There are numerous studies on transepithelial transports in duct cells including $Cl^-$ and/or $HCO_3^-$. However, studies on transepithelial $K^+$ transport of normal duct cells in exocrine glands are scarce. In the present study, we examined the characteristics of $K^+$ currents in single duct cells isolated from guinea pig pancreas, using a whole-cell patch clamp technique. Both $Cl^-$ and $K^+$ conductance were found with KCI rich pipette solutions. When the bath solution was changed to low $Cl^-$, reversal potentials shifted to the negative side, $-75{\pm}4\;mV$, suggesting that this current is dominantly selective to $K^+$. We then characterized this outward rectifying $K^+$ current and examined its $Ca^{2+}$ dependency. The $K^+$ currents were activated by intracellular $Ca^{2+}$. 100 nM or 500 nM $Ca^{2+}$ in pipette significantly (P<0.05) increased outward currents (currents were normalized, $76.8{\pm}7.9\;pA$, n=4 or $107.9{\pm}35.5\;pA$, n=6) at +100 mV membrane potential, compared to those with 0 nM $Ca^{2+}$ in pipette $(27.8{\pm}3.7\;pA,\;n=6)$. We next examined whether this $K^+$ current, recorded with 100 nM $Ca^{2+}$ in pipette, was inhibited by various inhibitors, including $Ba^{2+}$, TEA and iberiotoxin. The currents were inhibited by $40.4{\pm}%$ (n=3), $87.0{\pm}%$ (n=5) and $82.5{\pm}%$ (n=9) by 1 mM $Ba^{2+}$, 5 mM TEA and 100 nM iberiotoxin, respectively. Particularly, an almost complete inhibition of the current by 100 nM iberiotoxin further confirmed that this current was activated by intracellular $Ca^{2+}$. The $K^+$ current may play a role in secretory process, slnce recycling of $K^+$ is critical for the initiation and sustaining of $CI^-$ or $HCO_3^-$ secretion in these cells.
Various voltage-gated $K^+$ currents were recently described in dorsal root ganglion (DRG) neurons. However, the characterization and diversity of voltage-gated $K^+$ currents have not been well studied in trigeminal root ganglion (TRG) neurons, which are similar to the DRG neurons in terms of physiological roles and anatomy. This study was aimed to investigate the characteristics and diversity of voltage-gated $K^+$ currents in acutely isolated TRG neurons of rat using whole cell patch clamp techniques. The first type (type I) had a rapid, transient outward current ($I_A$) with the largest current size having a slow inactivation rate and a sustained delayed rectifier outward current ($I_K$) that was small in size having a fast inactivation rate. The $I_A$ currents of this type were mostly blocked by TEA and 4-AP, K channel blockers whereas the $I_K$ current was inhibited by TEA but not by 4-AP. The second type had a large $I_A$ current with a slow inactivation rate and a medium size-sustained delayed $I_K$ current with a slow inactivation rate. In this second type (type II), the sensitivities of the $I_A$ or $I_K$ current by TEA and 4-AP were similar to those of the type I. The third type (type III) had a medium sized $I_A$ current with a fast inactivation rate and a large sustained $I_K$ current with the slow inactivation rate. In type III current, TEA decreased both $I_A$ and $I_K$ but 4-AP only blocked $I_A$ current. The fourth type (type IV) had a smallest $I_A$ with a fast inactivation rate and a large $I_K$ current with a slow inactivation rate. TEA or 4-AP similarly decreased the $I_A$ but the $I_K$ was only blocked by 4-AP. These findings suggest that at least four different voltage-gated $K^+$ currents in biophysical and pharmacological properties exist in the TRG neurons of rats.
