pSp-Si (1.6kbp) was originally found in pediococcus halophilus to be a cryptic multicopy-plasmid. Hoping that the plasmid can also replicate in Bacillus subtilis, protoplast transformation of strain 207-25 (recE) was performed using pSP-Sl onto which was added the marker of tmrB8 (on 4.9 kbp EcoRI fragment ) or tmrB+ (on 0.9 kbp xbaI fragment) gene. Though the tmrB8 gene can expres tunicamycin-resistance at the single copy state, and the tmrB+ gene exerts the resistance only at the multicopy state, we could not confirm the replication of pSP-Sl (tmrB8) or pSP-Sl(tmrB+) in B. subtilis. During the experiment, however, we unexpectedly found that the circularized 0.9 kbp xgaI fragment (tmrB+) itself, which had no replication origin, could transform strain 207-25 to tunicamycin-resistant by protoplast transformation. Southern hybridization analyses with tmrB+ and other probes revealed the integration of the fragment at a single copy state into a position other than the homologous tmrB gene. This recE independent integration of another tmrB+ gene into the chromosome may contribute to the tunicamycinresistance in the transformants.
Kim, Sung-Wan;Yun, Eun-Young;Goo, Tae-Woo;Hwang, Jae-Sam;Kang, Seok-Woo;Kwon, O-Yu
한국잠사학회:학술대회논문집
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한국잠사학회 2003년도 International Symposium of Silkworm/Insect Biotechnology and Annual Meeting of Korea Society of Sericultural Science
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pp.91-92
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2003
For studies of unfolded protein response (UPR), we isolated differentially expressed genes in Bm5 cell line induced with treatment of tunicamycin, the synthesis inhibitor of N-linked oligosaccharides in cells and constructed the subtractive cDNA library enriching UPR-related genes. (omitted)
Recent studies provide some evidence that the HtrA2 protein is intimately associated with the pathogenesis of neurodegenerative disorders and that endoplasmic reticulum (ER) quality control and ER stress-associated cell death play critical roles in neuronal cell death. However, little is known about the intimate relationship between HtrA2 and ER stress-associated cellular responses. In the present study, we have demonstrated that the HtrA2 protein level was gradually and significantly increased by up to to-fold in the mitochondria under tunicamycin (Tm)-induced ER stress, which eventually promoted cell death through the release of HtrA2 into the cytoplasm. Using an ecdysone-inducible mammalian expression system, we demonstrate that the extent of cell death in 293-HtrA2 cells was approximately 20 times higher under Tm-induced ER stress, indicating that the increase in the HtrA2 protein level in the mitochondria itself is necessary but not sufficient for the promotion of cell death. Taken together, these results suggest that HtrA2 may serve as a mediator of ER stress-induced apoptosis and ER-mitochondrial cross-talk in some cellular processes.
The human liver cDNA clone UDPGTh2, encoding a liver UDP-glucuronosyltransferase (UDPGT) was isolated from a .gamma. gt 11 cDNA library by hybridization to mouse transferase cDNA clone, UDPGTm1. UDPGTh2 encoded a 529 amino acid protein with an amino terminus membrane-insertion signal peptide and a carboxyl terminus membrane-spanning region. There were three potential asparagine-linked glycosylation sites at residues 67, 68, and 315. In order to obtain UDPGTh2 protein encoded from cloned human liver UDP-glucuronosyltransferase cDNA, the clone was inserted into the pSVL vector (pUDPGTh2) and expressed in COS 1 cells. The presence of a transferase with Mr-52,000 in transfected cells cultured in the presence of $[^{35}S]$ methionine was shown by immunocomplexed products with goat antimouse transferase IgG and protein A-Sepharose and analysis by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and autoradiography. The expressed UDPGT was a glycoprotein as indicated by electrophoretic mobility shift in Mr-3,000-4,000 when expressed in the presence of tunicamycin. The extent of glycosylation was difficult to assess, although one could assume that glycosyl structures incorporated at the level of endoplasmic reticulum were always the core oligosaccharides. Thus, it is likely that at least two moieties inserted can account for the shift of Mr-3,000-4,000. This study demonstrates the cDNA and deduced amino acid sequence of human liver UDP-glucuronosyltransferase cDNA, UDPGTh2.
