Lysophosphatidylcholine (LPC), which accumulates in atherosclerotic arteries, has been reported to inhibit endothelium-dependent relaxation (EDR) in many different species. However, the underlying mechanism of LPC-induced inhibition of EDR is still uncertain. In the present study, we measured simultaneously both isometric tension and cytosolic free $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$) in rabbit carotid strips, and examined the effect of LPC on tension and $[Ca^{2+}]_i$. In carotid strips with intact-endothelium, high $K^+$ (70 mM) increased both tension and $[Ca^{2+}]_i$, and cumulative addition of acetylcholine (ACh) from 0.1 to $10{\mu}M$ induced dose dependent increase of $[Ca^{2+}]_i$ with concomitant relaxation. In the presence of L-NAME (0.1 mM), ACh increased $[Ca^{2+}]_i$ without affecting the amplitude of high $K^+-induced$ tension. These ACh-induced change of $[Ca^{2+}]_i$ and tension was abolished by removal of endothelium or 10 nM 4-DAMP (muscarinic receptor antagonist) pretreatment. Pretreatment of LPC ($10{\mu}M$) inhibited ACh ($10{\mu}M$)-induced change of tension and $[Ca^{2+}]_i$ in endothelium-intact carotid artery. On the other hand, LPC had no effect on ACh-induced change of tension and $[Ca^{2+}]_i$ in endothelium denuded artery. In $Ca^{2+}$-free external solution, ACh transiently increased $[Ca^{2+}]_i$, and pretreatment of LPC significantly inhibited ACh-induced transient $[Ca^{2+}]_i$ change. Based on the above results, it may be concluded that LPC inhibits the ACh-induced $[Ca^{2+}]_i$ change through inhibition of $Ca^{2+}$ mobilization in vascular endothelial cells, resulting in decreased production of NO and concomitant inhibition of endotheliumdependent vascular relaxation.
Woo, Sun-Hee;Hwang, Seon-Hwa;Kim, Joon-Chul;Morad, Martin
Biomolecules & Therapeutics
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v.15
no.4
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pp.212-217
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2007
In atrial myocytes, lacking t-tubules, $Ca^{2+}$ current ($I_{Ca}$)-initiated $Ca^{2+}$ release at the peripheral junctional sites propagates into the interior of the cell by diffusion of $Ca^{2+}$. We have previously reported that time of activation of the central sites is independent of $I_{Ca}$. In the present study we have probed the effects of Bay K 8644 on $Ca^{2+}$ propagation wave to the center of the myocyte using rapid 2-D confocal $Ca^{2+}$ imaging in the rat atrial myocytes. Enhancement of $I_{Ca}$ by Bay K 8644 accelerated the rate of peripheral $Ca^{2+}$ release, but did not affect the speed of propagation of central release. In contrast, enhancement of $I_{Ca}$ by intracellular cAMP reduced the magnitude of peripheral and central $Ca^{2+}$ transients, but significantly accelerated the speed of central $Ca^{2+}$ release. Our data suggest that the speed of central $Ca^{2+}$ propagation triggered by $I_{Ca}$ is not regulated by the magnitude of either $I_{Ca}$ or local cytosolic $Ca^{2+}$ releases.
In the heart, $Na^{+}-Ca^{2+}$ exchange (NCX) is the major $Ca^{2+}$ extrusion mechanism. NCX has been considered as a relaxation mechanism, as it reduces global $[Ca^{2+}]_i$ raised during activation. However, if NCX locates in the close proximity to the ryanodine receptor, then NCX would curtail $Ca^{2+}$ before its diffusion to global $Ca^{2+}_i$ This will result in a global $[Ca^{2+}]_i$ decrease especially during its ascending phase rather than descending phase. Therefore, NCX would decrease the myocardial contractility rather than inducing relaxation in the heart. This possibility was examined in this study by comparing NCX-induced extrusion of $Ca^{2+}$ after its release from SR in the presence and absence of global $Ca^{2+}_i$ transient in the isolated single rat ventricular myocytes by using patch-clamp technique in a whole-cell configuration. Global $Ca^{2+}_i$ transient was controlled by an internal dialysis with different concentrations of BAPTA added in the pipette. During stimulation with a ramp pulse from +100 mV to -100 mV for 200 ms, global $Ca^{2+}_i$ transient was suppressed only mildly, and completely at 1 mmol/L, and 10 mmol/L BAPTA, respectively. In these situations, ryanodine-sensitive inward NCX current was compared using $100{\mu}mol/L$ ryanodine, $Na^+$ depletion, 5 mmol/L $NaCl_2$ and $1{\mu}mol/L$ nifedipine. Surprisingly, the result showed that the ryanodine-sensitive inward NCX current was well preserved after 10 mmol/L BAPTA to 91 % of that obtained after 1 mmol/L BAPTA. From this result, it is concluded that most of the NCX-induced $Ca^{2+}$ extrusion occurs before the $Ca^{2+}$ diffuses to global $Ca^{2+})i$ in the rat ventricular myocyte.
