Hydrolysis of soybean proteins was carried out by immobilized trypsin and/or alpha-chymotrypsin. The partially hydrolyzed products of soybean proteins were evaluated for their molecular weights and molecular charges by using Ferguson's plot. The ratio of average molecular weights to average molecular charges($\bar{M}/log\;\bar{Y}_o$) of modified soybean proteins could be used to predict functional properties such as solubility, water holding capacity, oil holding capacity, and emulsifying ability. The low ratio of modified soybean proteins indicated high solubility. while the high ratio showed high water holding capacity. The appropriate ranges of the ratios were necessary for maximun oil holding capacity and emulsifying ability.
The purpose of this study was to determine pharmacokinetic parameters and tissue distribution patters of urinary trypsin inhibitor(UTI) in Sprague-Dawley rats. $Na^{125}$I was conjugated to UTI to make $^{125}I-UTI$ and the concentrations were determined by $\gamma$-counter. With the aid of nonlinear least-square regression analysis for i.v bolus injection of 1,000 unit UTI including $^{125}I-UTI$, the temporal concentration curves were best fitted by 2-compartment open model. The distribution phase half-life was 0.39$\pm$0.02 hours whereas the elimination half-life was 12.99$\pm$1.05 hours in male rats. The volume of distribution and total body clearance in male rats were 0.28$\pm$0.01 1/kg and 83.16$\pm$1.15 ml/kg/h, respectively. We could not find any difference of pharmacokinetic parameters of UTI between male and female rats. UTI were distributed widely in rat organs. In both male and female rats, the kidney was the highest distributed organ. Amount of UTI in 24 hour cumulative urine in male rats was 36.22$\pm$8.74% and that in 48 hours was 43.32$\pm$10.55%. Excretion via feces was very scanty, with the 24 hours cumulative amount being only 2.76$\pm$0.97%. This data suggest the main excretion route of UTI is urine.
Kim, Dong-Jun;Yun, Hwi-Geon;Kim, In-Hui;Gwak, Won-Seok;Woo, Soo-Dong
Mycobiology
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v.45
no.3
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pp.204-208
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2017
Nosema ceranae is an obligate intracellular fungal parasite that causes mortality in honey bees and enhances the susceptibility of honey bees to other pathogens. Efficient purification of Nosema spores from the midgut of infected honey bees is very important because Nosema is non-culturable and only seasonably available. To achieve a higher yield of spores from honey bees, in this study, we considered that the initial release of spores from the midgut tissues was the most critical step. The use of 2 mm beads along with enzymatic treatment with collagenase and trypsin enhanced the homogenization of tissues and the yield of released spores by approximately 2.95 times compared with the use of common 3 mm beads alone. The optimal time for the enzyme treatment was determined to be 1 hr as measured by the yield and viability of the spores. A one-step filtration using a filter paper with an $8-11{\mu}m$ pore size was sufficient for removing cell debris. This method may be useful to purify not only N. ceranae spores but also other Nosema spp. spores.
A prolyl endopeptidase inhibitor was isolated from the ethyl acetate soluble fraction of Phyllanthus ussurensis. The active compound was identified as an ellagitannin, corilagin. It was shown to non-competitively inhibit prolyl endopeptidase (PEP) with the $IC_{50}$ value of $1.17 \times $10^{-6}\mu$M. The Ki value was $6.70 \times 10^{-7}$ M. Corilagin was less inhibitory to other serine proteases such as chymotrypsin, trypsin, and elastase, indicating that it was relatively a specific inhibitor of PEP. Corilagin also effectively inhibited reactive oxygen species such as hydroxide and superoxide anion radical, hydrogen peroxide, and DPPH. Especially, corilagin showed potent scavel1ging activity on the superoxide anion radical in the ESR method ($IC_{50} =3.79 \times 10^{-6}$M) as well as xanthine oxidase system.
Proceedings of the Zoological Society Korea Conference
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1995.10b
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pp.83-83
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1995
The three chitin synthetases of Saccharomyces cerevisiae, Chs1, Chs2, and Chs3, participate in septum and cell wall formation of vegetative cells and in wall morphogenesis of conjugating cells and spores. Because of the differences in the nature and in the time of execution of their functions, the synthetases must be specifically and individually regulated. The nature of that regulation has been investigated by measuring changes in the levels of the three synthetases and of the messages of the three corresponding gnes, CDSI, CHS2, and CAL1/CSD2/DITl0l(referred to below as CAL1), during the budding cycles. For Chs1 and Chs3, posttranslational regulation, probably by activation of latent forms, appears to be predominant. Since Chs2, like Chs1, is found in the cell in the zymogenic form, a posttranslational activation step appears to be necessary for this synthetase also. The regulation mechanism was investigated to search the relationship of CAL1, CAL2 and CALJ which is involved in Chs3 activity us ing different assay methods other than previous one. Treatment of Chs3-containing membranes with detergents drastically reduced the enzymatic activity. Activity could, however, be restored by subsequent incubation with trypsin or other pro teases in the presence of UDPGlcNAc. Experiments wi th mutants in the three genes invoIved in Chs3 activity-CAL1, CAL2, and CALJ-showed that only CAL1 and CALJ are required for the proteaseelicited (zymogenic) activity. It is concluded that Chs3 IS a zymogen and that the CAL2 product funct ions as its activator.ivator.
