Protein productivity by the cellulolytic fungi, Trichoderma viride(MTCC 800), Chaetomium globosum and Aspergillus terreus was compared in co-culture and mixed culture fermentations of cashewnut bran. Co-cultures were more effective in substrate saccharification, which ranged between $85{\sim}88%$ compared to the $62{\sim}67%$ saccharification shown by the monocultures. Maximum saccharification was induced by T. viride and C. globosum co-culture resulting in the highest 34% release of reducing sugars. The maximum 16.4% biomass protein and the highest protein productivity(0.58%) were shown by T. viride and A. terreus co-culture. A. terreus performed better in co-culture in the presence of T. viride rather than with C. globosum. Among the cellulolytic enzymes, FPase(Filter Paper Cellulase) activity was significantly higher in all the co-cultures and in the mixed culture than in their respective monocultures. Mixed culture fermentation involving all the three fungi was not effective in increasing the per cent saccharification or the biomass protein content over the co-cultures.
Proteome analysis was performed to identify proteins differentially expressed in an Arabidopsis mutant, ntm1-D. In this mutant the NAC transcription factor NTM1 is constitutively expressed and the resultant phenotypic changes include dwarfism, serrated leaves, and altered floral structures, probably due to reduced cell division. Marked elevation of proteins mediating environmental stress responses, including annexin, vegetative storage proteins, beta-glucosidase homolog 1, and glutathione transferases was observed. Overexpression of annexin was confirmed by RT-PCR and Western blotting. These observations suggest that the reduced growth observed in the ntm1-D mutant is caused by enhancement of its stress responses, possibly resulting in a cost in fitness.
Twenty-one strains isolated, cellulose decomposing fungi, were identified on the basis of morphological, physiological and biochemical properties as Acremonium sp., Aspergillus sp., Chaetomium sp., Chrysonilla sp., Doratomyces sp., Fusarium sp., Gliomastix sp., Penicillium sp., Trichoderma sp., Varicosporium sp. and Verticillium sp.. The optimum tempeture for growth was in the range of $20-30^{\circ}C$. Most of the isolated stains utilized all tested carbon sources, and scarcely utilized urea as a nitrogen source. Only the strain No.2 had high activity of cellulase.
Choi, Hak Joo;Kim, Eun A;Kim, Dong Hee;Shin, Kwang-Soo
Mycobiology
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v.42
no.3
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pp.256-261
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2014
A ${\beta}$-glucosidase producing yeast strain was isolated from Korean traditional rice wine. Based on the sequence of the YCL008c gene and analysis of the fatty acid composition, the isolate was identified as Saccharomyces cerevisiae strain HJ-014. S. cerevisiae HJ-014 produced ginsenoside Rd, $F_2$, and compound K from the ethanol extract of red ginseng. The production was increased by shaking culture, where the bioconversion efficiency was increased 2-fold compared to standing culture. The production of ginsenoside $F_2$ and compound K was time-dependent and thought to proceed by the transformation pathway of: red ginseng extract ${\rightarrow}Rd{\rightarrow}F_2{\rightarrow}$ compound K. The optimum incubation time and concentration of red ginseng extract for the production of compound K was 96 hr and 4.5% (w/v), respectively.
Immunocytochemistry utilizes the specificity of the antigen-antibody reaction to localize specific antigens in cells or cellular organelles. Here we report the use of monoclonal antibodies, in conjunction with gold-labeled second antibodies to study the ultrastructural localization and tissue distribution of the Mr 98, 000 anionic peroxidase and other wall antigens. The antibody specific for this wall peroxidase, mWP3, labeled mainly the cell wall area. At the tissue level, the Mr 98, 000 peroxidase is located predominantly in the leaf mesophyll, internal coleoptile and sieve elements, but not in the root, as assayed with these procedures. The coleoptile walls were less heavily stained than the walls of leaf mesophyll cells. At the subcellular level, it is localized mainly in intercellular regions of the cell walls. A similar staining pattern was revealed by mWP19, one of anti-$\beta$ glucosidase antibody, though it looked less heavily stained than one with mWP3. In order to serve as a control wall staining using IgM monoclonal antibodies, mWP18 was used. Most of the label is localized over wall regions of cells of the young leaf mesophyll and coleoptile.