Infection of fish cells with IHNV resulted in gradual increase in cytosolic free $Ca^{2+}$ concentration $([Ca^{2+}]_i)$ in CHSE, gradual decrease in $[Ca^{2+}]_i$ in FHM, and no significant change in RTG cells. The degree of $[Ca^{2+}]_i$ increase or decrease was dependent on the amount of infectious virus, and these $[Ca^{2+}]_i$ variations were maximal at 16 hours after virus infection (p. i.) in both cell lines. When the fish cells were infected with inactivated IHNV, evident variation in $[Ca^{2+}]_i$ was not observed. Thus, infectivity of IHNV appears to correlate with changes in $[Ca^{2+}]_i$ in virus-infected cells. These IHNV-induced $[Ca^{2+}]_i$ changes were partially blocked by cycloheximide, but not affected by cordycepin. It seems to be that virus-induced $Ca^{2+}$ variations were more related with protein synthesis than RNA synthesis. Various $Ca^{2+}$ related drugs were used in search for the mechanisms of the $[Ca^{2+}]_i$, changes following IHNV infection of CHSE cells. Decreasing extracellular $Ca^{2+}$ concentration or blocking $Ca^{2+}$ influx from extracellular media inhibited the IHNV-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$, in CHSE cells. Similar results were obtained with intracellular $Ca^{2+}$ blockers. Thus it is suggested that both the extracellular and the intracellular $Ca^{2+}$ sources are important in IHNV-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in CHSE cells.
The glutamate receptors (GluRs) are key receptors for modulatory synaptic events in the central nervous system. It has been reported that glutamate increases the intracellular $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) and induces cytotoxicity. In the present study, we investigated whether the glutamate-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase was associated with the activation of ionotropic (iGluR) and metabotropic GluRs (mGluR) in substantia gelatinosa neurons, using spinal cord slice of juvenile rats (10${\sim}21 day). $[Ca^{2+}]_i$ was measured using conventional imaging techniques, which was combined with whole-cell patch clamp recording by incorporating fura-2 in the patch pipette. At physiological concentration of extracellular $Ca^{2+}$, the inward current and $[Ca^{2+}]_i$ increase were induced by membrane depolarization and application of glutamate. Dose-response relationship with glutamate was observed in both $Ca^{2+}$ signal and inward current. The glutamate-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase at holding potential of -70 mV was blocked by CNQX, an AMPA receptor blocker, but not by AP-5, a NMDA receptor blocker. The glutamate-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in $Ca^{2+}$ free condition was not affected by iGluR blockers. A selective mGluR (group I) agonist, RS-3,5-dihydroxyphenylglycine (DHPG), induced $[Ca^{2+}]_i$ increase at holding potential of -70 mV in SG neurons. These findings suggest that the glutamate-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase is associated with AMPA-sensitive iGluR and group I mGluR in SG neurons of rats.
Purpose: It is generally accepted that smooth muscle contraction is triggered by intracellular $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$) released from intracellular $Ca^{2+}$ stores such as sarcoplasmic teticulum (SR) and from the extracellular space. The increased $[Ca^{2+}]^i$ can phosphorylate the 20,000 dalton myosin light chain $(MLC_{20})$ by activating MLC kinase (MLCK), and this initiates smooth muscle contraction. In addition to the $[Ca^{2+}]_i$MACK-tension pathway, a number of intracellular signal molecules, including mitogen-activated protein kinase (MAPK), protein kinase C (PKC) and others, play important roles in the regulation of smooth muscle contraction. However, the mechanisms regulating contraction of depletion of SR $Ca^{2+}$ in mouse gastric smooth muscle strips is not still clear. Methods: To investigate the rotes of $Ca^{2+}$ influx and SR $Ca^{2+}$ release channel on gastric motility, isometric contraction and $[Ca^{2+}]_i$ were examined in mouse gastric smooth muscle strips. Results: High KCl, ryanodine, an activator of $Ca^{2+-}$induced $Ca^{2+}$ release channel, and cyclopiazonic acid (CPA), an inhibitor of SR $Ca^{2+-}$ATPase evoked a sustained increase in muscle contraction and $[Ca^{2+}]_i$. These increases induced by high KCl, ryanodine, and CPA were partially blocked by application of verapamil ($10{\mu}M$), a L-type $Ca^{2+}$ channel inhibitor. Additionally, in $Ca^{2+-}$free solution (1 mM EGTA), ryanodine and CPA had no effect contraction and $[Ca^{2+}]_i$ in fundic muscle strips. Conclusion: These results that extracellular $Ca^{2+}$ influx and depletion of SR trigger $Ca^{2+}$ influx through verapamil-sensitive $Ca^{2+}$ channel, and extracellular and SR $Ca^{2+}$ store may functionally involve in the subcellular $Ca^{2+}$ mobilization in mouse gastric muscle.