This study was designed to investigate direct effects of [D-$Pen^2$, D-$Pen^5$]-enkephalin, a $\delta$-opioid receptor agonist on the neuronal activity of medial vestibular nuclear (MVN) neurons by whole-cell configuration patch clamp experiments. The spike frequency of MVN neuron was increased to $9.50{\pm}0.55$ (P<0.05) and $10.56{\pm}0.66$ (P<0.05) by 5 and $10{\mu}M$ [D-$Pen^2$, D-$Pen^5$]-enkephalin from the control level of $8.05{\pm}0.55$ spikes/sec, respectively (n=18). The resting membrane potential of the neurons was increased to $-37.86{\pm}0.92$ and $-36.97{\pm}0.97$ (P<0.05) from $-38.74{\pm}1.13\;mV$ by 5 and $10{\mu}M$ [D-$Pen^2$, D-$Pen^5$]-enkephalin, respectively. The amplitude of afterhyperpolarization was decreased to $23.78{\pm}0.65$ and $21.67{\pm}0.89$ (P<0.05) from $23.73{\pm}0.53\;mV$ by 5 and $10{\mu}M$ [D-$Pen^2$, D-$Pen^5$]-enkephalin, respectively. The spike width was changed to $2.22{\pm}0.08$ and $2.24{\pm}0.07$ from $2.20{\pm}0.08\;mV$ by 5 and $10{\mu}M$ [D-$Pen^2$, D-$Pen^5$]-enkephalin, respectively. After pretreatment of naltrindole, a highly selective 8-opioid receptor antagonist, [D-$Pen^2$, D-$Pen^5$]-enkephalin did not change firing rate, resting membrane potential, afterhyperpolarization amplitude, and spike width of MVN neurons. The above experimental results suggest that [D-$Pen^2$, D-$Pen^5$]-enkephalin increases the neuronal activity of MVN neurons via inhibition of calcium-dependent potassium currents underlying the afterhyperpolarization.
We employed the whole-cell patch clamp technique to investigate the effects of arachidonic acid (AA) on barium inward current through the L-type calcium channels ($I_{Ba}$) and on osmotic stretch-induced increase of $I_{Ba}$ in guinea-pig antral gastric myocytes. Under isosmotic condition, AA inhibited $I_{Ba}$ in a dose-dependent manner to $91.1{\pm}1.4,\;72.0{\pm}3.2,\;46.0{\pm}1.8,\;and\;20.3{\pm}2.3%$ at 1, 5, 10, 30 mM, respectively. The inhibitory effect of AA was not affected by 10 ${\mu}M$ indomethacin, a cyclooxygenase inhibitor. Other unsaturated fatty acids, linoleic acid (LA) and oleic acid (OA) were also found to suppress $I_{Ba}$ but stearic acid (SA), a saturated fatty acid, had no inhibitory effect on $I_{Ba}$. The potency sequence of these inhibitory effects was AA ($79.7{\pm}2.3%$) > LA ($43.1{\pm}2.7%$) > OA ($14.2{\pm}1.1%$) at 30 ${\mu}M$. On superfusing the myocyte with hyposmotic solution (214 mOsm) the amplitude of $I_{Ba}$ at 0 mV increased ($38.0{\pm}5.5%$); this increase was completely blocked by pretreatment with 30 mM AA, but not significantly inhibited by lower concentrations of AA (1, 5 and 10 ${\mu}M$) (P>0.05). Unsaturated fatty acids shifted the steady-state inactivation curves of $I_{Ba}$ to the left; the extent of shift caused by AA was greater than that caused by LA. The activation curve was not affected by AA or LA. The results suggest that AA and other unsaturated fatty acids directly modulate L-type calcium channels and AA might modulate the hyposmotic stretch- induced increase of L-type calcium channel current in guinea-pig gastric smooth muscle.
