The strain KKI isolated from soil contaminated with polycyclic aromatic hydrocarbons was identified as Pseundomonas sp. based on analyses by MIDI and Biolog Identification System. Cellular and physiological responses of strain KKI to two-ring polycyclic aromatic hydrocarbon, naphthalene were evaluated using radiorespirometry, PLFAs and sequence analysis of Rieske-type iron sulfur center of dioxygenase. KKI was found to be able to rapidly mineralize naphthalene. Notably, KKI cells pregrown on phenanthrene were able to mineralize naphthalene much more rapidly than naphthalenepregrown cells. The total cellular fatty acids of KKI were comprised of eleven C-even and two C-odd fatty acids (fatty acids < 0.2% in abundance were not considered in this calculation). Lipids 12:0 2OH, 12:03 OH, 16:0, 18:1 6c, 18:0 increased for naphthalene-exposed cells, while lipids 18:1 7c1/15:0 ism 2OH, 17:0 cyclo, 18:1 7c, 19:0 cyclo decreased. Data from Northern hybridization using a naphthalene dixoygenase gene fragment cloned out from KKI as a probe provided the information that naphthalene dioxygenase gene was more highly expressed in cells grown on phenanthrene than naphthalene.
Genetically Modified (GM) corn 'Bt11' was developed to promote insect resistance using crylA (b) gene derived from Bacillus thuringiensis. Effects of heat, pressure, and ${\alpha}-amylase$ on DNA fragment degradation in Btll corn were examined through PCR. Whereas DNA fragment degraded completely within 4 min at $150^{\circ}C$ and by autoclave, most remained after oil-frying, boiling, and drying-autoclave. Treatment of ${\alpha}-amylase$ enzyme did not affect DNA fragment degradation. Among 65 corn-processed foods analyzed, 9 were detected as GM corn-containing foods(13.6%).
The single-chain variable fragment (scFv) against lectin-like oxidized low-density lipoprotein receptor-1 (LOX-1) is a promising molecule for its potential use in the diagnosis and immunotherapy of atherosclerosis. Producing this scFv in several milligram amounts could be the starting point for further engineering and application of the scFv. In this study, the abundant expression of the anti-LOX-1 scFv was attempted using Escherichia coli (E. coli) and Brevibacillus choshinensis (B. choshinensis). The scFv had limited soluble yield in E. coli, but it was efficiently secreted by B. choshinensis. The optimized fermentation was determined using the Plackett-Burman screening design and response surface methodology, under which the yield reached up to 1.5 g/l in a 5-L fermentor. Moreover, the properties of the scFvs obtained from the two expression systems were different. The antigen affinity, transition temperature, and particle diameter size were 1.01E-07 M, $55.2{\pm}0.3^{\circ}C$, and 9.388 nm for the scFv expressed by B. choshinensis, and 4.53E-07 M, $52.5{\pm}0.3^{\circ}C$, and 13.54 nm for the scFv expressed by E. coli. This study established an efficient scale-up production methodology for the anti-LOX-1 scFv, which will boost its use in LOX-1-based therapy.
In 1992, Prevotella intermedia was shown to be comprised of another spoecies now known as Prevotella nigrescens. Strain ATCC 33563 is now designated the type strain of P. nigrescens while strain ATCC 25611 is remains the type strain of P. intermedia. The purpose of this study was to find the differences in protein profiles of P. intermedia and P. nigrescens, using sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis, which can be used for differentiation of those two species. A partial amino acid sequence of the 18.6 kDa protein band, which was specific in P. nigrescens, was also determined. The cellular proteins were extracted from the cell pellets of pure cultures of P. intermedia. and P. nigrescens by either sonication or being shaken continuously for 20 min at $21^{\circ}C$ with 1 % SDS or being boiled for 3 min with 1 % SDS. SDS-PAGE was performed according to the method of laemmli using either 12% (w/v) gels or 18% (w/v) gels. Results were as follows ; 1. The similar electrophoretic protein profiles were shown by 3 cellular protein extraction methods for each strain. (Fig. 1 and 2) 2. the 18.6 kDa band which was specific only in P. nigrescens could be used for the differentiation of P. intermedia. and P. nigrescens. (Fig. 1 and 2, Table 1) 3. A total of 4 different tryptic fragments from the 18.6 kDa protein were sequenced. the resulting amino acid sequences were fragment 1.GNPVNIGGEW, 2.FNVVR, 3.NYLT-VAPY, and 4.GGDNVTTYQVLPEIGYN. By comparison to the sequences of known proteins in the Swiss-Prot database and PIR database. 90 % matching between fragment 1 and serine hydroxymethyl transferase(P24060) in the Swiss-Prot, and 90% matching between fragment 1 and glycine hydroxymethyl transferase(S15203) in the PIR were shown, but the identity and function of the 18.6 kDa protein remains unknown.
The fission yeast Schizosaccharomyces pombe contains two distinct superoxide dismutase (SOD) activities, one in the cytosol encoded by the $sod2^{+}$ gene and the other in mitochondria. The $sod2^{+}$ gene encoding putative mitochondrial manganese superoxide dismutase (MnSOD) was isolated from the S. pombe genomic library using a PCR fragment as the probe. The nucleotide sequence of the $sod2^{+}$ gene and its flanking region (4051 bp HindIII fragment) was determined. An intron of 123 nt in size was predicted and confirmed by sequencing the cDNA following reverse transcription PCR. The predicted Sod2p consists of 218 amino acid residues with a molecular mass of 24,346 Da. The deduced amino acid sequence showed a high degree of homology with other MnSODs, especially in the metal binding residues at the active site and their relative positions. The transcriptional start site was mapped by primer extension at 231 at upstream from the ATG codon. A putative TATA box(TATAAAA) was located 58 nt upstream from the transcriptional start site and putative polyadenylation sites were located at 1000, 1062, and 1074 nt downstream from the ATG start codon.
