Paenibacillus woosongensis의 유전체 부분 염기서열로부터 유추된 xylanase 유전자를 PCR 증폭하여 클로닝하고 염기서열을 결정하였다. 클로닝된 xylanase 유전자는 xyn11B로 명명되었으며, 356 아미노산으로 구성된 단백질을 코드하는 1,071 뉴클레오티드로 이루어졌다. Xyn11B의 아미노산 배열을 분석한 결과 glycosyl hydrolase family 11에 속하는 xylanase와 상동성이 높은 활성영역과 탄수화물 결합영역을 포함하고 있는 다영역 효소로 확인되었다. SignalP4.1 server로부터 아미노 말단의 26개 잔기가 signal peptide로 예측되었다. DEAE-Sepharose와 Phenyl-Separose 컬럼 크로마토그래피 과정을 통해 xyn11B 유전자를 함유한 재조합 대장균의 균체 파쇄상등액으로부터 Xyn11B를 부분 정제하였다. 부분 정제된 Xyn11B의 반응특성을 조사한 결과 pH 6.5와 $50^{\circ}C$에서 최대 반응활성을 보였고 birchwood xylan이나 oat spelt xylan보다 arabinoxylan에 대한 활성이 높았으며 셀룰로스, 만난과 para-nitrophenyl-${\beta}$-xylopyranoside에 대해서는 분해활성이 없었다. Xyn11B의 활성은 $Ca^{2+}$과 $Mg^{2+}$에 의해서는 약간 증가한 반면에 $Cu^{2+}$, $Ni^{2+}$, $Fe^{3+}$, $Mn^{2+}$에 의해서는 크게 저해되었고 SDS에 의해서 완전히 저해되었다.
Lakshmi, G. Suvarna;Rajeswari, B. Uma;Prakasham, R.S.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제22권8호
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pp.1084-1091
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2012
Xylooligosaccharides are functional foods mainly produced during the hydrolysis of xylan by physical, chemical, or enzymatic methods. In this study, production of xylobiose was investigated using oil palm empty fruit bunch fiber (OPEFB) as a source material, by chemical and enzymatic methods. Xylanase-specific xylan hydrolysis followed by xylobiose production was observed. Among different xylanases, xylanase from FXY-1 released maximum xylobiose from pretreated OPEFB fiber, and this fungal strain was identified as Aspergillus terreus and subsequently deposited under the accession Number MTCC- 8661. The imperative role of lignin on xylooligosaccharides enzymatic synthesis was exemplified with the notice of xylobiose production only with delignified material. A maximum 262 mg of xylobiose was produced from 1.0 g of pretreated OPEFB fiber using FXY-1 xylanase (6,200 U/ml) at pH 6.0 and $45^{\circ}C$. At optimized environment, the yield of xylobiose was improved to 78.67 g/100 g (based on xylan in the pretreated OPEFB fiber).
Park, Young-Seo;Yum, Do-Young;Kim, Jin-Man;Bai, Dong-Hoon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제3권4호
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pp.224-231
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1993
The nucleotide sequence of the xylanase gene (xynY) from alkalophilic Bacillus sp. YC-335 was determined and analyzed. An open reading frame of 1, 062 base pairs for xynY gene was observed and encoded for a protein of 354 amino acids with a molecular weight of 38, 915. S1 nuclease mapping showed that the transcription initiation sites of the xynY gene were different in Bacillus sp. YC-335 and Escherichia coli HB101 (pYS55). S1 mapping also showed that -10 region of the xynY gene recognized by RNA polymerases of E. coli and Bacillus sp. YC-335 were TACAGT and TATGAT , respectively. A ribosome binding site sequence with the free energy of -17.0 Kcal/mol was observed 9 base pairs upstream from the unusual initiation codon, TTG. The proposed signal sequence consisted of 27 amino acids, 2 of which were basic amino acid residues and 21 were hydrophobic amino acid residues. When the amino acid sequences of xylanases were compared, Bacillus sp. YC-335 xylanase showed more than 50% homology with xylanases from B. pumilus, B. subtilis, and B. circulans.
