Park, Ji-Hoon;Kim, Hye-Ryung;Chae, Ha-Kyung;Park, Jonghyun;Jeon, Bo-Young;Lyoo, Young S.;Park, Choi-Kyu
한국동물위생학회지
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제45권1호
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pp.19-30
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2022
In this study, a simple loop-mediated isothermal amplification (LAMP) combined with visual detection method (vLAMP) assay was developed for the rapid and specific detection of African swine fever virus (ASFV), overcoming the shortcomings of previously described LAMP assays that require additional detection steps or pose a cross-contamination risk. The assay results can be directly detected by the naked eye using hydroxynaphthol blue after incubation for 40 min at 62℃. The assay specifically amplified ASFV DNA and no other viral nucleic acids. The limit of detection of the assay was <50 DNA copies/reaction, which was ten times more sensitive than conventional polymerase chain reaction (cPCR) and comparable to real-time PCR (qPCR). For clinical evaluation, the ASFV detection rate of vLAMP was higher than cPCR and comparable to OIE-recommended qPCR, showing 100% concordance, with a κ value (95% confidence interval) of 1 (1.00~1.00). Considering the advantages of high sensitivity and specificity, no possibility for cross-contamination, and being able to be used as low-cost equipment, the developed vLAMP assay will be a valuable tool for detecting ASFV from clinical samples, even in resource-limited laboratories.
Borna disease(BD) virus 특이항체검출에 대한 세 가지 혈청진단법(간접형광항체법, 세포효소면역반응법, 혈청중화시험)의 정확도를 비교하기 위해 BD virus를 실험적으로 감염시킨 273수의 토끼의 혈청으로 시험하였다. 혈청중 간접형광항체법에 의하여 판정된 123혈청들은 모두 세포효소면역반응법에 의해서 양성으로 판정되었으나 혈청중화시험법에 의해서는 단지 27혈청에서만 양성으로 판정되었다. 혈청중화시험법은 간접형광항체법과 세포효소면역반응법에 비하여 민감도가 훨씬 낮게 나타나 BD virus의 혈청학적 연구에는 간접형광항체법 및 세포효소면역반응법의 활용도가 높을 것으로 생각된다.
African swine fever (ASF) is an infectious disease of domestic and wild pigs for which there is no vaccine in the world. A proper surveillance of viral activity and a timely response to ASF outbreaks depend upon the rapid diagnosis of ASF viral infection. Internationally prescribed enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) is a fast, sensitive test routinely used in the diagnosis of the ASF. However, inactivated whole ASF virus antigen used in this test is a tedious to prepare and has a risk of outside exposure of infectious virus by laboratory accident during the preparation. An ASF virus noninfectious recombinant antigen is a safe and easily produced alternative antigen for use in diagnostic assay. We have cloned the ORF O61R gene of the ASF virus to generate a recombinant baculovirus producing the p12 protein in insect cells under control of the polyhedrin promoter as non-fusion protein. When used in an indirect ELISA, the p12 antigen showed reactivity with all known ASF positive pig sera but not with negative pig sera. Our results indicated that the p12 protein would be one of alternative antigens for diagnosis of the ASF.
The viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) has an extensive host range, and infects farmed and wild fish inhabiting both freshwater and marine ecosystems. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) is highly useful in diagnosing viral hemorrhagic septicemia. However, ELISA shows high, non-specific background reaction with fish antibodies. In this study, we optimized the antigen and antibody concentrations used for detecting specific antibodies in VHSV-infected olive flounder to reduce non-specific binding, and improve the sensitivity of ELISA. The results suggested that OD (optical Density) values were valid when ELISA was performed with $0.1{\mu}g/well$ of virus, involving blocking with blocking buffer (Roth, Roti-Block), 1:300-1:600 dilution with flounder antisera, and 1:1000 dilution with anti-flounder IgM and HRP-conjugated goat anti-mouse IgG for detecting the VHSV antibody in flounder sera. Furthermore, 11 different VHSV strains isolated in Korea from 2012 to 2016 were used to infect the fish. The results showed no correlation between viral pathogenicity and antibody production. This research is a basic study on the application of antibody detection in the diagnosis of viral hemorrhagic septicemia in the olive flounder.
Japanese encephalitis (JE) is an important zoonosis caused by the mosquito-transmitted JE virus (JEV), which is a causative agent of reproductive failure in pregnant sows. Detection of JEV antibodies in swine is performed by hemagglutination inhibition (HI), virus neutralization (VN), and the plaque reduction neutralization test (PRNT). The most stringent PRNT is the 90% endpoint PRNT ($PRNT_{90}$). These conventional assays are difficult to carry out in diagnostic laboratories with insufficient instruments or cell culture systems. An alternative assay that is easily conducted and time efficient is required. In this study, we improved the indirect enzyme-linked immunosorbent assay (I-ELISA) with clarified antigen for the detection of JEV antibodies. The I-ELISA results obtained from 175 swine serum samples were compared with HI, VN, and $PRNT_{90}$ results. The sensitivity of I-ELISA was 91.8%, 95.0%, and 94.7% compared with HI, VN, and $PRNT_{90}$ results, respectively. The specificity of I-ELISA was 92.2%, 94.7%, and 94.7% compared with HI, VN, and $PRNT_{90}$ results, respectively. Moreover, the I-ELISA results were significantly correlated with the HI (r = 0.93), VN (r = 0.95), and $PRNT_{90}$ (r = 0.92) results. These results suggest that the improved I-ELISA is useful for serosurveillance of JEV in swine.