Recombinant protein G has been utilized in the purification of antibodies from various mammalian species based on the interaction of antibodies with protein G. The interaction between immunoglobulin and protein G may not be restricted to the Fc protion of antibodies, as many different $F(ab)_2$ or Fab fragments can also bind to protein G. I found both FAb $F(ab)_2$ of 145-2C11, a hamster anti-mouse $CD3{\varepsilon}$ antibody, bound to the protein G-sepharose. Interestingly, Fab and $F(ab)_2$ of 145-2C11 did not bind to the protein A-sepharose. The binding of Fab and $F(ab)_2$ of 145-2C11 to protein G provided a useful method to remove proteases, chopped fragments of the Fc region, and other contaminating proteins. The remaining intact antibody in the protease reaction mixture can be removed by using a protein A-sepharose, because the Fab and $F(ab)_2$ portions of 145-2C11 did not bind to protein A-sepharose. The specific binding of Fab and $F(ab)_2$ portions of 145-sC11 to a protein G-sepharose (though not to a protein A-sepharose) and binding of intact 145-2C11 to both protein A- and G-sepharose will be useful in developing an effective purification protocol for Fab and $F(ab)_2$ portions of 145-2C11.
Complement fragment iC3b serves as a major opsonin for facilitating phagocytosis via its interaction with complement receptors CR3 and CR4, also known by their leukocyte integrin family names, αMβ2 and αXβ2, respectively. Although there is general agreement that iC3b binds to the αM and αX I-domains of the respective β2-integrins, much less is known regarding the regions of iC3b contributing to the αX I-domain binding. In this study, using recombinant αX I-domain, as well as recombinant fragments of iC3b as candidate binding partners, we have identified two distinct binding moieties of iC3b for the αX I-domain. They are the C3 convertase-generated N-terminal segment of the C3b α'-chain (α'NT) and the factor I cleavage-generated N-terminal segment in the CUBf region of α-chain. Additionally, we have found that the CUBf segment is a novel binding moiety of iC3b for the αM I-domain. The CUBf segment shows about a 2-fold higher binding activity than the α'NT for αX I-domain. We also have shown the involvement of crucial acidic residues on the iC3b side of the interface and basic residues on the I-domain side.
Fragmentations and ion-molecule reactions of ionized cyclohexane propionic acid and cyclohexane butyric acid were studied using FTMS and theoretical calculations. The difference in bond dissociation depending on the aliphatic chain length was investigated and mechanisms for the possible rearrangements depending on the aliphatic carbon length were suggested. The most abundant fragment ion of the ionized cyclohexane propionic acid was c-$C_6H_{11}CH_2\;^+$ formed from the molecular ion by the direct C-C bond cleavage, while that of the ionized cyclohexane butyric acid was c-$C_6H_9C(OH)=OH^+$ formed by rearrangement of the molecular ion from the acid to diol form and loss of propyl radical. Stabilities of the radical and distonic ions of $C_nH_{2n}O^{+\bullet}$ formed from the molecular ion were compared. Protonated molecules were dissociated into smaller ions by losing one or two water molecules. The $[nM + H]^+$, $[nM + H - H_2O]^+$, and $[nM + H - 2H_2O]^+$ with n = 2 and 3 were generated by solvation with the neutral molecules in the ICR cell at long ion trapping time.
Streptomyces setonii (ATCC 39116) is a Gram-positive thermophilic soil actinomycetes capable of degrading single aromatic compounds including phenol and benzoate via ortho-cleavage pathway. we isolated approximately 6.3-kb S. setonii DNA fragment containing a thermophilic catechol 1,2-dioxygenase(C12O) gene. Here we further revealed that the 6.3-kb S. setonii DNA fragment was organized into two putative divergently-transcribed clusters with 6 complete and one incomplete open reading frames (ORFs). The first cluster with 3 ORFs showed significant homologies to previously known benA, benB, and benC, implying a part of benzoate catabolic operon. The second cluster revealed an ortho-cleavage catechol catabolic operon with three translationally-coupled ORFs (catR, catB, catA). Each of these individually-cloned ORFs was expressed in E. coli and identified as a distinct protein band with a theoretical molecular weight in SDS-PAGE. The expression of the cloned S. setonii catechol operon was induced in a heterologous S. lividans by specific single aromatic compounds including catechol, phenol, and 4-chlorophenol. The simitar induction pattern was also observed using a luciferase gene-fused reporter system, implying that S. setonii employs an inducer-specific regulatory mechanism for aromatic compound metabolism.
A recombinant Fab monoclonal antibody (Fab) C37, previously obtained by phage display and biopanning of a random antibody fragment library against Burkholderia pseudomallei protease, was expressed in different strains of Escherichia coli. E. coli strain HB2151 was deemed a more suitable host for Fab expression than other E. coli strains when grown in media supplemented with 0.2% glycerol. The expressed Fab fragment was purified by affinity chromatography on a Protein G-Sepharose column, and the specificity of the recombinant Fab C37 towards B. pseudomallei protease was proven by Western blotting, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and by proteolytic activity neutralization. In addition, polyclonal antibodies against B. pseudomallei protease were produced in rabbits immunized with the protease. These were isolated from high titer serum by affinity chromatography on recombinant-Protein A-Sepharose. Purified polyclonal antibody specificity towards B. pseudomallei protease was proven by Western blotting and ELISA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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