The present study was performed to examine the effect of fangchinoline, a bis- benzylisoquinoline alkaloid, which exhibits the characteristics of a $Ca^{2+}$ channel blocker, on cyanide-induced neurotoxicity using cultured rat cerebellar granule neurons. NaCN produced a concentration-dependent reduction of cell viability, which was blocked by MK-801, an N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptor antagonist, verapamil, L-type$Ca^{2+}$channel blocker, and L-NAME, a nitric oxide synthase inhibitor. Pretreatment with fangchinoline over a concentration range of 0.1 to 10 $\mu$M significantly decreased the NaCN-induced neuronal cell death, glutamate release into medium, and elevation of $[Ca^{2+}]_i$ and oxidants generation. These results suggest that fangchinoline may mitigate the harmful effects of cyanide-induced neuronal cell death by interfering with $[Ca^{2+}]_i$influx, due to its function as a $Ca^{2+}$ channel blocker, and then by inhibiting glutamate release and oxidants generation.
There are some evidence for the presence of more than one type of calcium channels. To investigate whether organic calcium antagonist sensitive calcium channels exist in the isolated sarcolemmal membrane, we prepared high KCl-loaded sarcolemmal vesicle from the procine small instine, and induced calcium transport by high $K^+$ concentration or by electrical stimulation after preincubation of KCl-loaded vesicle in the low potassium solution. Calcium transport induced by high $K^+$ concentration (84.7mM) was significantly increased (p<0.05), compared with that by low $K^+$ concentration (2.08 mM), and not inhibited by diltiazem $(10^{-6}\;M)$. Calcium transport was inactivated with time. By continuous electrical stimulation (3V, 15Hz, 25m see), calcium transport was markedly increased, and inhibited significantly by dilltiazem $(10^{-6}\;M)$ and nifedipine $(10^{-6}\;M)$ (p<0.005), compared with the value of control without electrical stimulation. Calcium transport by electrical stimulation was not inactivated with time for at least 2 min. From these results, it was concluded that there was organic calcium antagonist sensitive channel in the isolated intestinal sarcolemma membrane, which was activated by electrical stimulation.
The present study was designed to examine whether the co-application of morphine with $Ca^{2+}$ channel antagonist $(Mn^{2+},\;verapamil)$, N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptor antagonist (2-amino-5-phosphonopentanoic acid$[AP_5]$, $Mg^{2+}$) or protein kinase C inhibitor (H-7) causes the potentiation of morphine-induced antinociceptive action by using an in vivo electrophysiological technique. A single iontophoretic application of morphine or an antagonist alone induced weak inhibition of wide dynamic range (WDR) cell responses to iontophoretically applied NMDA and C-fiber stimulation. Although there was a little difference in the potentiating effects, the antinociceptive action of morphine was potentiated when morphine was iontophoretically applied together with $Mn^{2+}$, verapamil, $AP_5$, $Mg^{2+}$ or H-7. However, the potentiating action between morphine and each antagonist was not apparent, when the antinociceptive action evoked by morphine or the antagonist alone was too strong. These results suggest that the potentiating effect can be caused by the interaction between morphine and each antagonist in the spinal dorsal horn.
Adrenal chromaffin cells secrete catecholamine in response to acetylcholine. The secretory response has absolute requirement for extracellular calcium, indication that $Ca^{2+}$ influx through voltage dependent $Ca^{2+}$ channel (VDCC) is the primary trigger of the secretion cascade. Although the existence of various types of $Ca^{2+}$ channels has been explored using patch clamp technique in adrenal chromaffin cells, the contribution of different types of $Ca^{2+}$ channels to catecholamine secretion remains to be established. To investigate the quantative contribution of different types of $Ca^{2+}$ channels to cate-cholamine secretion, $Ca^{2+}$ current($I_{Ca}$) and the resultant membrane capacitance increment($\Delta{C}_{m}$) were simultaneoulsy measured. Software based phasor detector technique was used to monitor $\Delta{C}_{m}$. After blockade of L type VDCC with nicardipine (1$\mu$M), $I_{ca}$ was blocked to 43.85$\pm$6.72%(mean$\pm$SEM) of control and the resultant ㅿC$_{m}$ was reduced ot 30.10$\pm$16.44% of control. In the presence of nicardipine and $\omega$-conotoxin in GVIA(l$\mu$M), an N type VDCC antagonist, $I_{ca}$ was blocked to 11.62$\pm$2.96% of control and the resultant $\Delta{C}_{m}$ was reduced to 26.13$\pm$8.25% of control. Finally, in the presence of L, N, and P type $Ca^{2\pm}$ channel antagonists(nicardipine, $\omega$-Conotoxin GVIA, and $\omega$-agatoxin IVA, respectively), $I_{ca}$ and resultant $\Delta{C}_{m}$ were almost completely blocked. From the observation of parallel effects of $Ca^{2+}$ channel antagonists on $I_{ca}$ and $\Delta{C}_{m}$, it was concluded that L, N, and also P type $Ca^{2+}$ channels served and $Ca^{2+}$ source for exocytosis and no difference was observed in their efficiency to evoke exocytosis amost L, N, and P type $Ca^{2+}$ channels.