HPLC analysis of three Prunus species, Armeniacae Semen. Persicae Semen, and Mume Semen, showed that 24. 06 mg/g, 5. 79 mg/g and 3/ 10 mg/g of amygdalin in the MeOH extract and 3. 59 mg/g, 5. 41 mg/g and 13. 48 mg/g of benzaldehyde in the MeOH extract hydrolyzed with ${\beta}-glucosidase$ were contained respectively. The MeOH extract of Mume Semen showed strong antibacterial activities against two species of bacteria (E. coli and B. subtilis) while that of Armeniacae Semen showed mild, and that of Persicae Semen showed no effect. Against A. niger, a strong antifungal activity was observed with Armeniacae Semen and only mild activities with Persicae Semen and Mume Semen. None oh the three inhibited the growth of S. cervisiae. The above results may possibly be suggestive of the correlationships between the contents of amygdalin and benzaldehyde in the test extracts with the antimicrobial potencies.
A bacterium, isolated from rabbit's waste and identified as Cellulomonas sp., had cellulase and thermostable $\alpha$-amylase activity when grown on wheat bran. Maximum activity of thermostable $\alpha$-amylase was obtained by adding $3\%$ soluble starch. However, soybean oil (1 ml $1^{-1}$) could increase the production of $\alpha$-amylase and cellulase in 'wheat bran. The $\alpha$-amylase was characterized by making a . demonstration of optimum activity at $90^{\circ}C$ and pH 6- 9, with soluble starch as a substrate. The effect of ions on the activity and the stability of this enzyme were investigated. This strain secreted carboxymethyl cellulase (CMCase), cellobiase ($\beta$glucosidase), and filter paperase (Fpase) during growth on wheat bran. Carboxymethy1cellulase, cellobiase, and Fpase activities had pH optima of 6, 5.5, and 6, respectively. CMCase and cellobiase activities both had an optimum temperature of $50^{\circ}C$, whereas Fpase had an optimum temperature of $45^{\circ}C$.
Since cellulose is the only organic material that is annually replenishable in very large quantities, we must explore ways to utilize it as a source of energy, food and chemicals. For the utilization of this resource, it is first enzymatic hydrolyzed to glucose, then the glucose can be used as a food, converted single cell protein by microorganism, fermented to clean burning fuel and other chemicals. Cellulolytic enzyme, cellulase, consists of two or three major components, $C_1-cellulase$, $C_x-cellulase$ and ${\beta}-glucosidase$. $C_x-cellulase$ are fairly common but $C_1-cellulase$ are quite rare. Trichoderma viride is the best source of active cellulose, especially $C_1-enzyme$. Saccharification rate of cellulose in greatly influenced by the degree of crystallinity and extent of lignification. But by the pretreatment the substrate with cellulose swelling agent, delignifying reagent and physical treatment, the degree of saccharification is enhanced. Thus, glucose syrups of 2 to 10% concentration are realized from milled newspaper. The enzymatic hydrolysis of such energy rich material, such as cellulose, to glucose is technically feasible and practically achievable on a very large scale.
In order to increase the productivity of cellulolytic enzymes, medium composition and culture conditions were studied. When cellulose powder (Avicel) supplemented with rice straw was used as carbon source, productivity of ${\beta}-glucosidase$ was increased by about 3 times compared with the runs with only cellulose powder as a carbon source. In this case no negative effects on the production of CMC enzyme activity and filter paper activity was found. For the production of celulolytic enzymes using T. reesei QM 9414, casitone was found to be a good nitrogen source compared with other sources studied, such as peptone, yeast extract, tryptone, and casein. The highest cellulase activity was attained when 0.3% glucose and 0.01% Tween 80 were supplemented to the standard medium of Rese. An adequate oxygen transfer rate was also found to be important to the cellulase fermentation and about 50 mmole of oxygen/liter/hour supported good cellulase biosynthesis during cellulase fermentation.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.19
no.5
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pp.395-402
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1990
The semicontinuous production of blue pigment from gardenia fruit by immobilized cells of Bacillus subtilis KS-380 which excreted $\beta$-glucosidase was investigated in comparison with free cells, . The blue pigment produced higher productivity under the conditions of aeration of 0.2m$\ell$/min and 2mm diameter of gel beads by using 3.5% sodium alginate. Semicontinuous production by immobilized cell showed the highest productivity with replacement of fresh production medium in every 24hr for fourth fermentation cycle following the conditions of blue pigment productivity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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