Flavin-peptides were purified from pyranose oxidase (EC 1.1.3.10) after tryptic- chymotryptic and tryptic digestion. The spectral and chromatographic properties of these flavin peptides showed that the FAD of pyranose oxidase appears to be bound, by way of the 8${\alpha}$-methylene group, to the N-l position of the imidazole ring of the histidine. Automated sequence analysis showed that the amino acid sequence of the tryptic-chymotryptic flavin-peptide from pyranose oxidase is Ser-Thr-X-Trp and that of the tryptic flavin-peptide is Met-Ser-Thr-X-Trp. (omitted)
Lee, Hyun Hee L.;Chae, Soo Yeon;Son, Myung Kook;Kim, Hugh I.
Mass Spectrometry Letters
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제12권4호
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pp.137-145
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2021
Herein we report multiple ion mobility (IM) peaks in electrospray ionization IM mass spectrometry (ESI-IM-MS) produced by glutamine residue in peptide. The mobility features of 147 peptides were investigated using ESI-IM-MS combined with liquid chromatography. Of these peptides, 66 presented multiple IM peaks, and analysis of their sequence using collision induced dissociation (CID) revealed that glutamine (Gln), as well as proline (Pro), plays a critical role in generating multiple IM peaks. Mutant-based investigations using Gln-containing peptides indicate that the side chain of Gln promotes intermolecular interactions, inducing multiple structures of the peptide ions in the gas phase. Consequently, the present study demonstrates that the distinct ion mobility signatures identified herein can potentially be used to characterize glutamine-containing peptide ions.
본 실험은 효용성이 넓어지고 있는 바이오의약품 시장에서 질량분석기를 이용한 정밀 분석법을 제시한다. 단백질 의약품인 인성장호르몬(Somatotopin)을 분석하는 다양한 기술 중, 생화학적 시료 전처리를 통해 펩티드화 시킨 단백질을 LC-MS/MS 분석법으로 분석하였다. 분석과정은 액체크로마토그래피를 이용한 분리분석과 질량분석을 이용한 MS 및 MS/MS 분석으로 수행하였다. 인성장호르몬의 경우 21개의 트립틱 펩티드로 절단할 수 있는데, 본 실험을 통해 이들 중 13개의 펩티드가 평균 1 ppm 에러 이내로 이론적 예측치와 일치하였다.
Collision-induced dissociation of peptides involves a series of proton-transfer reactions in the activated peptide. To describe the kinetics of energy-variable dissociation, we considered the heat capacity of the peptide and the Marcus-theory-type proton-transfer rate. The peptide ion was activated to the high internal energy states by collision with a target gas in the collision cell. The mobile proton in the activated peptide then migrated from the most stable site to the amide oxygen and subsequently to the amide nitrogen (N-protonated) of the peptide bond to be broken. The N-protonated intermediate proceeded to the product-like complex that dissociated to products. Previous studies have suggested that the proton-transfer equilibria in the activated peptide affect the dissociation kinetics. To take the extent of collisional activation into account, we assumed a soft-sphere collision model, where the relative collision energy was fully available to the internal excitation of a collision complex. In addition, we employed a Marcus-theory-type rate equation to account for the proton-transfer equilibria. Herein, we present results from the integrated thermochemical approach using a tryptic peptide of ubiquitin.
The purpose of this research was to investigate the potential use of cheese whey protein (CWP), a cheese by-product. The physiological activity of calcium-binding peptides in CWP may be used as a food additive that prevents bone disorders. This research also examined the characteristics of calcium-binding peptides. After the CWP was heat treated, it was hydrolyzed by trypsin. Then calcium-binding peptides were separated and purified by ion-exchange chromatography and reverse phase HPLC, respectively. To examine the characteristics of the purified calcium-binding peptides, amino acid composition and amino acid sequence were analyzed. Calcium-binding peptides with a small molecular weight of about 1.4 to 3.4 kDa were identified in the fraction that was flowed out from 0.25 M NaCl step gradient by ion-exchange chromatography of tryptic hydrolysates. The results of the amino acid analysis revealed that glutamic acid in a calcium-binding site took up most part of the amino acids including a quantity of proline, leucine and lysine. The amino acid sequence of calcium-binding peptides showed Phe-Leu-Asp-Asp-Asp-Leu-Thr-Asp and Ile-Leu-Asp-Lys from $\alpha$-LA and Ile-Pro-Ala-Val-Phe-Lys and Val-Tyr-Val-Glu-Glu-Leu-Lys from ${\beta}$-LG.