Yang, Ji Seon;Jeon, Sujeong;Jang, Hyun-Jong;Yoon, Shin Hee
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.26
no.6
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pp.531-540
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2022
Group 1 metabotropic glutamate receptors (mGluRs) can positively affect postsynaptic neuronal excitability and epileptogenesis. The objective of the present study was to determine whether group 1 mGluRs might be involved in synaptically-induced intracellular free Ca2+ concentration ([Ca2+]i) spikes and neuronal cell death induced by 0.1 mM Mg2+ and 10 µM glycine in cultured rat hippocampal neurons from embryonic day 17 fetal Sprague-Dawley rats using imaging methods for Ca2+ and 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide assays for cell survival. Reduction of extracellular Mg2+ concentration ([Mg2+]o) to 0.1 mM induced repetitive [Ca2+]i spikes within 30 sec at day 11.5. The mGluR5 antagonist 6-Methyl2-(phenylethynyl) pyridine (MPEP) almost completely inhibited the [Ca2+]i spikes, but the mGluR1 antagonist LY367385 did not. The group 1 mGluRs agonist, 3,5-dihydroxyphenylglycine (DHPG), significantly increased the [Ca2+]i spikes. The phospholipase C inhibitor U73122 significantly inhibited the [Ca2+]i spikes in the absence or presence of DHPG. The IP3 receptor antagonist 2-aminoethoxydiphenyl borate or the ryanodine receptor antagonist 8-(diethylamino)octyl 3,4,5-trimethoxybenzoate also significantly inhibited the [Ca2+]i spikes in the absence or presence of DHPG. The TRPC channel inhibitors SKF96365 and flufenamic acid significantly inhibited the [Ca2+]i spikes in the absence or presence of DHPG. The mGluR5 antagonist MPEP significantly increased the neuronal cell survival, but mGluR1 antagonist LY367385 did not. These results suggest a possibility that mGluR5 is involved in synaptically-induced [Ca2+]i spikes and neuronal cell death in cultured rat hippocampal neurons by releasing Ca2+ from IP3 and ryanodine-sensitive intracellular stores and activating TRPC channels.
We investigated the effect of ${\alpha}-adrenergic$ and cholinergic receptor agonists on $Ca^{2+}$ current in adult rat trigeminal ganglion neurons using whole-cell patch clamp methods. The application of acetylcholine, carbachol, and oxotremorine ($50\;{\mu}M\;each$) produced a rapid and reversible reduction of the $Ca^{2+}$ current by $17{\pm}6%,\;19{\pm}3%,\;and\;18{\pm}4%$, respectively. Atropine, a muscarinic antagonist, blocked carbachol- induced $Ca^{2+}$ current inhibition to $3{\pm}1%$. Norepinephrine ($50\;{\mu}M$) reduced $Ca^{2+}$ current by $18{\pm}2%$, while clonidine ($50\;{\mu}M$), an ${\alpha}2-adrenergic$ receptor agonist, inhibited $Ca^{2+}$ current by only $4{\pm}1%$. Yohimbine, an ${\alpha}2-adrenergic$ receptor antagonist, did not block the inhibitory effect of norepinephrine on $Ca^{2+}$ current, whereas prazosin, an ${\alpha}1-adrenergic$ receptor antagonist, attenuated the inhibitory effect of norepinephrine on $Ca^{2+}$ current to $6{\pm}1%$. This pharmacology contrasts with ${\alpha}2-adrenergic$ receptor modulation of $Ca^{2+}$ channels in rat sympathetic neurons, which is sensitive to clonidine and blocked by yohimbine. Our data suggest that the modulation of voltage dependent $Ca^{2+}$ channel by norepinephrine is mediated via an α1-adrenergic receptor. Pretreatment with pertussis toxin (250 ng/ml) for 16 h greatly reduced norepinephrine- and carbachol-induced $Ca^{2+}$ current inhibition from $17{\pm}3%\;and\;18{\pm}3%\;to\;2{\pm}1%\;and\;2{\pm}1%$, respectively. These results demonstrate that norepinephrine, through an ${\alpha}1-adrenergic$ receptor, and carbachol, through a muscarinic receptor, inhibit $Ca^{2+}$ currents in adult rat trigeminal ganglion neurons via pertussis toxin sensitive GTP-binding proteins.
