To analysis a promoter strength of Atographa californica nucler polyhedrosis virus (AcNPV) IE1 gene, an immediate viral gene, ${\beta}$-glactosidase gene as a reporter gene was introduced under the control of the IE1 promoter. The restriction fragment containing IE1 promoter and ${\beta}$-galctosidase gene from pAcIE1-gal were inserter into pBacPAK9 to yield transfer vector pAcNPV-IE1-gal. The pAcNPV-IE1-gal was cotransfected with AcNPV genomic DNA BacPAK6 into Sf9 cells to produce recombinant baculovirus AcNPV-IE1-gal. In addition, recombinant bacvulovirus AcNPV-gal, which express ${\beta}$-galac-tosidase under the control of the polyhedrin promoter, was constrer, was constructed to compared with AcNPV-IE1-gal. The recombinant viruses were respectively infected into Sf9 cells and characterized by the virus titer and expression of ${\beta}$-galactoxidase in Sf9 cells. The promoter strength of IE1 and polyhedrin promoters was determined by the amount of ${\beta}$-galactosidase secreted into medium by viral infection. The titer of AcNPV-IE1-Gal determined by plaque assays in Sf9 cells was similar to that of AcNPV-gal. However, expression level of ${\beta}$-galactosidase by AcNPV-IE1-gal was significantly lower than that by AcNPV-gal. In conclusion, promoter strength of IE1 was approximately 25-fold lower than that of polyhedrin.
The promoter region of pyrC (dihydroorotase) gene of Escherichia coli was shown to have Fur protein binding properties by gel retardation assay. In vivo regulation of the pyrC expression was studied by measuring dihydroorotase activity and ${\beta}$-galactosidase level in the $fur^+$ and $fur^-$ genetic background. The expression of chromosomal dihydroorotase activity and ${\beta}$-galactosidase activity of pyrC-lacZ fusion plasmid was repressed to about 30% and 17%, respectively in the $fur^+$ strain compared to those in the $fur^-$ strain. Divalent ions such as $Fe^{2+}$ and $Zn^{2+}$ were not required for the repression. PyrC expression was also reduced to one half by 1 mM uracil. The effect of uracil was independent on the fur gene.
The ars gene of the Neurospora crassa encodes arylsulfatase and is expressed under sulfur limitation. An ars-1 promoter(Pars) translationally-fused to a lacZ gene was transformed into the N. crassa RLM 35-35, a his-3 inl strain and integrated into the his-S locus by a single crossover homologous recombination. $\beta$-galactosidase specific activity was measured from mycelia grown in sulfur-limited Vogel's medium. Enzyme activity reached its maximum at 14 hour after the shift to derepressing condition. When activity from homokaryon generated by microconidiation was measured, it was 17% a higher than that from heterokaryon.
The effect of red ginseng saponins (total saponins, Rbl- and Rgl- fraction of saponins) on the induction of $\beta$-galactosidase in yeast, hccharomyces cereuisiae, was investigated to see that ginseng saponins would penetrate the cell membrane and have a function in a nucleus as steroid hormones do. To attain such a kind of purpose, a DNA fragment (685bp) containing GALI promoter was inserted into the sites of EcoRl and BamHl of polylinker region, upstream of lace gene of the plasmid YEp356 (7.966 Kb), and thus the resulting plasmid pGALl-lacZ is supposed to express $\beta$- galactosidase only in the presence of galactose. The plasmid pGALl -lacZ was introduced into yeast, Ky106 (a leu2 ura3 his3 trp 1 Iys2), and the growth of the transformed cells was much slower in the presence of galactose than glucose. The effects of saponins on the specific activity of P-galactosidase from transformed yeast cells were detected. No significant increase was observed in case of total saponins, but the Rbl- or Rgl- fraction of saponins gave much higher increase in the activity. Maximum increase was observed as 35% in 10-3% of Rbl and as 75% in 10-1% of Rgl. These data suggest that ginseng saponins might be able to enter the nucleus and stimulate transcription. However, further studies to find out the putative saponin receptor are needed to confirm this possibility. Key words : Red ginseng saponin, $\beta$-galactosidase induction, Saccharomyces cerevisiae.
To construct a highly sensitive detection system for endocrine disruptors (EDs), we have compared the activity of promoters with the n-alkane-inducible cytochrome P450 gene (ALK1), isocitrate lyase gene (ICL1), ribosomal protein S7 gene (RPS7), and the translation elongation factor-1${\alpha}$ gene (TEF1) for the heterologous gene in Yarrowia lipolytica. The promoters were introduced into the upstream of the lacZ or hERa reporter genes, respectively, and the activity was evaluated by ${\beta}$-galactosidase assay for lacZ and Western blot analysis for hER${\alpha}$. The expression analysis revealed that the ALK1 and ICL1 promoters were induced by n-decane and by EtOH, respectively. The constitutive promoter of RPS7 and TEF1 showed mostly a high level of expression in the presence of glucose and glycerol, respectively. In particular, the TEF1 promoter showed the highest ${\beta}$-galactosidase activity and a significant signal by Western blotting with the anti-estrogen receptor, compared with the other promoters. Moreover, the detection system was constructed with promoters linked to the upstream of the expression vector for the hER${\alpha}$ gene transformed into the Y. lipolytica with a chromosome-integrated lacZ reporter gene under the control of estrogen response elements (EREs). It was indicated that a combination of pTEF1p-hER${\alpha}$ and CXAU1-2XERE was the most effective system for the $E_2$-dependent induction of the ${\beta}$-galactosidase activity. This system showed the highest ${\beta}$-galactosidase activity at $10^{-6}\;M\;E_2$, and the activity could be detected at even the concentration of $10^{-10}\;M\;E_2$. As a result, we have constructed a strongly sensitive detection system with Y. lipolitica to evaluate recognized/suspected ED chemicals, such as natural/synthetic hormones, pesticides, and commercial chemicals. The results demonstrate the utility, sensitivity, and reproducibility of the system for identifying and characterizing environmental estrogens.
