Kim, Geun-Seop;Park, Chae-Rin;Kim, Ji-Eun;Kim, Hong-Kook;Kim, Byeong-Soo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.32
no.2
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pp.220-227
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2022
The spread of antibiotic-resistant strains of Staphylococcus aureus, a gram-positive opportunistic pathogen, has increased due to the frequent use of antibiotics. Inhibition of the quorum-sensing systems of biofilm-producing strains using plant extracts represents an efficient approach for controlling infections. Torilis japonica is a medicinal herb showing various bioactivities; however, no studies have reported the anti-biofilm effects of T. japonica extracts against drug-resistant S. aureus. In this study, we evaluated the inhibitory effects of T. japonica ethanol extract (TJE) on biofilm production in methicillin-sensitive S. aureus (MSSA) KCTC 1927, methicillin-resistant S. aureus (MRSA) KCCM 40510, and MRSA KCCM 40511. Biofilm assays showed that TJE could inhibit biofilm formation in all strains. Furthermore, the hemolysis of sheep blood was found to be reduced when the strains were treated with TJE. The mRNA expression of agrA, sarA, icaA, hla, and RNAIII was evaluated using reverse transcription-polymerase chain reaction to determine the effect of TJE on the regulation of genes encoding quorum sensing-related virulence factors in MSSA and MRSA. The expression of hla reduced in a concentration-dependent manner upon treatment with TJE. Moreover, the expression levels of other genes were significantly reduced compared to those in the control group. In conclusion, TJE can suppress biofilm formation and virulence factor-related gene expression in MSSA and MRSA strains. The extract may therefore be used to develop treatments for infections caused by antibiotic-resistant S. aureus.
The molecular epidemiological characteristics of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) isolates have demonstrated their genetic diversity and evolution. A total of 137 strains of MRSA clinical isolates was collected from Korean healthcare facility in 2007. The MRSA clinical isolates were analyzed by molecular typings (SCCmec element and agr locus typing), virule nce factor gene detections {(Panton-Valentine leukocidin (PVL), enterotoxin, exfoliative toxin and toxic shock syndrome toxin-1), and amplified fragment length polymorphism (AFLP)}. The MRSA clinical isolates were classified as SCCmec type II-agr type 1 (2 strains), type II-agr type 2 (79 strains), type III-agr type 1 (24 strains), type III-agr type 2 (2 strains), type IV-agr type 1 (27 strains), type IV-agr type 2 (2 strains), and non-typable (1 strain, agr type 3). Based on SCCmec types, SCCmec type II (95.1%) and III (88.5%) indicated higher multidrug resistance rate than SCCmec type IV (10.3%) (P<0.001). The most common enterotoxin genes were seg (83.8%), sei (83.1%), and sec (80.2%). The tst gene was present in 86 out of 137 (62.8%) MRSA isolates. All MRSA isolates were negative for PVL and exfoliative toxin genes. The combinations of toxin genes were observed in particular SCCmec types; 97.6% of SCCmec type II strains carried sec, seg, sei and tst genes, 73.0% of SCCmec type III strains carried sea gene, and 89.7% of SCCmec type IV strains carried sec, seg and sei genes. Each of the SCCmec types of MRSA isolates had distinct AFLP profile. In conclusion, SCCmec type II, agr type 1 and 2 have demonstrated to be the most common types in Korea, and the results indicated that the virulence factors are closely associated with their molecular types (SCCmec and agr types).
A risk analysis of Shiga toxin (Stx)-encoding bacteriophage was carried out by confirming the transduction phage to non-Stx-producing Escherichia coli (STEC) and subsequent expression of the Shiga toxin genes. The virulence factor stx1 was identified in five phages, and both stx1 and stx2 were found in four phages from a total of 19 phage isolates with seven non-O157 STEC strains. The four phages, designated as ϕNOEC41, ϕNOEC46, ϕNOEC47, and ϕNOEC49, belonged morphologically to the Myoviridae family. The stabilities of these phages to temperature, pH, ethanol, and NaClO were high with some variabilities among the phages. The infection of five non-STEC strains by nine Stx-encoding phages occurred at a rate of approximately 40%. Non-STEC strains were transduced by Stx-encoding phage to become lysogenic strains, and seven convertant strains had stx1 and/or stx2 genes. Only the stx1 gene was transferred to the receptor strains without any deletion. Gene expression of a convertant having both stx1 and stx2 genes was confirmed to be up to 32 times higher for Stx1 in 6% NaCl osmotic media and twice for Stx2 in 4% NaCl media, compared with expression in low-salt environments. Therefore, a new risk might arise from the transfer of pathogenic genes from Stx-encoding phages to otherwise harmless hosts. Without adequate sterilization of food exposed to various environments, there is a possibility that the toxicity of the phages might increase.