The SCO3388 gene from Streptomyces coelicolor is homologous to tmrB, the tunicamycin resistance gene of Bacillus subtilis. The SCO3388-inactivation strain (SY-tbl-1) was generated by replacing SCO3388 with thiostrepton resistance gene. Spores of S. coelicolor derivatives were prepared on mannitol-soy flour (MS) agar on which SY-tbl-1 displayed no significant defect in growth and development. When plated on R4 agar, spores of SYtbl-1 displayed retardation in growth and sporulation, whereas its mycelium gave rise to normal growth. Thus, SCO3388 is suggested to be involved in the dormant spore germination. Expression of SCO3388 under the ermE1 promoter restored but only partially the ability to sporulate in SY-tbl-1. Neither SY-tbl-1 nor SY-tbl-1/ermE1p-SCO3388 showed a difference in tunicamycin resistance to the wild type whereas, interestingly, the introduction of ermE1p-SCO3388 dramatically enhanced spore survival to heat and detergent treatments, suggesting that SCO3388 might play a role in the maintenance of spore cell wall integrity.
Human thrombopoietin (hTPO) was expressed to high levels in insect cells using the baculovirus expression system. Full-length hTPO cDNA containing a native signal peptide sequence was amplified by PCR from a human fetal liver cDNA library and cloned into the Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (AcNPV) expression vector. Immunoblot analysis with antiserum against hTPO indicated that an approximately 55 kDa protein was produced in recombinant AcNPV infected insect cells. Recombinant hTPO was produced 4-fold higher in Trichoplusia ni (Tn5) cells than in Spodoptera frugiperda (Sf9) cells. with most of the hTPO produced in Tn5 cells secreted into the culture medium. Addition of tunicamycin in the culture medium resulted in the reduction of the size of hTPO to 35-38 kDa, and most of the protein remained within the cell. These results suggest that N-glycosylation of hTPO is required for the secretion of the protein into the culture medium in insect cells. hTPO produced in insect cells induced proliferation and maturation of megakaryocyte progenitors, indicating that it is in a biologically active form.
Brefeldin A (BFA)는 Eupenicillium brefeldianum에서 분리한 lactone계열의 항생제이며 ER에서 Golgi로 단백질 이송/전달을 억제히는 기능이 있다. 따라서 BFA를 세포에 처리 시 Golgi 기능 장애와 ER에서 단백질의 폴딩/조립의 문제로 인하여 ER에 기능 장애가 발생하는데 이를 소포체 스트레스(ER stress)라고 한다. 본 연구에서는 정상 astrocyte 세포와 C6 glioma 세포에서의 BFA처리에 따라 ER stress marker 단백질인 CHOP 발현 차이를 확인하였다. BFA 처리 시 CHOP 발현이 정상 astrocyte 세포에서 C6 glioma 세포에 비해 현저히 낮은 발현을 확인하였다. 하지만 CHOP mRNA 발현에서는 astrocyte 세포에서 발현 됨을 RT-PCR로 확인하였다. C6 glioma 세포와 비교하여 astrocyte 세포에서 BFA유도의 CHOP 단백질 발현이 낮은 원인은 proteasome 활성이 높음으로 기인됨을 proteasome inhibitor 실험과 proteasome 활성 측정을 통하여 확인하였다.
