;Hyon, Naomi Na-Hyoung;Lee, Ji-Hyang;Hong, Me
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
/
v.36
no.3
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pp.175-186
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2009
Objective: We examined the effect of different culture media on oocyte maturation. Methods: Four groups of media, (1) 0.3% BSA mBASAL-XI-HTF, (2) 0.3% BSA mBASAL-XI-HTF with FSH, (3) 10% FBS mBASAL-XI-HTF and (4) 10% FBS mBASAL-XI-HTF with FSH were prepared. Mouse cumulus enclosed oocytes (CEOs) were incubated in each group of medium. Hypoxanthine (Hx) was mixed to each group of medium in increasing concentrations of 1 mM, 2 mM and 4 mM. CEOs were incubated and assessed for GVBD and MII development at 3, 6, 18 hours. Results: CEOs maturation to GVBD was seen in all four groups during 3 hours of culture, however MII stage of oocytes was seen after 6 hours. Complete arrest of GV stage in 4 mM Hx media without FSH and partial arrest in 2 mM Hx media without FSH were seen during 18 hours of culture but development was not suppressed in 1 mM Hx media without FSH. More prominent GVBD suppression was noted at early 3, 6 hours culture in 1 mM, 2 mM Hx media with FSH compared to media without FSH. But the suppression was recovered at 18 hours. This result suggests that low concentrated Hx and FSH supplemented media can suppress CEOs maturation during early culture period but recovery is resumed or even stimulated at late period. 1 mM, 2 mM Hx 10% FBS medium with FSH had significantly higher rates of MII development (71.7%, 66.7%) at 18 hours compared to other media. Conclusion: Our results show that low concentrated Hx and FSH supplemented 10% FBS media may stimulate MII development after an initial inhibitory effect.
돼지 핵이식란의 발달은 다른 종의 것과 비교하여 효율이 낮다. 그 이유 중 하나가 난자활성화율이 낮기 때문이다. 따라서, 본 실험은 돼지 난자의 인위적 활성화처리에 따른 단위발생율을 조사함으로써, 이후 핵이식란 생산의 효율을 높이고자 수행되었다. 돼지 난포란을 10% pFF, 0.1mg/ml cysteine, 10IU/ml PMSG, 10IU/ml hCG, 10ng/ml EGF가 첨가된 TCM-199배양액에서 22시간 동안 배양한 후, 성선자극 호르몬이 배제된 배양액에서 추가로 22시간 동안 배양하여 성숙을 유도하였다. 체외성숙이 야기된 난자는 난구세포를 제거한 후 제2극체가 보이는 난자만을 선별하였다. 선별된 난자는 1)아무것도 처리하지 않은 대조군과 2)전기자극(2.0㎸/cm, 30$\mu\textrm{s}$), 2)7% ethanol에서 5분 배양 3)5$\mu$M ionomycin에서 4분 배양의 groups들로 나누어 활성화 처리 후 5분 동안 TCM-199에서 세정하고 다시 4시간 동안 6-DMAP에서 배양한 후 12시간에 난자를 염색하여 핵상을 분석하였고, 나머지는 4mg/ml BSA가 첨가된 NCSU-23에서 39$^{\circ}C$, 5%$CO_2$ 배양기에서 각각 6~7일 동안 배양을 실시하였다.
It has been found that the rat oocytes maintain germinal vesicle (GV) in general in the follicles either untreated or punctured, or in the foreign follicles for 17 hours culture unless they are cultured in the medium supplemented with human chorionic gonadotropin (hCG). That is, the proportion of oocytes with GV was in range of 88.8% and 95.2% in the plain medium, and on the other hand, only 11.1% to 19.4% of the oocytes were intact with GV when the follicles were exposed to hCG. The experiments with the oocytes which had once been cultured in the presence of dbcAMP or IBMX, and returned to the follicles for the additional culture showed almost the same results as above. That is, when the oocytes exposed to dbcAMP or IBMX for a certain length of period had been returned to the follicles, and set the additional culture, their maturation continuously suppressed even in the cultivation in the plain medium in which most of the oocytes usually resume meiosis. That is, despite of the cultivation in the plain medium, the oocytes transferred into the follicles failed to start maturation division, while the oocytes once exposed to the inhibitors immediately resume their maturation process in the inhibitor-free medium. Thus, it is apparent that the follicles provide inhibitory environment to the oocytes, and the inhibitory function is nullified by the presence of hCG.
본 연구는 소 미성숙 난자의 동결에 있어서 미성숙 난자의 1, 2, 4, 8 시간 성숙배양한 다음 동결 융해 후 체외배양하였을 때 체외수정율과 생존율을 조사하고저 수행하였다. 미성숙 난자들 1∼8시간 성숙배양후 동결융해 및 체외수정시켰을 때 수정율은 12.8∼30.9%로서 단시간의 체외성숙 배양이 높게 나타났으며(23.8∼28.8%), 또한 체외배양시 생존율은 11.8∼29.9%를 나타냈다.