Cardiac chambers serve as mechanosensory systems during the haemodynamic or mechanical disturbances. To examine a possible role of fluid pressure (FP) in the regulatien of atrial $Ca^{2+}$ signaling we investigated the effect of FP on L-type $Ca^{2+}$ current $(I_{Ca})$ in rat ventricular myocytes using whole-cell patch-clamp technique. FP $(\sim40cm\;H_2O)$ was applied to whole area of single myocytes with electronically controlled micro-jet system. FP suppressed the magnitude of peak $I_{Ca}$ by $\cong25\%$ at 0 mV without changing voltage dependence of the current-voltage relationship. FP significantly accelerated slow component in inactivation of $I_{Ca}$, but not its fast component. Analysis of steady-state inactivation curve revealed a reduction of the number of $Ca^{2+}$ channels available for activity in the presence of FP. Dialysis of myocytes with high concentration of immobile $Ca^{2+}$ buffer partially attenuated the FP-induced suppression of $I_{Ca}$. In addition, the intracellular $Ca^{2+}$ buttering abolished the FP-induced acceleration of slow component in $I_{Ca}$ inactivation. These results indicate that FP sup-presses $Ca^{2+}$ currents, in part, by increasing cytosolic $Ca^{2+}$ concentration.
The relaxation induced by stimulation of the inhibitory non-adrenergic, non-cholinergic (iNANC) nerve is mediated by the release of iNANC neurotransmitters such as nitric oxide (NO), vasoactive intestinal peptide (VIP) and adenosine triphosphate (ATP). The mechanisms of NO, VIP or ATP-induced relaxation have been partly determined in previous studies, but the detailed mechanism remains unknown. We tried to identify the nature of iNANC neurotransmitters in the smooth muscle of guinea pig ileum and to determine the mechanism of the inhibitory effect of nitric oxide. We measured the effect of NO-donors VIP and ATP on the intracellular $Ca^{2+}$ concentration$([Ca^{2+}]_i)$, by means of a fluorescence dye(fura 2) and tension simultaneously in the isolated guinea pig ileal smooth muscle. Following are the results obtained. 1. Sodium nitroprusside $(SNP:10^{-5}\;M)$ or S -nitro-N-acetyl-penicillamine $(SNP:10^{-5}\;M)$ decreased resting $[Ca^{2+}]_i$ I and tension of muscle. SNP or SNAP also inhibited rhythmic oscillation of $[Ca^{2+}]_i$ and tension. In 40mM $K^+$ solution or carbachol ($(CCh:10^{-6}\;M)$-induced precontracted muscle, SNP decreased muscle tension. VIP did not change $[Ca^{2+}]_i$ and tension in the resting or precontracted muscle, but ATP increased resting $[Ca^{2+}]_i$ and tension in the resting muscle. 2. 1H-[1,2,4]oxadiazol(4,3-a)quinoxalin-1-one $(ODQ:1\;{\mu}M)$, a specific inhibitor of soluble guanylate cyclase, limited the inhibitory effect of SNP 3. Glibenclamide $(10\;{\mu}M)$, a blocker of $K_{ATP}$ channel, and 4-aminopyridine (4-AP:5 mM), a blocker of delayed rectifier K channel, apamin $(0.1\;{\mu}M)$, a blocker of small conductance $K_{Ca}$ channel had no effect on the inhibitory effect of SNP. Iberiotoxin $(0.1\;{\mu}M)$, a blocker of large conductance $K_{Ca}$ channel, significantly increased the resting $[Ca^{2+}]_i$, and tension, and limited the inhibitory effect of SNP. 4. Nifedipine $(1\;{\mu}M)$ or elimination of external $Ca^{2+}$ decreased not only resting $[Ca^{2+}]_i$ and tension but also oscillation of $[Ca^{2+}]_i$ and tension. Ryanodine $(5\;{\mu}M)$ and cyclopiazonic acid $(10\;{\mu}M)$ decreased oscillation of $[Ca^{2+}]_i$ and tension. 5. SNP decreased $Ca^{2+}$ sensitivity of contractile protein. In conclusion, these results suggest that 1) NO is an inhibitory neurotransmitter in the guinea pig ileum, 2) the inhibitory effect of SNP on the $[Ca^{2+}]_i$ and tension of the muscle is due to a decrease in $[Ca^{2+}]_i$ by activation of the large conductance $K_{Ca}$ channel and a decrease in the sensitivity of contractile elements to $Ca^{2+}$ through activation of G-kinase.
