Kim, Young-Hwan;Ahn, Duck-Sun;Kim, Myeong Ok;Joeng, Ji-Hyun;Chung, Seungsoo
Molecules and Cells
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v.37
no.11
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pp.804-811
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2014
The protease-activated receptor (PAR)-2 is highly expressed in endothelial cells and vascular smooth muscle cells. It plays a crucial role in regulating blood pressure via the modulation of peripheral vascular tone. Although several mechanisms have been suggested to explain PAR-2-induced hypotension, the precise mechanism remains to be elucidated. To investigate this possibility, we investigated the effects of PAR-2 activation on N-type $Ca^{2+}$ currents ($I_{Ca-N}$) in isolated neurons of the celiac ganglion (CG), which is involved in the sympathetic regulation of mesenteric artery vascular tone. PAR-2 agonists irreversibly diminished voltage-gated $Ca^{2+}$ currents ($I_{Ca}$), measured using the patch-clamp method, in rat CG neurons, whereas thrombin had little effect on $I_{Ca}$. This PAR-2-induced inhibition was almost completely prevented by ${\omega}$-CgTx, a potent N-type $Ca^{2+}$ channel blocker, suggesting the involvement of N-type $Ca^{2+}$ channels in PAR-2-induced inhibition. In addition, PAR-2 agonists inhibited $I_{Ca-N}$ in a voltage-independent manner in rat CG neurons. Moreover, PAR-2 agonists reduced action potential (AP) firing frequency as measured using the current-clamp method in rat CG neurons. This inhibition of AP firing induced by PAR-2 agonists was almost completely prevented by ${\omega}$-CgTx, indicating that PAR-2 activation may regulate the membrane excitability of peripheral sympathetic neurons through modulation of N-type $Ca^{2+}$ channels. In conclusion, the present findings demonstrate that the activation of PAR-2 suppresses peripheral sympathetic outflow by modulating N-type $Ca^{2+}$ channel activity, which appears to be involved in PAR-2-induced hypotension, in peripheral sympathetic nerve terminals.
Plasma membrane hyperpolarization associated with activation of $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channels plays an important role in sperm capacitation during fertilization. Although Slo3 (slowpoke homologue 3), together with the auxiliary ${\gamma}^2$-subunit, LRRC52 (leucine-rich-repeat-containing 52), is known to mediate the pH-sensitive, sperm-specific $K^+$ current KSper in mice, the molecular identity of this channel in human sperm remains controversial. In this study, we tested the classical $BK_{Ca}$ activators, NS1619 and LDD175, on human Slo3, heterologously expressed in HEK293 cells together with its functional interacting ${\gamma}^2$ subunit, hLRRC52. As previously reported, Slo3 $K^+$ current was unaffected by iberiotoxin or 4-aminopyridine, but was inhibited by ~50% by 20 mM TEA. Extracellular alkalinization potentiated hSlo3 $K^+$ current, and internal alkalinization and $Ca^{2+}$ elevation induced a leftward shift its activation voltage. NS1619, which acts intracellularly to modulate hSlo1 gating, attenuated hSlo3 $K^+$ currents, whereas LDD175 increased this current and induced membrane potential hyperpolarization. LDD175-induced potentiation was not associated with a change in the half-activation voltage at different intracellular pHs (pH 7.3 and pH 8.0) in the absence of intracellular $Ca^{2+}$. In contrast, elevation of intracellular $Ca^{2+}$ dramatically enhanced the LDD175-induced leftward shift in the half-activation potential of hSlo3. Therefore, the mechanism of action does not involve pH-dependent modulation of hSlo3 gating; instead, LDD175 may modulate $Ca^{2+}$-dependent activation of hSlo3. Thus, LDD175 potentially activates native KSper and may induce membrane hyperpolarization-associated hyperactivation in human sperm.