In N-type $Ca^{2+}$ channels, the mechanism of inactivation - decline of inward current during a depolarizing voltage step- is still controversial between voltage-dependent inactivation and $Ca^{2+}$ -dependent inactivation. In the previous paper we demonstrated that fast component of inactivation of N-type calcium channels does not involve classic $Ca^{2+}$ -dependent mechanism and the slowly inactivating component could result from a $Ca^{2+}$ -dependent process. However, there should be signal transduction pathway which enhances inactivation no matter what the inactivation mechanism is. We have investigated the effect of phosphorylation on calcium channels of rat sympathetic neurons. Intracellular dialysis with the phosphatase inhibitors okadaic acid markedly enhanced the inactivation. The rapidly inactivating component is N-type calcium current, which is blocked by $\omega$-conotoxin GVIA. Staurosporine, a nonselective protein kinase inhibitor, prevented the action of okadaic acid, suggesting that protein phosphorylation is involved. More specifically lavendustin C, inhibitor of CaM kinase II, prevented the action of okadaic acid, suggesting that calmodulin dependent pathway is involved in inactivation process. It is not certain to this point whether phosphorylation process is inactivation itself. Molecular biological research regarding binding site should be followed to address the question of how the divalent cation binding site is related to phoshorylation process.
Objectives : The purpose of this study was to examine the effects of Alisma canaliculatum Extract (ACE) on pacemaker potentials of small and large intestinal interstitial Cells of Cajal (ICC) in mice. Methods : We used enzymatic digestions to dissociate the ICC in the small and large intestine in mice. The whole-cell patch-clamp method was used to record pacemaker potentials in ICC. Results : 1. The ICC generated the pacemaker potentials in small intestine in mice. ACE (0.1-1mg/ml) induced membrane depolarization and decreased frequency with concentration-dependent manners. 2. Pretreatment with a Ca2+ free solution, Na+ 5 mM solution or 2-APB, a nonselective cation channel blocker, stopped the small intestinal ICC pacemaker potentials. In the case of Ca2+-free solution, Na+ 5 mM solution or 2-APB, ACE had no effects on the membrane depolarizations in small intestinal ICC. 3. The ICC generated the pacemaker potentials in large intestine in mice. Membrane depolarization appears regularly in the small intestine, but irregularly in the large intestine. ACE induced membrane depolarization (0.1-1mg/ml) and increased frequency (0.1-0.5mg/ml). 4. Pretreatment with a Ca2+ free solution, Na+ 5 mM solution or 2-APB, stopped the large intestinal ICC pacemaker potentials. In the case of Ca2+-free solution, Na+ 5 mM solution or 2-APB, ACE depolarized the membrane depolarizations in large intestinal ICC. 5. In mice, intestinal transit rate (ITR) values were dose-dependently decreased by the intragastric administration of ACE. Conclusions : These results suggest that ACE can regulate the pacemaker activity of ICC and the reaction by ACE is different from the small and large intestinal ICC, and the control of the intestinal motion by ACE may be caused by many complex processes.
Transmembrane protein TMEM16A, which encodes calcium-activated chloride channel has been implicated in tumorigenesis. Overexpression of TMEM16A is associated with poor prognosis and low overall survival in multiple cancers including lung adenocarcinoma, making it a promising biomarker and therapeutic target. In this study, three structure-related sesquiterpene lactones (mecheliolide, costunolide and dehydrocostus lactone) were extracted from the traditional Chinese medicine Aucklandiae Radix and identified as novel TMEM16A inhibitors with comparable inhibitory effects. Their effects on the proliferation and migration of lung adenocarcinoma cells were examined. Whole-cell patch clamp experiments showed that these sesquiterpene lactones potently inhibited recombinant TMEM16A currents in a concentration-dependent manner. The half-maximal concentration (IC50) values for three tested sesquiterpene lactones were 29.9 ± 1.1 µM, 19.7 ± 0.4 µM, and 24.5 ± 2.1 µM, while the maximal effect (Emax) values were 100.0% ± 2.8%, 85.8% ± 0.9%, and 88.3% ± 4.6%, respectively. These sesquiterpene lactones also significantly inhibited the endogenous TMEM16A currents and proliferation, and migration of LA795 lung cancer cells. These results demonstrate that mecheliolide, costunolide and dehydrocostus lactone are novel TMEM16A inhibitors and potential candidates for lung adenocarcinoma therapy.
