저농도 영양염류를 농축하는 여재에서 총인과 부착세균의 변화

Dynamics of Total Phosphorus and Attached Bacteria in a Porous Medium Concentrating Nutrients from Low-Nutrient Water

  • Kim, Ju-Young (Department of Environmental Science, Kangwon National University) ;
  • Nam, Jong-Hyun (Department of Environmental Science, Kangwon National University) ;
  • Jung, Da-Woon (Department of Environmental Science, Kangwon National University) ;
  • Cho, Ahn-Na (Department of Environmental Science, Kangwon National University) ;
  • Choi, Seung-Ik (Institute of Environmental Research, Kangwon National University) ;
  • Ahn, Tae-Seok (Department of Environmental Science, Kangwon National University)
  • 투고 : 2009.02.27
  • 심사 : 2009.05.12
  • 발행 : 2009.06.30

초록

비점오염원 관리를 위하여 영양염류 농축장치를 개발하였다. 이 장치는 저농도 상태인 영양염류를 고농도로 전환시키며, 이 과정에서 세균이 중요한 역할을 하고 있다. 세균은 장치 내 여재에 생물막을 형성하면서 영양염류를 농축하였다. 총인의 농축효율을 확인하기 위해 장치로 유입되는 하천수와, 유출되는 공극수, 여재에서 총인과 용존무기인, 총세균수를 측정하였고 농축과정에서 미생물 군집이 어떻게 달라지는가를 파악하기 위해 DGGE를 수행한 후 염기서열을 분석하였다. 총인의 경우 하천수에서는 0.12~0.35 mg/L로 농도가 낮았지만 농축 후 유출수에서는 0.45~0.86 mg/L, 여재에서는 40.91~242.71 mg/kg로 매우 높았다. 그러나 용존무기인은 농축이 일어나지 않았다. 총세균수 역시 하천수에서는 $0.3\sim2.3\times10^6$ cells/ml이었으나 농축 후 유출수와 여재에서 각각 $0.4\sim4.4\times10^6$ cells/ml, $0.8\sim1.9\times10^9$ cells/g로 높게 나타났으며, 총인의 농도 변화와 비슷한 패턴을 보여 총인의 농도와 세균수 간에 밀접한 관계가 있음을 확인하였다. 또한 세균의 군집은 하천수에서는 Clostridium 속이 주로 나타났으나 여재에서는 Aquabacterium 속이 우점하다가 천이가 일어나서 Clostridium 속과 Enterococcus 속이 출현하였다. 결론적으로, 영양염류 농축장치의 여재에서 부착세균의 생장으로 인하여 총인의 농축이 일어났음을 확인하였다. 따라서 이 농축장치는 총인을 고농도로 회수함으로써, 저농도로 다량 유입되는 비점오염원의 관리를 용이하게 할 수 있으며, 회수된 농축수는 수계에 추가적인 부하로 작용하지 않는 자연비료로서 활용할 수 있다.

A nutrient-concentrating system was operated to retrieve total phosphorus efficiently from a non-point pollution source. Attached bacteria were expected to play an important role in the system. Phosphorous was concentrated by formation of bacterial biofilms on rubberized coconut fiber media of the system. While concentration of total phosphorus (TP) ranged merely 0.12~0.35 mg/L in the stream water, TP levels in pore water and the media were 0.45~0.86 mg/L and 40.91~242.71 mg/kg, respectively. Total bacterial number (TBN) ranged $0.3\sim2.3\times10^6$ cells/ml in stream water, $0.4\sim4.4\times10^6$ cells/ml in pore water and $0.8\sim1.9\times10^9$ cells/g in media. There was a close correlation between TP and TBN. Based on band profiles in DGGE analyses, bacterial communities in the media were different from that in the stream water. Clostridium spp. were abundant in the stream water while Aquabacterium spp. were dominant species in early stages of biofilm formation in the media. The genera predominant in matured biofilms of the media were Clostridium and Enterococcus.