Kwon, Min-Young;Hwang, Narae;Lee, Seon-Jin;Chung, Su Wol
BMB Reports
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제52권11호
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pp.665-670
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2019
Nucleotide-binding oligomerization domain protein 2 (NOD2), an intracellular pattern recognition receptor, plays important roles in inflammation and cell death. Previously, we have shown that NOD2 is expressed in vascular smooth muscle cells (VSMCs) and that NOD2 deficiency promotes VSMC proliferation, migration, and neointimal formation after vascular injury. However, its role in endoplasmic reticulum (ER) stress-induced cell death in VSMCs remains unclear. Thus, the objective of this study was to evaluate ER stress-induced viability of mouse primary VSMCs. NOD2 deficiency increased ER stress-induced cell death and expression levels of apoptosis mediators (cleaved caspase-3, Bax, and Bak) in VSMCs in the presence of tunicamycin (TM), an ER stress inducer. In contrast, ER stress-induced cell death and expression levels of apoptosis mediators (cleaved caspase-3, Bax, and Bak) were decreased in NOD2-overexpressed VSMCs. We found that the $IRE-1{\alpha}-XBP1$ pathway, one of unfolded protein response branches, was decreased in NOD2-deficient VSMCs and reversed in NOD2-overexpressed VSMCs in the presence of TM. Furthermore, NOD2 deficiency reduced the expression of XBP1 target genes such as GRP78, PDI-1, and Herpud1, thus improving cell survival. Taken together, these data suggest that the induction of ER stress through NOD2 expression can protect against TM-induced cell death in VSMCs. These results may contribute to a new paradigm in vascular homeostasis.
Objectives : Endoplasmic reticulum (ER) stress designates cellular responses to the accumulation of misfolded and unfolded proteins in ER, which is related to a variety of liver diseases. Present study investigated the inhibitory effects of Litsea japonica flesh water extract (LJE) aganist ER stress. Methods : After HepG2 cells were pretreated with LJE and subsequently exposed to tunicamycin (Tm) or thapsigargin (Tg), expression of C/EBP homologous protein (CHOP), glucose regulated protein 78 kDa (GRP78), asparagine synthetase (ASNS), and endoplasmic reticulum DnaJ homologue 4 (ERDJ4) were determined by immunoblot and real-time PCR analysis. Three canonical signaling pathways in response to ER stress were examined to explore molecular mechanisms involved. Results : Pretreatment of 1 mg/mL LJE inhibited Tm- or Tg-induced CHOP expression, while L. japonica fruit water extract did not. In addition, LJE decreased the levels of GRP78, ASNS, and ERDJ4 mRNA by Tm. Moreover, phosphorylations of eukaryotic translation initiation factor $2{\alpha}$ and inositol-requiring enzyme 1, expression of nuclear form of activating transcription factor $6{\alpha}$, and transactivation of ER stress response element- and unfolded protein response element-harboring luciferase activities were inhibited by LJE pretreatment. Conclusions : Present results suggest that LJE would be a candidate to prevent or treat ER stress-mediated liver injuries.
Background: The treatment of trigeminal neuralgia remains a challenging issue. Stem cells from human exfoliated deciduous teeth (SHED) provide optimized therapy for chronic pain. This study aimed to investigate the mechanisms underlying the attenuation of trigeminal neuralgia by SHED. Methods: Trigeminal neuralgia was induced by chronic constriction injury of the infraorbital nerve. The mechanical threshold was assessed after model establishment and local SHED transplantation. Endoplasmic reticulum (ER) morphology and Caspase12 expression in trigeminal ganglion (TG) was evaluated as well. BiP expression was observed in PC12 cells induced by tunicamycin. Results: The local transplantation of SHED could relieve trigeminal neuralgia in rats. Further, transmission electron microscopy revealed swelling of the ER in rats with trigeminal neuralgia. Moreover, SHED inhibited the tunicamycin-induced up-regulated expression of BiP mRNA and protein in vitro. Additionally, SHED decreased the up-regulated expression of Caspase12 mRNA and protein in the TG of rats caused by trigeminal neuralgia after chronic constriction injury of the infraorbital nerve mode. Conclusions: This findings demonstrated that SHED could alleviate pain by relieving ER stress which provide potential basic evidence for clinical pain treatment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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