We investigated acid hydrolysis characteristics of yellow poplar woodmeal with concentrated sulfuric acid for high concentration of monosaccharides production. Woodmeal to 72% sulfuric acid ratio (w/w), $2^{nd}$ hydrolysis temperature and time were main variables for finding optimum reaction condition. Optimum woodmeal to 72% sulfuric acid ratio was 1 : 2.61 (w/w) and $2^{nd}$ hydrolysis temperature and time was $105^{\circ}C$ and 40 min as 44.8 g/L of glucose and 25.2 g/L of xylose in hydrolysis solution. In this acid hydrolysis solution, furfural, 5-HMF, low molecular weight phenolic compounds were identified. Furfural and 5-HMF concentration were increased as increasing $2^{nd}$ hydrolysis time. More than 40 min of $2^{nd}$ hydrolysis at $110^{\circ}C$, xylose concentration was decreased but glucose concentration was leveled out because xylose to furfural reaction was faster than xylan to xylose, but cellulose to glucose reaction was similar rate with glucose to 5-HMF at that $2^{nd}$ hydrolysis reaction condition.
The patterns on the proteolysis of mussel protein using a commercial enzyme preparation were investigated. The best one among six commercial enzyme preparations for the manufacture of mussel extract was Corolase PP, based on the degree of hydrolysis (DH). When the raw mussel paste, without water addition, was adjusted to pH 6.5, added 0.1% (w/w dry basis) of Corolase PP. and reacted at $50^{\circ}C$ for four hours, it reached the maximum value of DH (79%). The precooking of raw mussel decreased the efficiency of extraction and hydrolysis of the protein, due to the inactivation of the autolytic enzymes contained in the mussel. During the course of proteolysis, major free amino acids such as glycine, alanine, glutamic acid and lysine, representing a characteristic brothy taste of mussel were replaced with free hydrophobic amino acids including valine, methionine, isoleucine, and leucine. The electrophoretic pattern and HPLC-GPC pattern of mussel protein hydrolysates during the hydrolysis were observed and also discussed.
This study investigated the TNT decomposition by the treatment of alkaline hydrolysis. To obtain this objecitive, spectrum shift characteristics, pH effect, kinetics, and product analysis were examined during the alkaline hydrolysis by means of hydroxide ions. At pH = 12, an aqueous solution of TNT was changed into yellow-brown coloring, in which its absorbances were newly increased in a range of wavelength 400-600 nm. From the kinetic data, pseudo-first-order rate constant in a excess of hydroxide ion, in contrast to TNT concentration, was $0.0022min^{-1}$, which means that the reaction rate between TNT and hydroxide ion can be very slow, and that 1,047 min is necessary to achieve a 90% reduction of the initial TNT. In products analyses, nitrite ions and formic acid were mainly produced by the alkaline hydrolysis, nitrate ions and oxalic acid as minor products were generated.
Abu-Gharib, Ezz A.;EL-Khatib, Rafat M.;Nassr, Lobna A.E.;Abu-Dief, Ahmed M.
Journal of the Korean Chemical Society
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v.55
no.3
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pp.346-353
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2011
Base hydrolysis of 7-hydroxy-2H-chromen-2-one (HC) and 7-hydroxy-2H-chromen-2-one-4-acetic acid (HCA) in aqueous-methanol and aqueous-acetone mixtures were studied kinetically at temperature range from 283 to 313 K. The activation parameters of the reactions were evaluated and discussed. Moreover, the change in the activation energy barrier of the investigated compounds from water to water-methanol and water-acetone mixtures was estimated from the kinetic data. It is observed that the change in activation barriers is more or less the same for the hydrolysis of HC and HCA. Base hydrolysis of HC and HCA follows a rate law with $k_{obs}=k_2[OH^-]$. The decrease in the rate constants of HC and HCA as the proportion of methanol or acetone increases is due to the destabilization of $OH^-$ ion. The high negative values of entropy of activation support the proposal mechanism, i.e. the investigated reaction takes place via the formation of an intermediate complex. Moreover, these values refer to the rigidity and stability of the intermediate complex. Thus, the ring opening of the intermediate complex would be the rate controlling step.
