Human ferritin H- and L-chain genes(hfH and hfL) were cloned into the yeast shuttle vector YEp352 with various promoters, and the vectors constructed were used to transform Saccharomyces cerevisiae 2805. Three different promoters fused to hfH and hfL were used: galactokinase 1 (GAL1) promoter, glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase(GPD) promoter and alcohol dehydrogenase 1(ADH1 ) promoter. SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and Western blotting analyses displayed expression of the introduced hfH and hfL. In the production of both ferritin H and L subunits GAL1 promoter was more effective than GPD promoter or ADH1 promoter. Ferritin H and L subunits produced in S. cerevisiae were spontaneously assembled into its holoproteins as proven on native polyacrylamide gels. Both recombinant H and L-chain ferritins were catalytically active in forming iron core. When the cells were cultured in the medium containing 10 mM ferric citrate, the cell-associated concentration of iron was 174.9 $\mu\textrm{g}$ Per gram(dry cell weight) for the recombinant yeast YG-L and 148.8 $\mu\textrm{g}$ Per gram(dry cell weight) for the recombinant yeast YG-L but was 49.4 $\mu\textrm{g}$ Per gram(dry cell weight) in the wild type, indicating that the iron contents of yeast is improved by heterologous expression of human ferritin H-chain or L-chain genes.
Kim, Il-Sup;Shin, Sun-Young;Kim, Young-Saeng;Kim, Hyun-Young;Lee, Dong-Hee;Park, Kyung-Moc;Jin, Ingn-Yol;Yoon, Ho-Sung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.20
no.6
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pp.974-977
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2010
Cyclophilins contain the conserved activity of cis-trans peptidyl-prolyl isomerase, which is implicated in protein folding, and function as molecular chaperones. When the yeast cyclophilin A gene (cpr1) was subcloned into the prokaryotic expression vector pKM260, it was found that the expression of Cpr1 drastically increased the cell viability of E. coli BL21 when under abiotic stress conditions, as in the presence of cadmium, copper, hydrogen peroxide, heat, and SDS. Therefore, this study illustrates the importance of Cpr1 as a molecular chaperone that can improve the cellular stress responses when E. coli cells are exposed to adverse conditions, while also demonstrating its potential to increase the stability of E. coli strains utilized for the production of recombinant proteins.
Kim, Ki Hyun;Lee, Jung-Hyeong;Kwon, Gi-Seok;Seo, Eul Won;Lee, Jung-Bok
Journal of Life Science
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v.30
no.4
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pp.352-358
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2020
Red yeast rice has been extensively used as a food and traditional medicine for thousands of years in Korea. Monascus produces many secondary metabolites during its growth, including pigments, monacolins, and γ-aminobutyric acid. Some metabolites, specifically monacolin K, γ-aminobutyric acid, and dimerumic acid, have been reported to lower cholesterol and blood pressure because of certain antioxidant effects. This study investigated the total phenolic content of ethanol extract from red yeast rice fermented with Monascus sp. BHN-MK and its anti-inflammatory effect on LPS-stimulated RAW 264.7 macrophage cells. To assess its anti-inflammatory effect, the inhibitory activity of the ethanol extract on LPS-induced NO production and expression levels of iNOS and COX-2 proteins in macrophage cells were measured. Its total polyphenol content was higher than that of ordinary non-fermented rice. Its NO production inhibition activity was comparable to that of the negative control group treated with LPS at a concentration of 400 ㎍/ml. Western blot revealed a significant decrease in the inhibition of iNOS and COX-2 protein expression at concentrations of 400 and 800 ㎍/ml, respectively. Red yeast rice ethanol extracts exerted the strongest anti-inflammatory effects. The results indicate that red yeast rice could be used as a functional cosmetic and anti-inflammatory material.
K. C. Hwang;D. W. Ok;D. N. Kwon;H. K. Shin;Kim, J. H.
Proceedings of the KSAR Conference
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2001.03a
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pp.52-52
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2001
Many nucleoside diphosphate (NDP) kinases are ubiquitous enzymes responsible for the exchange of ${\gamma}$-phosphates between tri- and diphosphonucleosides. The catalytic Many nucleoside diphosphate (NDP) kinases are ubiquitous enzymes responsible for the exchange of ${\gamma}$-phosphates between tri- and diphosphonucleosides. The catalytic reaction follows a ping-pong mechanism in which the enzyme is transiently phosphorylated on a histidine residue conserved in all nucleoside diphosphate kinases. Beside their role in nucleotide synthesis, these enzymes present additional functions, possibly independent of catalysis, in processes such as differentiation, cell growth, tumor progression, metastasis and development. To clone murine nm23-M5, several expressed sequence tags (ESTs) of the GenBank data base, selected according to their homology to nm23-H5 cDNA, reconstituted a complete open reading frame (GenBank AF222750). To test whether murine NDPKs (1, 2, 3, 4, 5, and 6) can inhibit Bax-mediated toxicity in yeast, co-transformation was performed respectively. The yeast S.cerevisiae was transformed with a copy expression plasmid containing the histidine selection marker and expressing murine Bax under the control of a galactose-inducible promoter. Several clones were selected and found to be growth inhibited when Bax expression was induced with galactose. A representative clone was transformed again with a copy expression plasmid containing the tryptophane selection marker and expressing either murine Bcl-xL or NDPK under the control of a galactose-inducible promoter. Several subclones of the double-transformants were selected and characterized. The ability of Bcl-xL and NDPKs to suppress Bax-mediated toxicity was determined by growing yeast cells overnight in galactose media and spot-testing on galactose plates starting with an equal number of yeast cells as determined by taking the OD$_{600}$. Ten-fold serial dilutions were used in the spot-test. Plates were grown at 3$0^{\circ}C$ for 2-3 days. All murine NDPKs suppressed Bax dependent apoptosis. Futher study will be peformed whether Bax-toxicity inhibition was caused by NDP kinase activity or additional function.n.