Gintonin, a novel, ginseng-derived G protein-coupled lysophosphatidic acid (LPA) receptor ligand, elicits $[Ca^{2+}]_i$ transients in neuronal and non-neuronal cells via pertussis toxin-sensitive and pertussis toxin-insensitive G proteins. The slowly activating delayed rectifier $K^+$ ($I_{Ks}$) channel is a cardiac $K^+$ channel composed of KCNQ1 and KCNE1 subunits. The C terminus of the KCNQ1 channel protein has two calmodulin-binding sites that are involved in regulating $I_{Ks}$ channels. In this study, we investigated the molecular mechanisms of gintonin-mediated activation of human $I_{Ks}$ channel activity by expressing human $I_{Ks}$ channels in Xenopus oocytes. We found that gintonin enhances $I_{Ks}$ channel currents in concentration- and voltage-dependent manners. The $EC_{50}$ for the $I_{Ks}$ channel was $0.05{\pm}0.01{\mu}g/ml$. Gintonin-mediated activation 1 of the $I_{Ks}$ channels was blocked by an LPA1/3 receptor antagonist, an active phospholipase C inhibitor, an $IP_3$ receptor antagonist, and the calcium chelator BAPTA. Gintonin-mediated activation of both the $I_{Ks}$ channel was also blocked by the calmodulin (CaM) blocker calmidazolium. Mutations in the KCNQ1 $[Ca^{2+}]_i$/CaM-binding IQ motif sites (S373P, W392R, or R539W)blocked the action of gintonin on $I_{Ks}$ channel. However, gintonin had no effect on hERG $K^+$ channel activity. These results show that gintonin-mediated enhancement of $I_{Ks}$ channel currents is achieved through binding of the $[Ca^{2+}]_i$/CaM complex to the C terminus of KCNQ1 subunit.
The calcium-activated $K^+$ ($BK_{Ca}$) channel is one of the potassium-selective ion channels that are present in the nervous and vascular systems. $Ca^{2+}$ is the main regulator of $BK_{Ca}$ channel activation. The $BK_{Ca}$ channel contains two high affinity $Ca^{2+}$ binding sites, namely, regulators of $K^+$ conductance, RCK1 and the $Ca^{2+}$ bowl. Lysophosphatidic acid (LPA, 1-radyl-2-hydroxy-sn-glycero-3-phosphate) is one of the neurolipids. LPA affects diverse cellular functions on many cell types through G protein-coupled LPA receptor subtypes. The activation of LPA receptors induces transient elevation of intracellular $Ca^{2+}$ levels through diverse G proteins such as $G{\alpha}_{q/11}$, $G{\alpha}_i$, $G{\alpha}_{12/13}$, and $G{\alpha}s$ and the related signal transduction pathway. In the present study, we examined LPA effects on $BK_{Ca}$ channel activity expressed in Xenopus oocytes, which are known to endogenously express the LPA receptor. Treatment with LPA induced a large outward current in a reversible and concentration-dependent manner. However, repeated treatment with LPA induced a rapid desensitization, and the LPA receptor antagonist Ki16425 blocked LPA action. LPA-mediated $BK_{Ca}$ channel activation was also attenuated by the PLC inhibitor U-73122, $IP_3$ inhibitor 2-APB, $Ca^{2+}$ chelator BAPTA, or PKC inhibitor calphostin. In addition, mutations in RCK1 and RCK2 also attenuated LPA-mediated $BK_{Ca}$ channel activation. The present study indicates that LPA-mediated activation of the $BK_{Ca}$ channel is achieved through the PLC, $IP_3$, $Ca^{2+}$, and PKC pathway and that LPA-mediated activation of the $BK_{Ca}$ channel could be one of the biological effects of LPA in the nervous and vascular systems.
