A marine bacterium for producing an collagenolytic protease was isolated from the southern sea of Korea and identified as Vibrio vulnificus and named as Vibrio vulnificus CYK279H. This strain producing an collagenolytic protease was showed high activity toward collagen and gelatin as substrate. The optimum initial pH, NaCl, and temperature for cell growth and protease production was 7.5, 2.0% and 25$^{\circ}C$, respectively. Optimization for collagenolytic protease production was composed of 0.3% D-galactose, 0.6% yeast extract, 4.0% gelatin, 0.2% (NH$_4$)$_2$SO$_4$, and 0.2 mM ferric citrate in artificial sea water. The maximum protease production was required gelatin and yeast extract. The collagenolytic protease production by Vibrio vulnificus CYK279H reached a maximum of 73 unit/l after the cultivation for 18 h under the optimized medium.
Steptomyces sp. GI 32 with high production of glucose isomerase was isolated from soil. The maximum enzyme production was observed in the culture medium containing 1% sorbitol, 0.6% tryptone, 0.4% yeast extract, 1mM Fe$_2$(SO$_4$)$_3$ with initial pH 7.0 when the cell was cultured at 35$^{\circ}C$ about 18 hours with shaking. The enzyme was partially purified by ammonium sulfate fractionation and DEAE cellulose chromatography. The enzyme was also appeared to be relatively thermostable, and no apopreciable inactivation was observed after incubation at 7$0^{\circ}C$ for 1 hour. The optimal pH and temperature of the enzyme were pH 8.0 and 7$0^{\circ}C$, respectively.
In order to develop the processes for the production of fermented feed from cellulosic agricultural by-product, cereal straw, by th action of cellulolytic fungus, the properties of the cellulolytic enzyme produced by Trichoderma sp. KI 7-2 was studied. A higher enzyme activity was obtained in the culture added by 1% rice or barley straw powder than in the culture of pure cellulose. The crude enzyme was prepared by precipitating from 20∼60% saturated ammonium sulphate of the culture supernatant. The optimum conditions for the enzyme reaction were temperature of of 50$^{\circ}C$ and pH 4.2. The crude enzyme was static at 50$^{\circ}C$ for two hours and at pH between 4 and 6. These properties were adopted for the fermented feed production, and several production. Thus, several processes of semisolid culture were devicced to up grade tile fermented feed and to develop into the acceptable quality.
Journal of Korean Society of Environmental Engineers
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v.28
no.1
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pp.48-53
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2006
The purpose of this paper is to investigate the optimal condition of the SynGas production by reforming of propane using plasmatron. Plasma was generated by air and arc discharge. The effects of applied steam, $CO_2$ or Ni-catalyst on propane conversion, yield of hydrogen and $H_2/CO$ ratio as well as correlation of syngas were studied. When the variations of $O_2/C_3H_8$ flow ratio, $H_2O/C_3H_8$ flow ratio and $CO_2/C_3H_8$ flow ratio were $0.94{\sim}1.48,\;4.3{\sim}10\;and\;0.8{\sim}3.05$ respectively, Under the condition mentioned above, result of $H_2O/C_3H_8$ flow ratio was maximum $H_2$ concentration, or $28.2{\sim}31.6%$, and result of $H_2O/C_3H_8$ flow ratio with catalyst was minimum CO concentration or $6.6{\sim}7.1%$ and the ratio of hydrogen to carbon monoxide($H_2/CO$) were $3.89{\sim}4.86$.
Kim, Mi-Sun;Moon, Kwang-Woong;Lee, In-Gu;Lee, Tae-Jin;Sung, Chang-Keun
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.27
no.1
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pp.62-69
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1999
Clostridium butyricum NCIB 9576 evolved hydrogen gas and produced various organic acids from glucose, lactose, starch, and glycerol. Total amount of hydrogen gas produced from 1 and 2% glucose were 630 and 950ml $H_2$/l-broth, respectively, for the first 24 hrs of incubation and the maximum hydrogen production rates were 42 and 94ml $H_2$/hr/1-broth, respectively. Teh initial pH 6.8 decreased to 4.2~4.5 during the first 12~16 hrs of fermentation when the pH was not controlled, resulting in ceasing the cell growth and hydrogen evolution and in degradation of 82 and 40% glucose after 24hrs of incubation from 1 and 2% glucose, respectively. When pH was controlled to 5.5, glucose was consumed completely and resulted in increasing hydrogen production approximately 38~50% compared to the experiments without the pH control. C. butyricum NCIB 9576 produced hydrogen gas approximately 644, 1,700 and 3,080 ml $H_2$/l-broth with 0.5, 1 and 2% lactose, respectively and the maximum hydrogen production rates were 41, 141 and 179ml $H_2$/hr/l-broth, respectively. All of the lactose added was degraded completely during fermentation even though pH was not controlled. C. butyricum NCIB 9576 produced 183 and 709ml $H_2$/l-broth with 0.1 and 0.5% starch for 48 hrs, respectively, when pH was not controlled. The maximum rates of hydrogen gas production were 43 and 186ml $H_2$/l-broth, respectively and 80~100% of starch added was fermented. Approximately 107ml $H_2$/l-broth was produced using 1% glycerol by C. butyricum NCIB 9576 and the pH was maintained higher than 6.1 during fermentation without pH control. The degradation of glucose, lactose, starch and glycerol by C. butyricum NCIB 9576 were affected by the pH of fermentation broth and the organic acids released during fermentation. The pH of feremtntation broth dropped to 4.2~4.6 after 12~14 hrs incubation when glucose was used as a substrate while pHs were maintained above pH 5 under the same experimental conditions when lactose, starch and glycerol were used. The organic solvents and acids produced during glucose fermentation were mainly ethanol, butyrate, acetate and a little of propionate, while butyrate was the main organic acids during the lactose, starch, and glycerol fermentation by C. butyricum NCIB 9576.