The World Health Organization (WHO) has declared the coronavirus disease 2019 (COVID-19) as an international health emergency. Current diagnostic tests are based on the reverse transcription-quantitative polymerase chain reaction (RT-qPCR) method, which is the gold standard test that involves the amplification of viral RNA. However, the RT-qPCR assay has limitations in terms of sensitivity and quantification. In this study, we tested both qPCR and droplet digital PCR (ddPCR) to detect low amounts of viral RNA. The cycle threshold (CT) of the viral RNA by RT-PCR significantly varied according to the sequences of the primer and probe sets with in vitro transcript (IVT) RNA or viral RNA as templates, whereas the copy number of the viral RNA by ddPCR was effectively quantified with IVT RNA, cultured viral RNA, and RNA from clinical samples. Furthermore, the clinical samples were assayed via both methods, and the sensitivity of the ddPCR was determined to be equal to or more than that of the RT-qPCR. However, the ddPCR assay is more suitable for determining the copy number of reference materials. These findings suggest that the qPCR assay with the ddPCR defined reference materials could be used as a highly sensitive and compatible diagnostic method for viral RNA detection.
PCR amplication using the primers for gag, pol and env genes in BLV (bovine leukemia virus) proviral DNA and syncytium assay were carried out for the Korean native goats experimentally infected with bovine leukemia virus to investigate pathogenesis of BLV in the goats, and to establish a model animal for BLV infection. The oligonucleotide primers used in PCR revealed very high specificity. The minimal amount of FLK-BLV cellular chromosomal DNA to detect the integrated BLV proviral DNA was 10 ng. The peripheral blood lymphocytes from the goat infected with BLV were examined at regular intervals by PCR amplification and syncytium assay. Pol or gag genes were detected in none of three infected goats at the 1st week post-infection (p.i.). At the 4th week p.i., one of three goats showed the amplified gag gene. Thereafter detection rates for the genes were increased, indicating that the BLV proviral genes were integrated in all of the lymphocytes from three goats, at the 16th weeks p.i., when it was evident in syncytium assay that the lymphocytes from all of three goats were infested with infective BLV. Investigating the tissues from the necropsied goats at the 8th month p.i., the amplified BLV proviral genes and infective BLV were detected in all of the peripheral lymphocytes from three infected-goats. Among various tissues examined, the amplified BLV proviral genes were observed in spleen and superficial cervical, mandibular and retropharyngeal lymph nodes, and the infective BLV, in superficial cervical and mandibular lymph nodes. It was assumed that the Korean native goat was quite susceptible to BLV infection, indicating that the goat could be a good model animal for BLV.
Hidayat, Sri Hendrastuti;Haryadi, Dedek;Nurhayati, Endang
The Plant Pathology Journal
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제25권4호
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pp.328-332
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2009
Diseases caused by Pepper yellow leaf curl virus infection is considered to be emerging plant diseases in Indonesia in the last five years. One key factor for disease management is the availability of accurate detection of the virus in plants. Polyclonal antibody for Pepper yellow leaf curl Indonesia virus-Bogor (PYLCIV-Bgr) was produced for detection of the virus using I-ELISA and DIBA methods. The antibody was able to detect PYLCIV-Bgr from infected plants up to dilution 1/16,384 and cross reaction was not observed with Cucumber mosaic virus (CMV), Tobacco mosaic virus (TMV), and Chilli veinal mottle virus (ChiVMV). Positive reaction was readily detected in membrane containing Begomovirus samples from Yogyakarta (Kaliurang and Kulonprogo) and West Java (Bogor and Segunung). Infection of PYLCIV-Bgr in chillipepper, tomato, and Ageratum conyzoides was also confirmed using polyclonal antibody for PYLCIV-Bgr in DIBA. Polyclonal antibody for PYLCIV-Bgr is suggested to be included in disease management approach due to its good detection level.
Gladioli (Gladiolus hybridus) showing flower colour breaking leaf mosaics, notched leaf, and dwarfing or lack of visible symptoms were collected from gladioli growing areas in Taegu and Kyungpook province, Korea. The three viruses isolated from the naturally infected gladioli were identified as broad bean wilt virus (BBWV), cucumber mosaic virus (CMV), and tobacco rattle virus (TRV) by their host range, immunosorbent electron microscopy (ISEM), enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), direct tissue blotting immunoassay (DTBIA), and intracellural symptoms. By DTBIA and ISEM, TRV was detected in gladiolus showing notched leaf, while CMV was frequently detected in gladioli with dwarfing, color breaking and malformation of flowers. BBWV was also often detected in many symptomless gladiolus plants, but TRV was detected in notched-leaf of gladiolus. Electron microcopic examination of negatively stained preparations showed that BBWV and CMV are spherical particles of 28 nm and 30 nm in diameter, and TRV is rigid rod-shaped particles of 40∼200 nm in length. The rigid rodshaped virus particles reacted positively with TRV antiserum in ISEM and DTBIA, respectively.
Kim, Daehyun;Jaewook Hyun;Hyunsik Hwang;Lee, Sukchan
The Plant Pathology Journal
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제16권1호
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pp.48-51
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2000
Citrus tristeza virus (CTV) was identified form CTV-infected early satsuma mandarin (Citus unshiu) and yuzu (C.junos) by RT-PCR. The total RNAs were isolated from citrus bark and seaf tissues infected with CTV and reverse transcription was followed with primers designed for amplifying CTV coat protein gene. DNA fragments 738 bp were amplified by RT-PCR and these products were colned for sequence analysis. Based on the sequence analysis, this PCR product has 97% sequence homology to CTV (T-385) CP gene isolated from USA. RT-PCR assay for CTV detection was more sensitivity than ELISA assay which was done with anti-CTV CP antibody. This is the frist report about CTV identification in Cheju island Korea.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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