Phytochelatins (PCs) are small-sized peptides synthesized by PC synthase (PCS) using glutathione (GSH) as a substrate, and they play an important role in the detoxification of toxic heavy metals in plants, fission yeast, and other living organisms. Recently, it has been suggested that PCS is also involved in degradation of some xenobiotics including monobromobimane. PCS cleaves the Gly residue from GSH-xenobiotics conjugates resulting in ${\gamma}$-Glu-Cys-xenobiotics, and this is to degraded further. Therefore, our research is focus on whether PCS is also involved in degradation of tolclofos-methyl, an important pesticide which has been used in ginseng cultivated areas. Heterologous expression of Arabidopsis PCS confers tolerance to tolclofos-methyl in yeast. Furthermore, PCS-deficient Cad1-3 Arabidopsis mutant showed high sensitivity to tolclofos-methyl compared with wild-type plants. These results imply that PCS is involved in degradation of tolclofos-methyl as other xenobiotics.
The present study was performed to analyze the molecular mechanism which dictates the transcription regulation of the $O^6$-methylguanine-DNA methyltransferase (MGMT) gene in Saccharomyces cerevisiae. Previously we identified one possible upstream repressing sequence (URS) in MGMT promoter by promoter deletion and competition analysis. In this paper we report another regulatory element (UAS: upstream activating sequence. -213 to -136) which affects the transcription activity of MGMT promoter. Gel mobility shift assay and Southwestern blot analysis using UAS probe showed several specific proteins which were able to bind to this sequence.
Phytochelatins (PCs) are small polypeptides synthesized by PC synthase (PCS). They are present in various living organisms including plants, fission yeast, and some animals. The presumed function of PCs is the sequestration of cytosolic toxic heavy metals like cadmium (Cd) into the vacuoles via vacuolar membrane localized heavy metal tolerance factor 1 (HMT-1). HMT-1 was first identified in fission yeast (SpHMT-1), and later in Caenorhabdtis (CeHMT-1). Recently, its homolog has also been found in PC-deficient Drosophila (DmHMT-1), and this homolog has been shown to be involved in Cd detoxification, as confirmed by the heterologous expression of DmHMT-1 in fission yeast. Therefore, the dependence of HMT-1 on PC in Cd detoxification should be re-evaluated. I heterologously expressed SpHMT-1 in cytosolic PC-deficient yeast, Saccharomycea cerevisiae, to understand the dependence of HMT-1 on PC. Yeast cells expressing SpHMT-1 showed increased tolerance to Cd compared with control cells. This result indicates that SpHMT-1 is not strictly correlated with PC production on its function. Moreover, yeast cells expressing SpHMT-1 showed increased tolerance to exogenously applied glutathione (GSH) compared with control cells, and the tolerance to Cd was further increased by exogenously applied GSH, while tolerance in control cells was not. These results indicate that the function of SpHMT-1 in Cd detoxification does not depend on PCs only, and suggest that SpHMT-1 may sequester cytosolic GSH-Cd complexes into the vacuole.
In order to study the secretion of the human urokinase-type plasminogen activator, u-PA, from the yeast yarrowia lipolytica, three kinds of integrative expression vector were constructed. These vectors differed only in their secretion control legions, pre-, pre-dip-(dipeptide Stretch) or pre-dip-pro sequences of the alkaline extracellular protease, which were joined inflame to the human u-PA cDNA. The recombinant Y. lipolytica Strains, transformed with the expression vectors, secreted the hyperglycosylated u-PA. A fibrin plate assay of the culture supernatants showed that the hyperglycosylated u-PA proteins could catalyze fibrinolysis, and that the pre-dip sequence was the most efficient secretory signal for the secretion of the u-PA from Y. lipolyica. This result suggests that Y. lipolytica can be developed as a potential host for the production of recombinant human u-PA.
We improved on a unified saccharification and fermentation (USF) system for the direct production of ethanol from agarose by increasing total agarase activity. The pGMFα-NGH plasmid harboring the NABH558 gene encoding neoagarobiose hydrolase and the AGAG1 and AGAH71 genes encoding β-agarase was constructed and used to transform Saccharomyces cerevisiae 2805. NABH558 gene transcription level was increased and total agarase activity was increased by 25 to 40% by placing the NABH558 gene expression cassette upstream of the other gene expression cassettes. In the 2805/pGMFα-NGH transformant, three secretory agarases were produced that efficiently degraded agarose to galactose, 3,6-anhydro-L-galactose (AHG), neoagarobiose, and neoagarohexaose. During the united cultivation process, a maximum of 2.36 g/l ethanol from 10 g/l agarose was produced over 120 h.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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