The present study was undertaken to investigate the effect of bradykinin on secretion of catecholamines (CA) evoked by stimulation of cholinergic receptors and membrane depolarization from the isolated perfused model of the rat adrenal glands, and to elucidate its mechanism of action. Bradykinin $(3{\times}10^{-8}M)$ alone produced a weak secretory response of the CA. however, the perfusion with bradykinin $(3{\times}10^{-8}M)$ into an adrenal vein of the rat adrenal gland for 90 min enhanced markedly the secretory responses of CA evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}M)$, excess $K^+$ ($5.6{\times}10^{-2}M$, a membrane depolarizer), DMPP ($10^{-4}$ M, a selective neuronal nicotinic agonist) and McN-A-343 ($10^{-4}$ M, a selective M1-muscarinic agonist). Moreover, bradykinin ($3{\times}10^{-8}$ M) in to an adrenal vein for 90 min also augmented the CA release evoked by BAY-K-8644, an activator of the dihydropyridine L-type $Ca^{2+}$ channels. However, in the presence of $(N-Methyl-D-Phe^7)$-bradykinin trifluoroacetate salt $(3{\times}10^{-8}M)$, an antagonist of $BK_2$-bradykinin receptor, bradykinin no longer enhanced the CA secretion evoked by Ach and high potassium whereas the pretreatment with Lys-$(des-Arg^9,\;Leu^9)$-bradykinin trifluoroacetate salt $(3{\times}10^{-8}M)$, an antagonist of $BK_1$-bradykinin receptor did fail to affect them. Furthermore, the perfusion with bradykinin $(3{\times}10^{-6}M)$ into an adrenal vein of the rabbit adrenal gland for 90 min enhanced markedly the secretory responses of CA evoked by excess $K^+$$(5.6{\times}10^{-2}M)$. Collectively, these experimental results suggest that bradykinin enhances the CA secretion from the rat adrenal medulla evoked by cholinergic stimulation (both nicotininc and muscarinic receptors) and membrane depolarization through the activation of $B_2$-bradykinin receptors, not through $B_1$-bradykinin receptors. This facilitatory effect of bradykinin seems to be associated to the increased $Ca^{2+}$ influx through the activation of the dihydropyridine L-type $Ca^{2+}$ channels.
Effects of quercetin, a kind of flavonoids, on the vasodilating actions were investigated. Among the mechanisms for quercetin-induced vasodilatation in rat aorta, the involvement with the $Ca^{2+}$ activated $K^+$ ($K_{Ca}$) channel was examined. Pretreatment with NE ($5\;{\mu}M$) or KCl (60 mM) was carried out and then, the modulation by quercetin of the constriction was examined using rat aorta ring strips (3 mm) at $36.5^{\circ}C$. Quercetin (0.1 to $100\;{\mu}M$) relaxed the NE-induced vasoconstrictions in a concentrationdependent manner. NO synthesis (NOS) inhibitor, NG-monomethyl-L-arginine acetate (L-NMMA), at $100\;{\mu}M$ reduced the quercetin ($100\;{\mu}M$)-induced vasodilatation from $97.8{\pm}3.7%$ (n=10) to $78.0{\pm}11.6%$ (n=5, p<0.05). Another NOS inhibitor, L-NG-nitro arginine methyl ester (L-NAME), at $10\;{\mu}M$ also had the similar effect. In the presence of both $100\;{\mu}M$ L-NMMA and $10\;{\mu}M$ indomethacin, the quercetin-induced vasodilatation was further attenuated by $100\;{\mu}M$ tetraethylammonium (TEA, a $K_{Ca}$ channel inhibitor). Also TEA decreased the quercetin-induced vasodilatation in endothelium-denuded rat aorta. Used other $K_{Ca}$ channel inhibitors, the quercetin-induced vasodilatation was attenuated by $0.3\;{\mu}M$ apamin (a SK channel inhibitor), but not by 30 nM charybdotoxin (a BK and IK channel inhibitor). Quercetin caused a concentration-dependent vasodilatation, due to the endotheliumdependent and -independent actions. Also quercetin contributes to the vasodilatation selectively with SK channel on smooth muscle.
Carbon monoxide (CO) is a known gaseous bioactive substance found across a wide array of body systems. The administration of low concentrations of CO has been found to exert an anti-inflammatory, anti-apoptotic, anti-hypertensive, and vaso-dilatory effect. To date, however, it has remained unknown whether CO influences atrial natriuretic peptide (ANP) secretion. This study explores the effect of CO on ANP secretion and its associated signaling pathway using isolated beating rat atria. Atrial perfusate was collected for 10 min for use as a control, after which high atrial stretch was induced by increasing the height of the outflow catheter. Carbon monoxide releasing molecule-2 (CORM-2; 10, 50, 100 μM) and hemin (HO-1 inducer; 0.1, 1, 50 μM), but not CORM-3 (10, 50, 100 μM), decreased high stretch-induced ANP secretion. However, zinc porphyrin (HO-1 inhibitor) did not affect ANP secretion. The order of potency for the suppression of ANP secretion was found to be hemin > CORM-2 >> CORM-3. The suppression of ANP secretion by CORM-2 was attenuated by pretreatment with 5-hydroxydecanoic acid, paxilline, and 1H-[1,2,4] oxadiazolo [4,3-a] quinoxalin-1-one, but not by diltiazem, wortmannin, LY-294002, or NG-nitro-L-arginine methyl ester. Hypoxic conditions attenuated the suppressive effect of CORM-2 on ANP secretion. In sum, these results suggest that CORM-2 suppresses ANP secretion via mitochondrial KATP channels and large conductance Ca2+-activated K+ channels.