Among the AAA+ proteases in bacteria, FtsH is a membrane-bound ATP-dependent metalloprotease, which is known to degrade many membrane proteins as well as some cytoplasmic proteins. In the intracellular pathogen Salmonella enterica serovar Typhimurium, FtsH is responsible for the proteolysis of several proteins including MgtC virulence factor and MgtA/MgtB Mg2+ transporters, the transcription of which is controlled by the PhoP/PhoQ two-component regulatory system. Given that PhoP response regulator itself is a cytoplasmic protein and also degraded by the cytoplasmic ClpAP protease, it seems unlikely that FtsH affects PhoP protein levels. Here we report an unexpected role of the FtsH protease protecting PhoP proteolysis from cytoplasmic ClpAP protease. In FtsH-depleted condition, PhoP protein levels decrease by ClpAP proteolysis, lowering protein levels of PhoP-controlled genes. This suggests that FtsH is required for normal activation of PhoP transcription factor. FtsH does not degrade PhoP protein but directly binds to PhoP, thus sequestering PhoP from ClpAP-mediated proteolysis. FtsH's protective effect on PhoP can be overcome by providing excess ClpP. Because PhoP is required for Salmonella's survival inside macrophages and mouse virulence, these data implicate that FtsH's sequestration of PhoP from ClpAP-mediated proteolysis is a mechanism ensuring the amount of PhoP protein during Salmonella infection.
Drosophila protects itself from infection by microbial organisms by means of its pivotal defense, the so-called innate immunity system. This is its sole defense as it lacks an adaptive immunity system such as is found in mammals. The strong conservation of innate immunity systems in organisms from Drosophila to mammals, and the ease with which Drosophila can be manipulated genetically, makes this fly a good model system for investigating the mechanisms of virulence of a number of medically important pathogens. Potentially damaging endogenous and/or exogenous challenges sensed by specific receptors initiate signals via the Toll and/or Imd signaling pathways. These in turn activate the transcription factors Dorsal, Dorsal-related immune factor (Dif) and Relish, culminating in transcription of genes involved in the production of antimicrobial peptides, melanization, phagocytosis, and the cytoskeletal rearrangement required for appropriate responses. Clarifying the regulatory interactions between the various pathways involved is very important for understanding the specificity and termination mechanism of the immune response.
Kim, Min-Jeong;Kil, Min-Kwang;Jung, Jong-Hwan;Kim, Jin-Mi
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.2
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pp.242-247
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2008
In the fungal pathogen Candida albicans, the yeast-to-hyphal transition occurs in response to a broad range of environmental stimuli and is considered to be a major virulence factor. To address whether the zinc homeostasis affects the growth or pathogenicity of C. albicans, we functionally characterized the zinc-finger protein Csr1 during filamentation. The deduced amino acid sequence of Csr1 showed a 49% similarity to the zinc-specific transcription factor, Zap1 of Saccharomyces cerevisiae. Sequential disruptions of CSR1 were carried out in diploid C. albicans. The csr1/csr1 mutant strain showed severe growth defects under zinc-limited growth conditions and the filamentation defect under hypha-inducing media. The colony morphology and the germ-tube formation were significantly affected by the csr1 mutation. The expression of the hyphae-specific gene HWP1 was also impaired in csr1/csr1 cells. The C. albicans homologs of ZRTl and ZRT2, which are zinc-transporter genes in S. cerevisiae, were isolated. High-copy number plasmids of these genes suppressed the filamentation defect of the csr1/csr1 mutant strain. We propose that the filamentation phenotype of C. albicans is closely associated with the zinc homeostasis in the cells and that Csr1 plays a critical role in this regulation.
Purpose : Nosocomial infection with Staphylococcus aureus, especially methicillin resistant S. aureus, has become a serious concern in the neonatal intensive care unit. The aim of this study is to investigate the virulence factors, and the relationship between the antibiotic resistance and the associated genes of Staphylococcus aureus isolated from nasal cavity of neonates. Methods : Fifty one isolates of S. aureus were obtained from nasal swab taken in 28 neonates in the NICU and nursery of Pusan National University Hospital between February and May, 2001. They were tested in regard to antibiotic susceptibility, coagulase test and typing, plasmid DNA profile, as well as reactivity to enterotoxin A-E(sea, seb, sec, sed, see) genes and toxic shock syndrome toxin-1(tst) gene by polymerase chain reaction(PCR). Associated genes such as mecA, mecR1, mecI, and femA were also determined by PCR. The origin of MRSA strains was assessed using DNA fingerprinting by arbitrarily-primed polymerase chain reaction(AP-PCR). Results : Twenty three(45.1%) and six(11.8%) isolates were resistant to oxacillin and vancomycin respectively. Multidrug resistance to three or more of the antibiotics tested was observed in 51.0% of the isolates. Forty two isolates were coagulase positive and twenty two isolates had mecA gene. Sixteen isolates had both mecA and femA genes and had type I-III plasmids. 64.7% of isolates carried sec gene, and 80.4% carried tst gene. DNA fingerprinting by AP-PCR for 12 MRSA strains showed 10 distinct patterns, suggesting different origins. Conclusion : We confirmed that the prevalence of nasal carriage of S. aureus and the incidence of antimicrobial-resistant S. aureus, especially vancomycin resistance, is very high in neonates who were admitted in NICU and nursery. It is possible that these pathogens are responsible for serious nosocomial infections in neonates. The need for improved surveillance and continuous control of pathogens is emphasized.