The saccharification of cellulose and hemicellulose is essential for utilizing lignocellulosic biomass as a biofuel. While cellulose is composed of glucose only, hemicelluloses are composed of diverse sugars such as xylose, arabinose, glucose, and galactose. Sulfolobus acidocaldarius is a good potential candidate for biofuel production using hemicellulose as this archaeon simultaneously utilizes various sugars. However, S. acidocaldarius has to be manipulated because the enzyme that breaks down hemicellulose is not present in this species. Here, we engineered S. acidocaldarius to utilize xylan as a carbon source by introducing xylanase and β-xylosidase. Heterologous expression of β-xylosidase enhanced the organism's degradability and utilization of xylooligosaccharides (XOS), but the mutant still failed to grow when xylan was provided as a carbon source. S. acidocaldarius exhibited the ability to degrade xylan into XOS when xylanase was introduced, but no further degradation proceeded after this sole reaction. Following cell growth and enzyme reaction, S. acidocaldarius successfully utilized xylan in the synergy between xylanase and β-xylosidase.
The secretory efficiency of recombinant xylanase xynB from yeast Pichia pastoris between the ${\alpha}$-factor preprosequence and a classical mammalian signal peptide derived from bovine ${\beta}$-casein was compared. The results showed that although the bovine ${\beta}$-casein signal peptide could direct high-level secretion of recombinant xylanase, it was relatively less efficient than the ${\alpha}$-factor preprosequence. In contrast, the bovine ${\beta}$-casein signal peptide caused remarkably more recombinant xylanase trapped intracellularly. Real-time RT-PCR analysis indicated that the difference in the secretory level between the two signal sequences was not due to the difference in the transcriptional efficiency.
토양 내에 존재하는 미생물은 다양한 종류의 다당류 분해 효소들을 생산함으로써 토양의 비옥도 증진뿐만 아니라 토양내의 생태계를 건전하게 유지하게 위해 중요한 역할을 한다. 본 연구는 경남과학기술대학교에 위치한 쥬라기숲에서 0.4 % carboxymethyl cellulose와 0.01 % trypan blue가 첨가된 LB agar plate를 이용하여 CMCase와 xylanase를 생산하는 박테리아를 분리하였다. 16S rRNA 유전자 염기서열 분석과 API kit 분석을 바탕으로 분리된 박테리아는 Bacillus 종에 속하는 것으로 동정되었으며, Bacillus sp. GJY으로 명명하였다. Bacillus sp. GJY에서 CMCase와 xylanase의 활성을 책임지고 있는 단백질을 알아보기 위하여 Zymogram 분석을 실시하였다. 그 결과 CMCase의 경우 약 28 kDa 크기에 xylanase의 경우 약 25 kDa 크기에 활성밴드가 하나씩 존재하였다. Bacillus sp. GJY의 최적 생장온도는 $37^{\circ}C$이었으며, CMCase와 xylanase의 활성은 배양 후 12시간에 최고에 달하였다. CMCase의 경우 pH 5.0, 온도 $40^{\circ}C$에서 최적의 활성을 보인 반면, xylanase는 pH 4.0, $40^{\circ}C$에서 최적의 활성을 보였다. CMCase와 xylanase 모두 40, $50^{\circ}C$에서는 열 안정성을 보였지만, $60^{\circ}C$ 이상에서는 두 효소의 열 안정성이 급격하게 감소하는 경향을 보였다.