The present study was designed to investigate the characteristics of gintonin, one of components isolated from Korean Ginseng on secretion of catecholamines (CA) from the isolated perfused model of rat adrenal gland and to clarify its mechanism of action. Gintonin (1 to $30{\mu}g/ml$), perfused into an adrenal vein, markedly increased the CA secretion from the perfused rat adrenal medulla in a dose-dependent fashion. The gintonin-evoked CA secretion was greatly inhibited in the presence of chlorisondamine ($1{\mu}M$, an autonomic ganglionic bloker), pirenzepine ($2{\mu}M$, a muscarinic $M_1$ receptor antagonist), Ki14625 ($10{\mu}M$, an $LPA_{1/3}$ receptor antagonist), amiloride (1 mM, an inhibitor of $Na^+/Ca^{2+}$ exchanger), a nicardipine ($1{\mu}M$, a voltage-dependent $Ca^{2+}$ channel blocker), TMB-8 ($1{\mu}M$, an intracellular $Ca^{2+}$ antagonist), and perfusion of $Ca^{2+}$-free Krebs solution with 5mM EGTA (a $Ca^{2+}$chelater), while was not affected by sodium nitroprusside ($100{\mu}M$, a nitrosovasodialtor). Interestingly, LPA ($0.3{\sim}3{\mu}M$, an LPA receptor agonist) also dose-dependently enhanced the CA secretion from the adrenal medulla, but this facilitatory effect of LPA was greatly inhibited in the presence of Ki 14625 ($10{\mu}M$). Moreover, acetylcholine (AC)-evoked CA secretion was greatly potentiated during the perfusion of gintonin ($3{\mu}g/ml$). Taken together, these results demonstrate the first evidence that gintonin increases the CA secretion from the perfused rat adrenal medulla in a dose-dependent fashion. This facilitatory effect of gintonin seems to be associated with activation of LPA- and cholinergic-receptors, which are relevant to the cytoplasmic $Ca^{2+}$ increase by stimulation of the $Ca^{2+}$ influx as well as by the inhibition of $Ca^{2+}$ uptake into the cytoplasmic $Ca^{2+}$ stores, without the increased nitric oxide (NO). Based on these results, it is thought that gintonin, one of ginseng components, can elevate the CA secretion from adrenal medulla by regulating the $Ca^{2+}$ mobilization for exocytosis, suggesting facilitation of cardiovascular system. Also, these findings show that gintonin might be at least one of ginseng-induced hypertensive components.
최근 동물의 진통 및 진정을 목적으로 널리 사용되고 있는 imidazole 유도체인 clonidine, medetomidine, etomidate 등의 약물과 xylazine의 효과를 발정정지기의 척출 돼지 자궁근에서 검토하였다. Clonidine($10^{-8}{\sim}10^{-6}M$)이나 medetomidine($10^{-8}{\sim}10^{-6}M$)은 xylazine과 비슷한 정도로 용량의존적인 자궁근의 수축을 일으켰다. Clonidine, medetomidine, xylazine 등의 $EC_{50}$는 각각 24.7nM, 19.9nM, 45.1nM이었다. 그러나 etomidate는 $10^{-6}M$ 미만의 농도에서 반응이 거의 없었으며, $10^{-6}M$ 이상에서 수축반응을 일으켰다. 이들 agonists의 효과는 yohimbine($10^{-8}{\sim}10^{-6}M$), idazoxan($10^{-7}{\sim}10^{-5}M$), tolazoline($10^{-7}{\sim}10^{-5}M$) 등의 ${\alpha}_2-adrenoceptor$ antagonists에 의해서 차단되었으나, ${\alpha}_1-adrenoceptor$ antagonist인 prazosin ($10^{-6}M$)에 의해서는 차단되지 않았다. 또한 $Ca^{2+}-free$ medium이나 verapamil($10^{-5}M$)의 전처치에 의해서 이들 agonist의 효과가 완전히 차단되었다. 결론적으로 발정정지기의 돼지 자궁근에서 clonidine, medetomidine, etomidate, xylazine 등은 ${\alpha}_2-adrenoceptors$의 흥분을 통해 자궁근의 수축을 일으키며, 이 효과는 voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels을 통한 extracellular $Ca^{2+}$ influx의 증가에 의한 것으로 추론하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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