Antielastic fragment in GBⅠ-Ⅱ differ on $P_1$ site with that of antitryptic fragment in LBI. To obtain further understanding of the role of amino acid residue near the reactive site, specificity of $P_1$ site and loop size, Tyr substituted cyclic nonapeptide and cyclic pentapeptide were synthesized and the inhibition constants for some proteinases were calculated by Dixon method. Cyclic nonapeptide showed no inhibition for chymotrypsin but appeared low inhibitory activity for trypsin and elastase and that of cyclic pentapeptide possessed inhibitory activity for chymotrypsin.
For the biocompatibility test of implantable devices or for the sensitivity evaluation of biomedical sensors, it is required to understand the mechanism of the protein adsorption and the interaction between the adsorbed proteins and cells. In this study, the adsorption of proteins in a cell culture medium with fetal bovine serum onto an indium tin-oxide electrode was characterized by using linear sweep voltammetry and impedance spectroscopy. We immersed the fabricated ITO electrodes in the culture medium for 30, 60, or 90 min, and then measured the electrochemical properties of electrodes with 10 mM $Fe(CN){_6}^{3-/4-}$ and 0.1 M KCl electrolyte. With an increase of contacting time, the anodic peak current was decreased and the charge transfer resistance was increased. However, both parameters were recovered to the values before contact with the medium after the treatment of Trypsin/Ethylenediaminetetraacetic acid hydrolyzing proteins.
Using racemic (R,S)-2-(4-chlorophenyl)-3-methylbutyramide, an intermediate for the chiral pyrethroid insecticide Esfenvalerate, as a sole nitrogen source in a minimal medium, several strains with high enatioselectivity (${\geq}98%$) were isolated by enrichment techniques. One of the strains, LG 31-3, was identified as Burkholderia multivorans, based on physiological and morphological tests by a standardized Biolog station for carbon source utilization. A novel amidase was purified from B. mutivorans LG 31-3 and characterized. The enzyme exhibited (S)-selective amidase activity on racemic (R,S)-2-(4-chlorophenyl)-3-methylbutyramide. Addition of the racemic amide induced the production of the enantioselective amidase. The molecular mass of the amidase on SDS-PAGE analysis was shown to be 50 kDa. The purified amidase was subjected to proteolytic digestion with a modified trypsin. The N-terminal and internal amino acid sequences of the purified amidase showed a high sequence homology with those deduced from a gene named YP_366732.1 encoding indole acetimide hydrolase from Burkholderia sp. 383.
In this study, an angiotensin I-converting enzyme (ACE) inhibitor from squid skin was purified and characterized. Squid (Todarodes pacificus) skin protein isolates were hydrolyzed using six commercial proteases: alcalase, ${\alpha}$-chymotrypsin, neutrase, papain, pepsin, and trypsin. The peptic hydrolysate had the highest ACE inhibitory activity. The ACE inhibitory peptide was purified using Sephadex G-25 column chromatography and reverse phase high-performance liquid chromatography (HPLC) with a $C_{18}$ column. The purified ACE inhibitory peptide was identified and sequenced, and found to consist of seven amino acid residues: Ser-Ala-Gly-Ser-Leu-Val-Pro (657Da). The $IC_{50}$ value of the purified ACE inhibitory peptide was 766.2 ${\mu}M$, and Lineweaver-Burk plots suggested that the purified peptide acts as a noncompetitive ACE inhibitor. These results suggest that the ACE inhibitory peptide purified from the peptic hydrolysate of squid skin may be of benefit in developing antihypertensive drugs and functional foods.
Protein methylase inhibitor which is a modulator of biological methylation has been purified and characterized from porcine liver soluble fraction by cell fractionation, Sephadex G25 chromatography, reverse phase HPLC, size exclusion HPLC. The results are summarized as follows. 1) The purified inhibitor shows apparent homogeneity, as judged by HPLC. 2) A molecular weight of the purified inhibitor which is composed of 18 amino acid residues is about 1,400 daltons. 3) A single absorption peak of ultraviolet spectrum was observed at 260nm. 4) The inhibitor was not inactivated by heating at $100^{\circ}C$ until 60min. and its activity was not influenced by treatment with digestive enzymes, such as trypsin, pepsin, pronase, chymotrypin, lysozyme, DNase, and RNase. 5) The purified inhibitor inhibited protein rnethylase I, II, III and phospholipid methyltransferase activities. 6) The purified inhibitor inhibited noncompetitively protein methylase II from porcine liver, spleen, and testis. 7) The $K_{i}$ values for protein methylase II from porcine liver, spleen, and testis were 300nM, 250nM, 297nM, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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