Relaxin has been demonstrated to have regulatory functions on both the smooth muscle and extracellular matrix (ECM) of blood vessels and fibrotic organs. The diverse mechanisms by which relaxin acts on small resistance arteries and fibrotic organs, including the bladder, are reviewed here. Relaxin induces vasodilation by inhibiting the contractility of vascular smooth muscles and by increasing the passive compliance of vessel walls through the reduction of ECM components, such as collagen. The primary cellular mechanism whereby relaxin induces arterial vasodilation is mediated by the endothelium-dependent production of nitric oxide (NO) through the activation of RXFP1/PI3K, Akt phosphorylation, and eNOS. In addition, relaxin triggers different alternative pathways to enhance the vasodilation of renal and mesenteric arteries. In small renal arteries, relaxin stimulates the activation of the endothelial MMPs and EtB receptors and the production of VEGF and PlGF to inhibit myogenic contractility and collagen deposition, thereby bringing about vasodilation. Conversely, in small mesenteric arteries, relaxin augments bradykinin (BK)-evoked relaxation in a time-dependent manner. Whereas the rapid enhancement of the BK-mediated relaxation is dependent on IKCa channels and subsequent EDH induction, the sustained relaxation due to BK depends on COX activation and PGI2. The anti-fibrotic effects of relaxin are mediated by inhibiting the invasion of inflammatory immune cells, the endothelial-to-mesenchymal transition (EndMT), and the differentiation and activation of myofibroblasts. Relaxin also activates the NOS/NO/cGMP/PKG-1 pathways in myofibroblasts to suppress the TGF-β1-induced activation of ERK1/2 and Smad2/3 signaling and deposition of ECM collagen.
Kim, Sung-Joon;Jun, Jae-Yeoul;Choi, Youn-Baik;Kim, Ki-Whan;Kim, Woo-Gyeum
The Korean Journal of Physiology
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v.28
no.1
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pp.37-50
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1994
Synthetic potassium channel openers (KCOs) are agents capable of opening K-channels in excitable cells. These agents are known to have their maximal potency in the smooth muscle tissue, especially in the vascular smooth muscle. Much attention has been focused on the type of K-channel that is responsible for mediating the effects of KCOs. As the KCO-induced changes are antagonized by glibenclamide, an $K_{ATP}$ (ATP-sensitive K-channel) blocker in the pancreatic ${\beta}-cell,\;K_{ATP}$ was suggested to be the channel responsible. However, there also are many results in favor of other types of K-channel $$(maxi-K,\;small\;conductance\;K_{Ca,}\; SK_{ATP}) mediating the effects of KCOs. Effects of lemakalim, (-)enantiomer of cromakalim (BRL 34915), on the spontaneous contractions and slow waves, were investigated in the antral circular muscle of the guinea-pig stomach. Membrane currents and the effects on membrane currents and single channel activities were also measured in single smooth muscle cells and excised membrane patches by using the patch clamp method. Lemakalim induced hyperpolarization and inhibited spontaneous contractions in a dose-dependent manner. These effects were blocked by glibenclamide and low concentrations of tetraethyl ammonium (< mM). Glibenclamide blocked the effect of lemakalim on the membrane potential and slow waves. The mechanoinhibitory effect of lemakalim was blocked by pretreatment with glibenclamide. In a whole ceIl patch clamp condition, lemakalim largely increased outward K currents. These outward K currents were blocked by TEA, glibenclamide and a high concentration of intracelIular EGTA (10 mM). Volatage-gated Ca currents were not affected by lemakalim. In inside-out patch clamp experiments, lemakalim increased the opening frequency of the large conductance $Ca^{2+}-activated$ K channels $(BK_{Ca},\;Maxi-K).$ From these results, it is suggested that lemakalim induces hyperpolarization by opening K-channels which are sensitive to internal Ca and such a hyperpolarization leads to the inhibition of the spontaneous contraction.