Helices 4 and 5 of the Bacillus thuringiensis Cry4Ba $\delta$-endotoxin have been shown to be important determinants for mosquito-larvicidal activity, likely being involved in membrane-pore formation. In this study, the Cry4Ba mutant protein containing an additional engineered tryptic cleavage site was used to produce the $\alpha4$-$\alpha5$ hairpin peptide by an efficient alternative strategy. Upon solubilization of toxin inclusions expressed in Escherichia coli and subsequent digestion with trypsin, the 130-kDa mutant protoxin was processed to protease-resistant fragments of ca. 47, 10 and 7 kDa. The 7-kDa fragment was identified as the $\alpha4$-loop-$\alpha5$ hairpin via N-terminal sequencing and mass spectrometry, and was successfully purified by size-exclusion FPLC and reversed-phase HPLC. Using circular dichroism spectroscopy, the 7-kDa peptide was found to exist predominantly as an $\alpha$-helical structure. Membrane perturbation studies by using fluorimetric calcein-release assays revealed that the 7-kDa helical hairpin is highly active against unilamellar liposomes compared with the 65-kDa activated full-length toxin. These results directly support the role of the $\alpha4$-loop-$\alpha5$ hairpin in membrane perturbation and pore formation of the full-length Cry4Ba toxin.
액독 TMV, Tw 333 RNA 및 외피단백질에 대한 생화학적 특성을 조사하였다. Tw333-RNA는 $2.03\times10^6$dalton의 분자량을 나타냈고, 고기조성은 guanine 25.4, adenine 29.2, cytosine 17.5, uracil 27.9mol이었다. 열처리에서 얻어진 이 RNA의 농색효과는 $25.1\%$를 나타냈고, 이때 Tm치는 $47^{\circ}C$였다. 한편 Tw 333의 외피단백질은 17,500 dalton의 분자량을 보였으며, 16종의 아미노산으로 구성된 158개의 아미노산잔기를 나타냈다. Trypsin으로 분해한 단백질은 9종의 ninhydrin 양성반응 peptide를 형성하였다. 이들 약독 TMV, Tw333-RNA 및 외피단백질의 생화학적 특성은 원주 OM계통과 전반적으로 매우 유사하였다. 그러나 고기조성, 농색효과, 아미노산조성 및 peptide map에서 약간의 차가 인정되었다.
The fragmentation statistics of ion trap CID (Collision-Induced Dissociation) spectra using 87,661 tandem mass spectra of doubly charged tryptic peptides are analyzed here. In contrast to the usual method of using intensity information, the frequency of occurrence of fragment ions, with respect to the position of the cleavage site and the residues at these sites is studied in this paper. The analysis shows that the frequency of occurrence of fragment ion peaks is more towards the middle of the peptide than its ends. It was noted that amino acid with an aromatic and basic side chain at N- & C- terminal end of the peptide stimulates more peaks at the lower end of the spectrum. The residue pair effect was shown when the amide bond occurs between acidic and basic residues. The fragmentation at these sites (D/E-H/R/K) stimulates the generation of the y-ion peak. Also, the cleavage site H-H/R/K stimulates the generation of b-ions. K-P environment in the peptide sequence has more tendency to generate y-ions than b-ions. Statistical analysis helps in the visualization of the CID fragmentation pattern. Cleavage pattern along the length of the peptide and the residue pair effects, enhance the knowledge of fragmentation behavior, which is useful for the better interpretation of tandem mass spectra.
Proteomics for biomarker validation needs high throughput instrumentation to analyze huge set of clinical samples for quantitative and reproducible analysis at a minimum time without manual experimental errors. Sample preparation, a vital step in proteomics plays a major role in identification and quantification of proteins from biological samples. Tryptic digestion a major check point in sample preparation for mass spectrometry based proteomics needs to be more accurate with rapid processing time. The present study focuses on establishing a high throughput automated online system for proteolytic digestion and desalting of proteins from biological samples quantitatively and qualitatively in a reproducible manner. The present study compares online protein digestion and desalting of BSA with conventional off-line (in-solution) method and validated for real time sample for reproducibility. Proteins were identified using SEQUEST data base search engine and the data were quantified using IDEALQ software. The present study shows that the online system capable of handling high throughput samples in 96 well formats carries out protein digestion and peptide desalting efficiently in a reproducible and quantitative manner. Label free quantification showed clear increase of peptide quantities with increase in concentration with much linearity compared to off line method. Hence we would like to suggest that inclusion of this online system in proteomic pipeline will be effective in quantification of proteins in comparative proteomics were the quantification is really very crucial.
An ${\alpha}$-glucosidase inhibitor was developed from Aspergillus oryzae N159-1, which was screened from traditional fermented Korean foods. The intracellular concentration of the inhibitor reached its highest level when the fungus was cultured in tryptic soy broth medium at $27^{\circ}C$ for five days. The inhibitor was purified using a series of purification steps involving ultrafiltration, Sephadex G-25 gel permeation chromatography, strong cation exchange solid phase extraction, reverse-phase high performance liquid chromatography, and size exclusion chromatography. The final yield of the purification was 1.9%. Results of the liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) analysis indicated that the purified ${\alpha}$-glucosidase inhibitor was a tri-peptide, Pro-Phe-Pro, with the molecular weight of 360.1 Da. The IC50 value of the peptide against ${\alpha}$-glucosidase activity was 3.1 mg/mL. Using Lineweaver-Burk plot analysis, the inhibition pattern indicated that the inhibitor acts as a mixed type inhibitor.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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