KIM, Myoung-Sug;JIN, Ji-Woong;JUNG, Sung-Hee;SEO, Jung-Soo;HONG, Suhee
Journal of Fisheries and Marine Sciences Education
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v.27
no.5
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pp.1508-1521
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2015
Vibrio harveyi is a pathogenic marine bacterium causing systemic symptoms resulting in mass mortalities in fishes and shrimps in aquaculture. Outer membrane proteins(OMPs) are related to the pathogenicity and thus good targets for diagnosis and vaccination for Gram negative bacteria. Recently vaccination strategies using the OMPs have been suggested to control vibriosis in several fish species. In this study, we have isolated V. harveyi from diseased marine fishes from different regions of Korea and investigated genetic variations of four OMP genes including OmpK, OmpU, OmpV and OmpW. Consequently, OmpK and U genes could be divided into 3 subgroups of type I, II, III and type A, B, C, respectively, without any correlation with geographical regions and species while OmpV and W were highly homologous. OmpW gene of V. harveyi FP4138 was fully sequenced and predicted the deduced amino acid sequence to form ${\beta}-barrel$ with hydrophobic channel. Indeed, the immunogenicity of recombinant OmpW produced in Escherichia coli was assessed by vaccinating flounder. As a result, the high antibody response with antibody titer of $4.2{\pm}0.7$ and protection with relative percent survival of 60% against artificial infection of V. harveyi were demonstrated. This result indicates that OmpW is a virulence related factor and it can be a vaccine candidate to prevent a high mortality caused by V. harveyi infection in olive flounder, Paralichthys olivaceus.
Actinobacillus pleuropneumoniae causes a highly contagious pleuropneumoniae in swine. The bacterium produces several virulence factors such as exotoxin, LPS, capsular polysaccharide, etc. Among them, the exotoxin, called Apx, has been focused as the major virulence factor, and the toxin consists of 4 gene cluster. apx CABD. apxA is the structural gene of toxin and has four different types, I, II, III, and IV. As the first step of development of a new subunit vaccine, the three different types of apxA gene were amplified from A. pleuropneumoniae isolated from Korea by PCR with primer designed based on the N- and C-terminal of the toxin. The sizes of apxIA, IIA and IIIA were 3,073, 2,971 and 3,159bps, respectively. The comparison of whole DNA sequences of apxIA, IIA and IIIA genes with those of the reference strain demonstrated 98%, 99% and 98% homology, respectively. In addition, the phylogenetic analysis was performed based on the amino acid sequences compared with 12 different RTX toxin family using the neighbor-joining method. ApxA proteins of Korean isolates were identical with reference strains in this study. All ApxA proteins were expressed in E. coli with pQE expression vector and identified using Western blot with polyclonal antibodies against culture supernatants of A. pleuropneumoniae serotype 2 or 5. The sizes of each expressed ApxA protein were about 120, 110, 125 kDa (M.W.), respectively. The results obtained in this study could be used for the future study to develop a new vaccine to porcine pleuropneumoniae.
Dao, Hoai Thu;Truong, Quang Lam;Do, Van Tan;Hahn, Tae-Wook
Journal of Veterinary Science
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v.21
no.2
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pp.20.1-20.13
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2020
Actinobacillus pleuropneumoniae (APP) causes a form of porcine pleuropneumonia that leads to significant economic losses in the swine industry worldwide. The apxIBD gene is responsible for the secretion of the ApxI and ApxII toxins and the pnp gene is responsible for the adaptation of bacteria to cold temperature and a virulence factor. The apxIBD and pnp genes were deleted successfully from APP serotype 1 and 5 by transconjugation and sucrose counter-selection. The APP1ΔapxIBDΔpnp and APP5ΔapxIBDΔpnp mutants lost hemolytic activity and could not secrete ApxI and ApxII toxins outside the bacteria because both mutants lost the ApxI- and ApxII-secreting proteins by deletion of the apxIBD gene. Besides, the growth of these mutants was defective at low temperatures resulting from the deletion of pnp. The APP1ΔapxIBDΔpnp and APP5ΔapxIBDΔpnp mutants were significantly attenuated compared with wild-type ones. However, mice vaccinated intraperitoneally with APP5ΔapxIBDΔpnp did not provide any protection when challenged with a 10-times 50% lethal dose of virulent homologous (APP5) and heterologous (APP1) bacterial strains, while mice vaccinated with APP1ΔapxIBDΔpnp offered 75% protection against a homologous challenge. The ΔapxIBDΔpnp mutants were significantly attenuated and gave different protection rate against homologous virulent wild-type APP challenging.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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