Phosphatase의 저해제로 알려진 okadaic acid(OA)가 한국산 개구리(북방산개구리 참개구리) 난자의 성숙에 미치는 효과를 조사하였다. 북방산개구리 난자에 약 50 nl의 okadaic acid(0 5-500 mM)를 미세주입한 후 18시간 배양한 결과 0.5 mM의 농도에서 부터 난자의 핵붕괴를 일으키기 시작하였다 동면초기에 처리한 progesterone에 반응하지 않는 난자들도 OA에 의하여 성숙을 일으켰으며. 이 성숙은 배양액에 첨가한 cycloheximide(10 mg/ml)에 영향을 받지 않았다 또한 OA의 처리를 받고 일정시간 배양한 난자의 세포질에는 미성숙 난자의 성숙을 유도하는 maturation promoting factor (MPF)의 활성이 생기었다 참개구리의 난자도 역시 OA에 의해 성숙이 유도되었으며, 주입 후 6시간에서부터 핵붕괴가 일어나기 시작하였다 참개구리에서도 OA의 처리가 MPF의 활성을 촉진하는 것을 세포질내에 Hl histone kinase의 활성도가 증가하는 것으로 확인할 수 있었다 참개구리에서도 OA에 의한 성숙은 cycloheximide나 CAMP에 의해 영향을 받지 않았다 이러한 결과들은 개구리 난자의 MPF 활성화와 성숙과정에 phosphatase가 관여함을 보여주는 것이다.
체외성숙과 수정된 돼지 난자의 체외발달능이 체외배발생 배양액인 NCSU 배양액에 0.4% BSA, 10% 혈청 혹은 아미노산 (2% BME 아미노산 용액과 1% MEM 아미노산 용액)을 첨가함으로서 조사되었다. 본 실험에 공시된 난자는 체외수정 추 30시간 (2-세포기)혹은 48 시간 ($2{\sim}4$-세포기)에 회수하였다. 실험I에서 0.4% BSA가 첨가된 NCSU 배양액에서 2-세포기 난자들의 배양경과시간에 따른 발달능을 조사한 결과, 배양 후 72 시간 (체외수정 후 102 시간)에 상실배기와 배반포기 배가 나타났으며, 배양 후 120 시간째 (체외수정 후 150 시간)에도 팽창된 배반포기 배까지만 발달하였다. 실험II는 체외수정 후 48 시간의 분할된 ($2{\sim}8$-세포기) 난자들의 핵과 외관적 분할구와의 수적 차이를 조사한 결과, $2{\sim}4$-세포기보다는 5-세포기 이상에서 핵과 분할구의 조화에 차이가 많았다. 실험III에서는 $2{\sim}4$-세포기 난자들을 배양후 5일째의 배반포들의 투명대의 두께, 난자 크기 그리고 inner cell mass (ICM)과 trophectoderm (TE)의 세포 배열을 조사한 결과, 난자의 크기가 커짐에 따라서 투명대가 얇아지고 전체 세포수가 증가하였지만, ICM의 비율은 차이가 없었다. 실험IV에서는 BSA, 혈청 혹은 아미노산이 첨가 혹은 무첨가된 배양액내에서 $2{\sim}4$-세포기 난자들의 배반포 후 부화능력을 조사한 결과, 모든 군에 있는 난자들은 팽창된 배반포기 배까지 발달할 수 있었던 반면, 난자의 부화는 아미노산 혹은 혈청이 포함된 배양액에서만 일어났다. 더우기 상실배기와 배반포기 시기에 혈청의 첨가는 부화 배반포기 배의 발달을 현저히 증가시켰다. 또한 아미노산과 혈청의 영향을 받은 팽창 배반포기 배는 얇은 투명대, 팽창된 난자의 크기 그리고 ICM과 전체 세포수의 증가를 보였다. 이상의 결과로 미루어 볼때, 배양액내에 대한 아미노산과 혈청의 첨가는 돼지 배반포기 배의 부화를 유도할 수 있다고 보며, 더우기 이들 요소들은 투명대의 두께, 난자의 크기 그리고 ICM과 전체 세포수에 영향을 미친다.
돼지 체세포 핵이식에 있어서 체외발달률을 재고하기 위하여 공여세포의 종류, 활성화 방법, 배양조건 등이 체외발달에 미치는 영향을 검토하였다. 도축장에서 채취한 난소에서 미성숙난자를 채취하여 NCSU-37 배양액에 10% pFF 와 0.6mM Cystein, 1mM dbcAMP, 0.1 IU/㎖ human menopausal gonadotrophin(hMG)에서 20시간 배양후 dbcAMP 와 hMG 가 없는 배양액에서 18-24 시간 추가배양 성숙 후 성숙된 난자를 핵이식의 수핵난자로 사용하였다. (중략)
This experiment was studied on the peritoneal fluid wden it was used for nutrient solution of fertilized ova of rabbit when it was cultivated in vitro. The peritoneal fluid also can be gained much from the superovulated rabbits. The results was follow. 1. Wden 2. 4. 8. cell stage ova of rabbit were cultivated in peritoneal fluid in peritoneal fluid at 37'c for 48 Ths, each ova was developed by 78.1, 83.3, 91.7, and 93.6%, and these records were superior to when the blood serum was used. 2. When 2cell stage ova of rabbit was cultivated in peritoneal fluid 88% of Ova were repidly growth Far morula stage and 24 became blastocyst stage these records are nearly same to the records in morulel blood sevium. 3. At these ponts the rabbit peritoneal fluid can be used effectively for on culture fluid.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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