Na Kyeong Park;Seong Woo Choi;Soon-Jung Park;JooHan Woo;Hyun Jong Kim;Woo Kyung Kim;Sung-Hwan Moon;Hun-Jun Park;Sung Joon Kim
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.28
no.4
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pp.313-322
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2024
Mutations within the SCN5A gene, which encodes the α-subunit 5 (NaV1.5) of the voltage-gated Na+ channel, have been linked to three distinct cardiac arrhythmia disorders: long QT syndrome type 3, Brugada syndrome (BrS), and cardiac conduction disorder. In this study, we have identified novel missense mutations (p.A385T/R504T) within SCN5A in a patient exhibiting overlap arrhythmia phenotypes. This study aims to elucidate the functional consequences of SCN5A mutants (p.A385T/R504T) to understand the clinical phenotypes. Whole-cell patch-clamp technique was used to analyze the NaV1.5 current (INa) in HEK293 cells transfected with the wild-type and mutant SCN5A with or without SCN1B co-expression. The amplitude of INa was not altered in mutant SCN5A (p.A385T/R504T) alone. Furthermore, a rightward shift of the voltage-dependent inactivation and faster recovery from inactivation was observed, suggesting a gain-of-function state. Intriguingly, the co-expression of SCN1B with p.A385T/R504T revealed significant reduction of INa and slower recovery from inactivation, consistent with the loss-of-function in Na+ channels. The SCN1B dependent reduction of INa was also observed in a single mutation p.R504T, but p.A385T co-expressed with SCN1B showed no reduction. In contrast, the slower recovery from inactivation with SCN1B was observed in A385T while not in R504T. The expression of SCN1B is indispensable for the electrophysiological phenotype of BrS with the novel double mutations; p.A385T and p.R504T contributed to the slower recovery from inactivation and reduced current density of NaV1.5, respectively.
ATP in quantity co-stored with neurotransmitters in the secretory vesicles of neurons, by being co-released with the neurotransmitters, takes an important role to modulate the stimulus-secretion response of neurotransmitters. Here, in this study, the modulatory effect of ATP was studied in $Ca^{2+}$ channels of cultured rat adrenal chromaffin cells to investigate the physiological role of ATP in neurons. The $Ca^{2+}$ channel current was recorded in a whole-cell patch clamp configuration, which was modulated by ATP. In 10 mM $Ba^{2+}$ bath solution, ATP treatment (0.1 mM) decreased the $Ba^{2+}$ current by an average of $36{\pm}6%$ (n=8), showing a dose-dependency within the range of $10^{-4}{\sim}10^{-1}mM$. The current was recovered by ATP washout, demonstrating its reversible pattern. This current blockade effect of ATP was disinhibited by a large prepulse up to +80 mV, since the $Ba^{2+}$ current increment was larger when treated with ATP ($37{\pm}5%$, n=11) compared to the control ($25{\pm}3%$, n=12, without ATP). The $Ba^{2+}$ current was recorded with $GTP{\gamma}S$, the non-hydrolyzable GTP analogue, to determine if the blocking effect of ATP was mediated by G-protein. The $Ba^{2+}$ current decreased down to 45% of control with $GTP{\gamma}S$. With a large prepulse (+80 mV), the current increment was $34{\pm}4%$ (n=19), which $25{\pm}3%$ (n=12) under control condition (without $GTP{\gamma}S$). The $Ba^{2+}$ current waveform was well fitted to a single-exponential curve for the control, while a double-exponential curve best fitted the current signal with ATP or $GTP{\gamma}S$. In other words, a slow activation component appeared with ATP or $GTP{\gamma}S$, which suggested that both ATP and $GTP{\gamma}S$ caused slower activation of $Ca^{2+}$ channels via the same mechanism. The results suggest that ATP may block the $Ca^{2+}$ channels by G-protein and this $Ca^{2+}$ channel blocking effect of ATP is important in autocrine (or paracrine) inhibition of adrenaline secretion in chromaffin cell.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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