TOL plsmid size of Flavobacterium odoratum SUB53 was estimated as 83 Md and the optimum concentration of m-toluate degradation by TOL plasmid was 5 mM. $H_{2}$ production by Rhodopseudomonas sphaeroides KCTC1425 was largely dependent on nitrogenase activity and showed the highest at 30 mM malate with 7 mM glutamate as nitrogen source. Nitrogenase activities were inhibited by 0.3 mM $NH_{4}^{+}$ions, to be appeared the decrease of $H_{2}$ production. Conjugation of TOL plasmids from F. odoratum SUB53 and Pseudomonas putida mt-2 to R. sphaeroides showed the optimum at the exponential stage of recipient cells in presence of helper plasmid pRK2013. According to the investigation of catechol-1,2-oxygenase (C-1, 2-O) and catechol-2,3-oxygenase (C-2,3-O) activities of R. sphaeroides C1 (TOL SUB53) and C2 (TOL mt-2), the gene for C-2,3-O is located on TOL plasmid and gene for C-1, 2-O on the chromosome of R. sphaeroides. m-Toluate was biodegraded by TOL plasmid in R. sphaeroides C1 and C2, presumably to be produced $H_{2}$ gas from the secondary metabolites of m-toluate.e.
Effects of temperature and initial pH of the medium on production of citric acid from cheese whey permeate by Aspergillus niger were investigated. A. niger was cultivated at four different temperatures (27, 30, 33, $36^{\circ}C$) and four different pHs (2, 3, 4, 5) for 15 days. During the fermentation the concentrations of lactose and citric acid in the culture broth were measured. The maximum production of citric acid which was 33.9 g/l (68.26% yield based on lactose utilized) was obtained at $33^{\circ}C$ and pH 3. The production of citric acid was not much affected by shaking speed. However, the shaking speed was found to influence the form of pellets during cell growth.
An in vitro study was conducted to determine the effect of C18-polyunsaturated fatty acid on direct incorporation into the rumen bacteria, bio-hydrogenation and production of CLA in vitro. Sixty milligrams of linoleic acid ($C_{18:2}$) or linolenic acid ($C_{18:3}$) were absorbed into the 0.5 g cellulose powder was added to the 150 ml culture solution consisting of 120 ml McDougall's buffer and 30 ml strained rumen fluid. Four uCi of 1-$^{14}C_{18:2}$ or 1-$^{14}C_{18:3}$ (1 uCi/15 mg each fatty acid) were also added to the corresponding fatty acids to estimate the direct incorporation into the bacterial lipids. The culture solution was then incubated anaerobically in a culture jar with stirrer at 39$^{\circ}C$ for 12 h. Ammonia concentration and pH of the culture solution were slightly influenced by the fatty acids. Amount of fatty acid incorporated into the bacteria was 1.20 mg and 0.43 mg/30 ml rumen fluid for $C_{18:2}$ and $C_{18:3}$, respectively during 12 h incubation. Slightly increased CLA (sum of cis-9, trans-11 and cis-10, trans-12 $C_{18:2}$) was obtained from the $C_{18:3}$ addition compared to that from $C_{18:2}$ after 12 h incubation in vitro.
A bacterium producing pullulanase was from soil, and was identified Bacillus cereus and named as Bacillus cereus JK36. The optimal culture conditions for the efficident production of pullulanase from B. cereus JK36 was obtained by cultivating with the medium composed of 1% pullulan, 1% teast extract, 1% bactopeptone, 0.1% NaH$_{2}$PO$_{4}$, 2H$_{2}$O, 0.02% MgSO$_{4}$\ulcorner7H$_{2}$O at 40$\circ$C, initial pH 6.5 for 70 hours. Using the culture supernatant as crude enzyme, the optimal pH and temperature of the pullulanase of this strain were 6.5 and 50$\circ$C. In effect of pH and temperature on the stability of the enzyme, the enzyme was stable in the range of pH6.0$\sim$9.5 and up to 40$\circ$C, respectively. The hydrolysis product on pullulan was mainly maltotriose.
The culture conditions to maximize the production of laccase (EC 1.10.3.2) from Fomitopsis pinicola mycelia were investigated. Among the tested media for the enzyme production, mushroom complete medium (MCM ; 2% dextrose, 0.2% peptone, 0.2% yeast extract, 0.05% $KH_2PO_4$, and 0.05% $MgSO_4{\cdot}7H_2O$) showed the highest activity of the enzyme. To optimize the culture condition for the laccase activity, influence of various carbon and nitrogen sources was investigated in MCM. Among various carbon and nitrogen sources, 2% glucose and 0.4% peptone showed the highest production of the enzyme, respectively. For the phosphorus and inorganic source, 0.05% $NaH_2PO_4$ and 0.05% $CaCl_2$ were best for the enzyme activity. The enzyme production was reached to highest level after the cultivation for 8 days at $25^{\circ}C$. Native polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) followed by the laccase activity staining using 2, 2'-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) (ABTS) as the substrate was performed to identify the laccase under culture conditions studied. Zymogram analysis of the culture supernatant showed a laccase band with molecular mass of 52 kDa. The optimum pH and temperature for the enzyme activity were $80^{\circ}C$ and pH 3.0.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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