To compare the p10 promoter activity of Bombyx mori nucleopolyhedrovirus (BmNPV)K1 and K4, recombinant viruses Bm101-LacZ and Bm104-LacZ with a lacZ gene under the control of each p10 promoter were constructed. The $\beta$-galactosidase activity due to Bm101-LacZ was about 5.5- and 1.1-fold higher than that due to Bm104-LacZ and BmK1-LacZ, respectively. expressing ${\beta}$-galactosidase under the control of a polyhedrin promoter. The recombinant virus BmK1-104LacZ with the same genome structure as Bm101-LacZ, except for a p10 promoter region, produced a similar ${\beta}$-galactosidase activity to that due to Bm104-LacZ and 5.5-fold lower than that due to Bm101-LacZ. The virus yield, expression level of polyhedrin, and polyhedra productivity for each recombinant virus was almost similar. These results suggested that the difference in the expression level of ${\beta}$-galactosidase resulted from a difference in the p10 promoter regions, and that an expression vector using the p10 promoter of BmNPV-K1 could be usefully exploited in the mass production of foreign proteins with silkworm larvae by means of oral ingestion.
Ha, Hye-Yeong;Lee, Heui-Jung;Park, Soon-Hee;Yoo, Mi-Ae;Lee, Won-Ho
Journal of Life Science
/
v.7
no.1
/
pp.49-58
/
1997
Single P[en-lacZ] element including 5.7 kb of engrailed upstream sequences and the E. coli lacZ fusion gene, localized on 48A in rxyho25 strain was transposed to different sites in the Drosophila genome by the jumpstart technique. From 3315 individual genetic crosses, 113 new insertion lines carrying P[en-lacZ] inserted at different sites were obtained. $\beta$-Galactosidase expression in larval tissues of 113 insertion lines were detected by X-gal staining. & among 113 lines have been indentified to be for recessive lethal mutations. Among 7 lines, the #1119 line being lethal during embryogenesis was examined about the ${\beta}$$-Galactosidase expression, nuclear behavior and cellularization pattern during embryogenesis. The P[en-lacZ] insertion lines obtained in this study could be utilized for studying structure and function of the Drosophila development-related genes.
The gene encoding β-galactosidase was cloned from Bifidobacterium longum RD47 with combinations of several bifidobacterial promoters, and expressed in B. bifidum BGN4. Among the recombinant bifidobacteria, BGN4+G1 showed the highest β-galactosidase level, for which the hydrolytic activity was continuously 2.5 to 4.2 times higher than that of BGN4 and 4.3 to 9.6 times higher than that of RD47. The β-galactosidase activity of BGN4+G1 was exceedingly superior to that of any of the other 35 lactic acid bacteria. When commercial whole milk and BGN4+G1 were reacted, BGN4+G1 removed nearly 50% of the lactose in the milk by the 63-h time point, and a final 61% at 93 h. These figures are about twice the lactose removal rate of conventional fermented milk. As for the reaction of commercial whole milk and crude enzyme extract from BGN4+G1, the β-galactosidase of BGN4+G1 eliminated 51% of the lactose in milk in 2 h. As shown below, we also compared the strengths and characteristics of the strong bifidobacterial promoters reported by previous studies.
A new constitutive episomal expression vector, pGAPZ-E, was constructed and used for initial screening of eukaryotic target gene expression in Pichia pastoris. Two reporter genes such as beta-galactosidase gene and GFPuv gene were overexpressed in P. pastoris. The expression level of the episomal pGAPZ-E strain was higher than that of the integrated form when the beta-galactosidase gene was used as the reporter gene in P. pastoris X33. The avoiding of both the integration procedure and an induction step simplified the overall screening process for eukaryotic target gene expression in P. pastoris. Nine human protein targets from the Core 50, family of Northeast Structural Genomics Consortium (http://www.nesg.org), which were intractable when expressed in E. coli, were subjected to rapid screening for soluble expression in P. pastoris. HR547, HR919, and HR1697 human proteins, which had previously been found to express poorly or to be insoluble in E. coli, expressed in soluble form in P. pastoris. Therefore, the new episomal GAP promoter vector provides a convenient and alternative system for high-throughput screening of eukaryotic protein expression in P. pastoris.
The CMV promoter driven lacZ reporter gene (pcDNA-lacZ) was constructed and used for DNA immunization study. The expression of the lacZ gene was confirmed in vitro using RTG-2 cell line before using for in vivo study in olive flounder (Paralichthys olivaceus). In the dose response study, the maximum expression of the lacZ gene was found in the group injected with 5 ${\mu} g$ of the plasmid DNA. Kinetic study showed a significantly increased expression of $\beta-galactosidase$ gene at 7 days after injection. Effects of DNA vaccine on specific and nonspecific immune responses such as antibody and NO production were studied and the significant effect was found in olive flounder injected with 10 and 15 ${\mu} g$ DNA (sub optimal dose for lacZ gene expression). Two pro inflammatory cytokine genes, $IL-l\beta$ and $TNF-\alpha$, were also found to be up regulated in the muscle injected with the plasmid, suggesting an induction of local inflammatory response.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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