The enzymatic hydrolysate of gelatin extracted from fish skin was fractionated and recycled through the membrane reactor according to the molecular weight for the purpose of using as functional material. In addition, the enzymatic hydrolysis conditions of gelatin, enzyme stability by membrane and mechanical shear, and effect on the long-term operational stability of the recycle membrane reactor were investigated. Using the pH-drop technique, Alcalase, pronase E and collagenase were identified as the most suitable enzymes for the hydrolysis of fish skin gelatin. The optimum hydrolysis conditions in the 1st-step membrane reactor(1st-SMR) by Alcalase were enzyme concentration 0.2mg/ml, substrate-to-enzyme ratio(S/E) 50(w/w), $50^{\circ}C$, pH 8.0, reaction volume 600ml and flow rate 6.14ml/min. In the 2nd-SMR by pronase E were enzyme concentration 0.3mg/ml, S/E 33(w/w), $50^{\circ}C$, pH 8.0, reaction volume 600ml and flow rate 6.14ml/min. In the case of 3rd-SMR, enzyme concentration 0.1mg/ml, S/E 100(w/w), $37^{\circ}C$, pH 7.5, reaction volume 600ml and flow rate 10ml/min. Decreased enzyme activities by mechanical shear and membrane were 30% and 15% in the 1st-SMR, were 14% and 5% in the 2nd-SMR, and 18% and 8% in the 3rd-SMR, respectively. Under the optimum conditions, the degree of hydrolysis in the 1st, 2nd and 3rd-SMR were 3.5%(Kjeldahl method, 87%), 3.1%(77%) and 2.7%(70%), respectively. The productivity of hydrolysate in the continuous three-step membrane reactor was 430mg per enzyme(mg) for 10 times of volume replacements.
The whole cells of Chromobacterium chocolatum was immobilized in the matrix of polyacrylamide and then used for the hydrolysis of dimethyl-cis-1,3-dibenzyl-2-oxoimidazolidine-4,5-dicarboxylate. This hydrolysis yielded the optically active monoester ( > 96% ee) which is useful as an synthetic intermediate of (+)-biotin. We have studied the optimum condition of hydrolysis by using immobilized cells under variable concentration of substrate, reaction time and pH levels. The activity of lipase in immobilized cell was retained for longer than 4 weeks. The best conversion yield of product was obtained when 2 g of wet cell was immobilized and then reacted with 200 mg of substrate at pH 7.
펄스 도금 조건이 Co 도금층의 미세 구조 및 알칼리 $NaBH_4$ 용액의 수소발생특성에 미치는 영향을 조사하였다. 펄스 주기 및 최대전류밀도가 증가함에 따라 polyhedral 형상의 Co 결정립이 triangular형상으로 변화하였으며, 점차 결정립이 조대화 되어, 촉매 표면적이 감소하였다. 결국 알칼리 $NaBH_4$ 용액 내에서 가수분해반응에 참여하는 촉매 site가 감소하여 수소발생속도가 낮아졌다. 펄스도금시간이 증가함에 따라 Co 결정립의 크기가 점차 증가하여 촉매 표면적이 감소하였고, 가수분해반응에 참여하지 못하는 CO의 양이 증가하여 수소발생속도가 크게 감소하였다. 최대전류밀도 $0.1\;A/cm^2$, 펄스 주기 2 mS에서 10 s 동안 펄스 도금 시, $25^{\circ}C\;1\;wt.\%\;NaOH\;+\;10\;wt.\%\;NaBH_4$ 용액에서 $2140\;ml/min{\cdot}g-catalyst$의 높은 수소발생속도를 가지는 것으로 나타났다.
These experiments were conducted to investigate the substrate specificity, the hydrolysis products on the various carbohydrates and the hydrolysis rate on the various raw starches of the two purified glucoamylase produced by Rhizopus oryzae. Both of the glucoamylases hydrolyzed amylose, amylopectin, glycogen, soluble starch, pullulan, maltose, maltotriose, maltotetraose, maltopentaose, maltohexaose, maltoheptaose and maltooctaose, but did not act on ${\alpha}-cyclodextrin$, ${\beta}-cyclodextrin$, raffinose, sucrose and lactose. When the reaction mixture of glucoamylase and polysaccharides were incubated $37^{\circ}C$for 32 hours, glucoamylase I hydrolyzed amylopectin, soluble starch and amyloses completely, but hydrolyzing glycogen up to only about 88%. Glucoamylase II hydrolyzed the previous four polysaccharides up to about 100%. Both of the glucoamylases produced only glucose for various substrates and did not have any ${\alpha}-glucosyl$ transferase activity. Both of the glucoamylases hydrolyzed raw glutinous rice starch almost complety, wheras they acted on raw potato starch, raw green banana starch, raw arrow root starch, raw corn starch, raw yam starch and raw high amylose corn starch weakly. Glucoamylase II hydrolyzed raw starches at the higher rate than glucoamylase I.
A fusion protein of human interleukin-2(hiL-2) and glucagon which was expressed in Escherichia coli. was digested with enterokinase for recovery of hIL-2 from the fused protein. To obtain hIL-2 of optimum recovery hydrolysis reaction were performed under various conditions of urea additives and reaction time. hIL-2 was finally purified by RP-HPLC(reversed phase-HPLC) to remove cleaved G3 fusion partner and residual uncleaved G3-IL-2 HIL-2 was eluted in a single peak at 100% acetonitrile at 28 min. Optimum urea concentration was found to be 0.5 M and 24 h reaction time was sufficient without any additive such as CaCl2 and Tween-20.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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