키워드

참고문헌

  1. 김용전, 허재규, 남종현, 김인선, 최경숙, 최승익, 안태석. 2007. 파로호에 설치된 인공식물섬 식생기반재의 공극수에서 세균 분포와 체외효소활성도. 한국미생물학회지 43, 40-46
  2. 남귀숙, 손형식, 차미선, 조순자, 이광식, 이상준. 2003. 이화학적 수질인자가 부영양화된 마산저수지의 세균분포에 미치는 영향. 한국미생물학회지 39, 95-101
  3. 노상덕, 김장현, 이대근, 김선주, 손병용, 전야근. 2006. 횡성호 유역의 비강우시 및 강우시 오염물질 유출특성. 한국물환경학회지 22, 695-705
  4. 안태석. 2004. 여재를 이용한 자연순환방식의 수질정화 시스템 개발. 강원지역환경기술개발센터
  5. 안태석. 2005. 한강수계 생태계 복원방법 및 기술표준화 연구. 한강수계관리위원회
  6. 안태석. 2008. 탕정단지 폐수방류수를 이용한 생태공간 조성에 대한 컨설팅 용역 보고서. 삼성전자주식회사
  7. 안태석, 최승익, 남종현. 2009. 영양염 농축 및 농축수 회수 장치. 특허등록 10-0878368
  8. 이현동, 안재환, 배철호, 김운지. 20001. 강우시 유출부하량을 이용한 팔당상수원 유역의 비점오염원 원단위와 발생량 추정. 한국물환경학회지 17, 313-326
  9. 정부합동. 2000. '98.'00 4대 강 수계 물관리 종합대책
  10. 홍선희, 김옥선, 전선옥, 유재준, 안태석. 2002. 해빙기 바이칼호에서 부유세균과 aggregates에 부착한 세균의 군집구조. 한국미생물학회지 38, 192-197
  11. 환경부. 2008. 생태공학적 방법을 이용한 수역의 부영양화 방지기술 보고서
  12. Acinas, S.G., J. Anton, and F. Rodriguez-Valera. 1999. Diversity of free-living and attached bacteria in offshore Western Mediterranean waters as depicted by analysis of genes encoding 16S rRNA. Appl. Environ. Microbiol. 65, 514-522
  13. APHA. American Public Health Association. 2001. Standard method for the examination of water and wastewater
  14. Beverideg, T.J., S.A. Makin, J.L. Kadurugamuwa, and Z. Li. 1997. Interactions between biofilms and the environment. FEMS Microbiol. Rev. 20, 291-303 https://doi.org/10.1111/j.1574-6976.1997.tb00315.x
  15. Bitton, G. 2002. Encyclopedia of environmental microbiology, pp. 861-871. Wiley. New York, USA
  16. Davies, D.G. and A. McFeters. 1988. Growth and comparative physiology of Klebsiella oxytoca attached to granular carbon particles and in liquid media. Microb. Ecol. 15, 165-175 https://doi.org/10.1007/BF02011710
  17. Delong, E.F., D.G. Franks, and A.L. Alldredge. 1993. Phylogenetic diversity of aggregate-attached vs. free-living marine bacterial assemblages. Limnol. Oceanogr. 38, 924-934 https://doi.org/10.4319/lo.1993.38.5.0924
  18. Donlan, R.M. and J.W. Costerton. 2002. Biofilms: Survival mechanisms of clinically relevant microorganisms. Clin. Microbiol. Rev. 15, 167-193 https://doi.org/10.1128/CMR.15.2.167-193.2002
  19. Hobbie, J.E., R.J. Daley, and S. Japer. 1977. Use of nucleopore filters for counting bacter by flourescence microscopy. Appl. Environ. Microbiol. 33, 1225-1228
  20. Kalmbach, S., W. Manz, J. Weche, and U. Szewzyk. 1999. Aquabacterium gen. nov., with description of Aquabacterium citratiphilum sp. nov., Aquabacterium parvum sp. nov. and Aquabacterium commune sp. nov., three in situ dominant bacterial species from the Berlin drinking water system. Int. J. Syst. Bacteriol. 49, 769-777 https://doi.org/10.1099/00207713-49-2-769
  21. Karny, G., H. Horn, and T.R. Neu. 2008. Interaction between biofilm development, structure and detachment in rotating annular reactors. Bioprocess Biosyst. Eng. 31, 619-629 https://doi.org/10.1007/s00449-008-0212-x
  22. Kjelleberg, S. and M. Hermansson. 1984. Starvation induced effects on bacteria surface characteristics. Appl. Environ. Microbiol. 48, 497-503
  23. Lehman, R.M. and S.P. O'Connell. 2002. Comparison of extracellular enzyme activities and community composition of attached and free-living bacteria in porous medium columns. Appl. Environ. Microbiol. 68, 1569-1575 https://doi.org/10.1128/AEM.68.4.1569-1575.2002
  24. Liesack, W., H. Weyland, and E. Stackebrandt. 1991. Potential risks of gene amplification by PCR as determined by 16S rDNA analysis of a mixed-culture of strict barophilic bacteria. Microb. Ecol. 21, 191-198 https://doi.org/10.1007/BF02539153
  25. Mueller, R.F. 1996. Bacterial transport and colonization in low nutrient environments. Water Res. 30, 2681-2690 https://doi.org/10.1016/S0043-1354(96)00181-9
  26. Muyzer, G., E.C. de Waal, and A.G. Uitterlinden. 1993. Profiling of complex microbial populations by denaturing gradient gel electrophoresis analysis of polymerase chain reaction-amplified genes coding for 16S rRNA. Appl. Environ. Microbiol. 59, 695-700
  27. Schweitzer, B., I. Huber, R. Amann, and W. Ludwig. 2001. $\alpha$-and $\beta$-Proteobacteria control the consumption and release of amino acids on lake snow aggregate. Appl. Environ. Microbiol. 67, 632-645 https://doi.org/10.1128/AEM.67.2.632-645.2001
  28. Thormann, K.M., R.M. Saville, S. Shukla, and A.M. Spormann. 2005. Induction of rapid detachment in Shewanella oneidensis MR-1 biofilms. J. Bacteriol. 187, 1014-1021 https://doi.org/10.1128/JB.187.3.1014-1021.2005
  29. Wang, L., J. Lyons, P. Kanehl, R. Bannerman, and E. Emmons. 2000. Watershed urbanization and changes in fish communities in southeastern Wisconsin streams. J. Am. Water Res. 36, 1173-1175 https://doi.org/10.1111/j.1752-1688.2000.tb05719.x