A neutral xylanase (CcXyn) was identified from Coprinus cinereus. It has a single GH10 catalytic domain with a basic amino acid-rich extension (PVRRK) at the C-terminus. In this study, the wild-type (CcXyn) and C-terminus-truncated xylanase ($CcXyn-{\Delta}5C$) were heterologously expressed in Pichia pastoris and their characteristics were comparatively analyzed with aims to examine the effect of this extension on the enzyme function. The circular dichorism analysis indicated that both enzymes in general had a similar structure, but $CcXyn-{\Delta}5C$ contained less ${\alpha}-helices$ (42.9%) and more random coil contents (35.5%) than CcXyn (47.0% and 32.8%, respectively). Both enzymes had the same pH (7.0) and temperature ($45^{\circ}C$) optima, and similar substrate specificity on different xylans. They all hydrolyzed beechwood xylan primarily to xylobiose and xylotriose. The amounts of xylobiose and xylotriose accounted for 91.5% and 92.2% (w/w) of total xylooligosaccharides (XOS) generated from beechwood by CcXyn and $CcXyn-{\Delta}5C$, respectively. However, truncation of the C-terminal 5-amino-acids extension significantly improved the thermostability, SDS resistance, and pH stability at pH 6.0-9.0. Furthermore, $CcXyn-{\Delta}5C$ exhibited a much lower $K_m$ value than CcXyn (0.27 mg/ml vs 0.83 mg/ml), and therefore, the catalytic efficiency of $CcXyn-{\Delta}5C$ was 2.4-times higher than that of CcXyn. These properties make $CcXyn-{\Delta}5C$ a good model for the structure-function study of $({\alpha}/{\beta})_8$-barrel-folded enzymes and a promising candidate for various applications, especially in the detergent industry and XOS production.
Cladosporium cladosporioides H1 was found to be the most abundant microbe in Janggyeong Panjeon. C. cladosporioides H1 produced a 20 kDa xylanase, which was generally stable below $60^{\circ}C$ and had specialized activity in an acidic condition. Our results may lead to the development of a strategy for preservation of organic cultural heritage environments.
O'Neill, H.V. Masey;Liu, N.;Wang, J.P.;Diallo, A.;Hill, S.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제25권4호
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pp.515-523
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2012
The objective of this study was to investigate the variability in broiler performance, apparent metabolisable energy (AME) and ileal digestible energy (IDE) between five different maize samples fed with and without xylanase at 16,000 U/kg. Various in vitro characterisations were conducted to determine if any could predict performance or AME. Samples of the maize were harvested in five diverse regions and fed individually in a mash diet as follows (g/kg): test maize 608.3; soya bean meal (SBM) 324.1; poultry fat 25.2; salt 4.6; met 2.6; lys 1.6; thr 0.5; limestone 9.7, dical 18.4; vit/min 5.0; CP 210 and ME (kcal/kg) 3,085. The diets were fed to 720 broilers with 6 replicates, each containing 12 birds per treatment, from 0 to 18 d of age. Maize samples were analysed for starch, protein, crude fibre, fat, protein solubility index (PSI) and vitreousness using near infra red reflectance spectroscopy (NIR). They were also assayed using an in vitro starch digestibility method. The results showed that there was no effect of harvest region on the feed intake (FI), body weight gain (BWG) or feed conversion ratio (FCR) of the broilers over the 18 d period (p = 0.959, 0.926, 0.819 respectively). There was an improvement in all parameters with the addition of xylanase (FI p = 0.011; BWG and FCR p<0.001). There was a significant positive effect of xylanase on IDE, AME, IDE Intake (IDEI) and AME intake (AMEI) (p<0.0001 in all cases). Although there was no significant effect of maize source, there was a strong trend towards variability in IDE (p = 0.066) and AME (p = 0.058). There were no significant correlations (p<0.05) between any proximate or physiochemical values and any performance or AME values. This may suggest that none of those selected were suitable predictors for performance or AME. The broilers performed well according to the breed guidelines, with slightly increased FI, increased BWG and similar FCR prior to the addition of xylanase. When FCR and BWG were analysed with FI as a covariate, xylanase addition remained significant suggesting that the improvement in BWG and FCR was driven by an increase in digestibility and nutrient availability.
Xylanase (EC 3.2.1.8) was purified approximately 4.3 fold from Aspergillus niger SFN-416 by ammonium sulfate fractionation, Sephadex G-100 gel filtration and DEAE-Sephacel ion exchange chromatography. Molecular weight of the enzyme was approximately 42,000 daltons. The optimum pH and temperature of the enzyme activity were 5.5 and 50$\circ$C, respectively. The enzyme activity was enhanced by Fe$^{2+}$, and inhibited by Hg$^{2+}$. The activity was decreased by addition of methanol, ethanol, isopropanol and 1-butanol at a concentration of 10%(v/v).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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