Lee, Dong Un;Ji, Min Jeong;Kang, Jung Yun;Kyung, Sun Young;Hong, Jeong Hee
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.21
no.3
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pp.327-334
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2017
Epidemiologic interest in particulate matter (PM) is growing particularly because of its impact of respiratory health. It has been elucidated that PM evoked inflammatory signal in pulmonary epithelia. However, it has not been established $Ca^{2+}$ signaling mechanisms involved in acute PM-derived signaling in pulmonary fibroblasts. In the present study, we explored dust particles PM modulated intracellular $Ca^{2+}$ signaling and sought to provide a therapeutic strategy by antagonizing PM-induced intracellular $Ca^{2+}$ signaling in human lung fibroblasts MRC5 cells. We demonstrated that PM10, less than $10{\mu}m$, induced intracellular $Ca^{2+}$ signaling, which was mediated by extracellular $Ca^{2+}$. The PM10-mediated intracellular $Ca^{2+}$ signaling was attenuated by antioxidants, phospholipase blockers, polyADPR polymerase 1 inhibitor, and transient receptor potential melastatin 2 (TRPM2) inhibitors. In addition, PM-mediated increases in reactive oxygen species were attenuated by TRPM2 blockers, clotrimazole (CLZ) and N-(p-amylcinnamoyl) anthranilic acid (ACA). Our results showed that PM10 enhanced reactive oxygen species signal by measuring DCF fluorescence and the DCF signal attenuated by both TRPM2 blockers CLZ and ACA. Here, we suggest functional inhibition of TRPM2 channels as a potential therapeutic strategy for modulation of dust particle-mediated signaling and oxidative stress accompanying lung diseases.
ATP-sensitive $K^+$ channels $(K_{ATP})$ are expressed in vascular smooth muscle cells, skeletal muscle cells, pancreatic ${\beta}$ cells, neurons and epithelial cells. $K_{ATP}$ contributes to regulate membrane potential to control vascular tone, to protect myocardial ischemia, and to regulate insulin secretion in pancreatic ${\beta}$ cells. We previously demonstrated that ginseng saponins and ginsenoside $Rg_3$ activated maxi $Ca^{2+}-activated\;K^+$ channel, and this might cause vasodilation. Because $K_{ATP}$ plays an important roles to regulate the resting membrane potential in vascular smooth muscle cells, we investigated whether ginsenoside $Rg_3$ produces vasodilation by activating $K_{ATP}$ We showed in this study that $K_{ATP}$ is expressed in rabbit coronary artery smooth muscle cells. $K_{ATP}$ was inwardly rectifying and was inhibited by intemal application of ATP. Micromolar minoxidil activated, but glyburide inhibited the activity of $K_{ATP}$ Ginsenoside $Rg_3$ relieved inactivaiton of whole-cell $K_{ATP}$ current without affecting the peak amplitude of $K_{ATP}$ currents presumably due to more opening of the channels.
Kim, Sung Eun;Yin, Ming Zhe;Kim, Hae Jin;Vorn, Rany;Yoo, Hae Young;Kim, Sung Joon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.24
no.1
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pp.111-119
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2020
In vascular smooth muscle, K+ channels, such as voltage-gated K+ channels (Kv), inward-rectifier K+ channels (Kir), and big-conductance Ca2+-activated K+ channels (BKCa), establish a hyperpolarized membrane potential and counterbalance the depolarizing vasoactive stimuli. Additionally, Kir mediates endothelium-dependent hyperpolarization and the active hyperemia response in various vessels, including the coronary artery. Pulmonary arterial hypertension (PAH) induces right ventricular hypertrophy (RVH), thereby elevating the risk of ischemia and right heart failure. Here, using the whole-cell patch-clamp technique, we compared Kv and Kir current densities (IKv and IKir) in the left (LCSMCs), right (RCSMCs), and septal branches of coronary smooth muscle cells (SCSMCs) from control and monocrotaline (MCT)-induced PAH rats exhibiting RVH. In control rats, (1) IKv was larger in RCSMCs than that in SCSMCs and LCSMCs, (2) IKv inactivation occurred at more negative voltages in SCSMCs than those in RCSMCs and LCSMCs, (3) IKir was smaller in SCSMCs than that in RCSMCs and LCSMCs, and (4) IBKCa did not differ between branches. Moreover, in PAH rats, IKir and IKv decreased in SCSMCs, but not in RCSMCs or LCSMCs, and IBKCa did not change in any of the branches. These results demonstrated that SCSMC-specific decreases in IKv and IKir occur in an MCT-induced PAH model, thereby offering insights into the potential pathophysiological implications of coronary blood flow regulation in right heart disease. Furthermore, the relatively smaller IKir in SCSMCs suggested a less effective vasodilatory response in the septal region to the moderate increase in extracellular K+ concentration under increased activity of the myocardium.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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