Eum, Jin Hee;Park, Miseon;Yoon, Jung Ah;Yoon, Sook Young
Development and Reproduction
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v.24
no.4
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pp.297-306
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2020
Repetitive changes in the intracellular calcium concentration ([Ca2+]i) triggers egg activation, including cortical granule exocytosis, resumption of second meiosis, block to polyspermy, and initiating embryonic development. [Ca2+]i oscillations that continue for several hours, are required for the early events of egg activation and possibly connected to further development to the blastocyst stage. The sources of Ca2+ ion elevation during [Ca2+]i oscillations are Ca2+ release from endoplasmic reticulum through inositol 1,4,5 tri-phosphate receptor and Ca2+ ion influx through Ca2+ channel on the plasma membrane. Ca2+ channels have been characterized into voltage-dependent Ca2+ channels (VDCCs), ligand-gated Ca2+ channel, and leak-channel. VDCCs expressed on muscle cell or neuron is specified into L, T, N, P, Q, and R type VDCs by their activation threshold or their sensitivity to peptide toxins isolated from cone snails and spiders. The present study was aimed to investigate the localization pattern of N and P/Q type voltage-dependent calcium channels in mouse eggs and the role in fertilization. [Ca2+]i oscillation was observed in a Ca2+ contained medium with sperm factor or adenophostin A injection but disappeared in Ca2+ free medium. Ca2+ influx was decreased by Lat A. N-VDCC specific inhibitor, ω-Conotoxin CVIIA induced abnormal [Ca2+]i oscillation profiles in SrCl2 treatment. N or P/Q type VDC were distributed on the plasma membrane in cortical cluster form, not in the cytoplasm. Ca2+ influx is essential for [Ca2+]i oscillation during mammalian fertilization. This Ca2+ influx might be controlled through the N or P/Q type VDCCs. Abnormal VDCCs expression of eggs could be tested in fertilization failure or low fertilization eggs in subfertility women.
N-acetyl-L-cysteine (NAC) and cysteine have been implicated in a number of human neutrophils' functional responses. However, though $Ca^{2+}$ signaling is one of the key signalings contributing to the functional responses of human neutrophils, effects of NAC and cysteine on intracellular calcium concentration ($[Ca^{2+}]_i$) in human neutrophils have not been investigated yet. Thus, this study was carried out with an objective to investigate the effects of NAC and cysteine on $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils. We observed that NAC ($1{\mu}M{\sim}1mM$) and cysteine ($10{\mu}M{\sim}1mM$) increased $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils in a concentration-dependent manner. In NAC pre-supplmented buffer, an additive effect on N-formyl-methionine-leucine-phenylalanine (fMLP)-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils was observed. In $Ca^{2+}$-free buffer, NAC- and cysteine-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in human neutrophils completely disappeared, suggesting that NAC- and cysteine-mediated increase in $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils occur through $Ca^{2+}$ influx. NAC- and cysteine-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase was effectively inhibited by calcium channel inhibitors SKF96365 ($10{\mu}m$) and ruthenium red ($20{\mu}m$). In $Na^+$-free HEPES, both NAC and cysteine induced a marked increase in $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils, arguing against the possibility that $Na^+$-dependent intracellular uptake of NAC and cysteine is necessary for their $[Ca^{2+}]_i$ increasing activity. Our results show that NAC and cysteine induce $[Ca^{2+}]_i$ increase through $Ca^{2+}$ influx in human neutrophils via SKF96365- and ruthenium red-dependent way.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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