Kim, Wan-Ki;Lee, Chae-Sung;Lee, Jeong-Yong;Hur, Sung-Bum
Journal of Aquaculture
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v.15
no.1
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pp.23-29
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2002
To develop techniques for the production of artificial seedling of Corbicula japonica, protocols for induction of spawning and larval development were developed. During the assumed spawning period of August to mid-September, attempts were first made to induce spawning by gonadal incision and UV-irradiation but all in vain. At the end of August, elevated thermal induction evoked 90 % positive response in animals maintained at $3\textperthousand$ salinity. Immersion in (1/1000~3/1000 N) ammonium hydroxide ($NH_4$OH) also induced spawning in 15~45%) of the treated animals at $3\textperthousand$ salinity. Fertilized eggs measured 86$\mum. At 23.0~24.5$^{\circ}C$, the fertilized egos developed into 4-cell stage embryos within 2 hours, trochophores 15 hours, D-shaped larvae 2 days, umbo 9 days and fully grown veligers, ready to infiltrate into the sediment, within 16 days.
To obtain the basic information on culture conditions for the larvae of Saxidomus purpuratus, experiments were conducted on the population from southern coast for (1) the success in fertilization and development from artificial fertilization among different months of a year, (2) the viability of sperms after exposure to seawater, (3) and the effects of temperature, salinity, and food organism on the survival and growth of larvae. Gametes obtained from dissection showed high rate of fertilization at all months. But the rate of development was higher only May-July. Developmental success seemed to be related with the quality of eggs at the time of fertilization. Developmental times for 2-cell, 4-cell, 8-cell, blastula, trochophore larva, and veliger larva at 20$^{\circ}C$ were 1.5, 2, 4, 18, 24, and 32 hr, respectively. Sperms could survive for more than 8 hr, however, actively swimming sperms could be found within 1 hr after exposure to seawater. It is recommended that sperms should be used for fertilization as soon as possible when they are exposed to seawater. At temperature of 35$^{\circ}C$, all the larvae died during 48 hr. Larval survival decreased when salinity was either lower than 20 psu or higher than 40 psu, and was 0% when salinity was 10 psu. Optimal range of temperature and salinity for rearing larvae of S. purpuratus were 20-25$^{\circ}C$ and 20-40 psu, respectively. Larvae grew from 111.5 to 235.3 ${\mu}$m during 21 days. Larvae fed mixed diets grew faster than unialgal diets. The fastest growth was observed when larvae were fed on the mixture of Isochrysis galbana and Nannochloris oculata.
In the present study, we monitored the early development of Saccostrea kegakia subtropical oyster species distributing on rocky intertidal off the northern Jeju Island using scanning electron microscope (SEM). The female oyster collected in early August, 2012 were fully mature exhibiting relatively small eggs ($46.5{\pm}1.4{\mu}m$ in diameter) in the gonad, while testis of the mature male oysters were filled with fully developed sperms of 36.9 ${\mu}m$ in length. The fertilized eggs developed into 2-cell stage with polar body after 1 hr 20 min of fertilization, then followed by Morula stage (3 hr 20 min), Blastula stage (4 hr 50 min), Gastrula stage (7 hr), and trochophore larvae stage (9 hr 30 min). The observed early development of S. kegaki in this study was similar the early development of other oysters, although size of the fertilized eggs were somewhat smaller.
In this study, we invesgated a cytogenetic analysis of the Pacific triploid abalone, Haliotis discus hannai induced by low temperature treatment. We got a lot of mitotic metaphase chromosome spreads from the triploid and diploid Pacific abalones' hatched larvae (trochophores). The chromosome number of diploid abalone was 2n = 36 and that of triploid abalone was 3n = 54, so the chromosome number of triploid abalone was 1.5 times higher than that of diploid abalone. We developed a modified flow cytometric method for Pacific abalone from the existing methods. We uesd 51 months aged triploid and diploid Pacific abalones' hemolymph to get the DNA contents by flow cytometry. The DNA content of diploid abalone was 1.743 pg/cell and the DNA content of triploid abalone was 1.49 times higher than that of diploid one. It proved that triploid abalone was consisted with two sets of maternal diploid and one set of paternal genome.
Experiments were carried out to evaluate the tolerance of trochophores for pearl oyster, Pinctada fucata martensii and Pacific oyster, Crassostrea gigas using different concentrations of cryoprotectants : dimethyl sulfoxide (DMSO), ethylene glycol, glycerol and 1,2-propanediol. Each cryoprotectant with different concentrations was exposed for 5, 10, 15 and 20 minutes of immersion time. Survival rates were increased with decreased concentrations of cryoprotectant and decreased immersion time, and these differed from types of cryoprotectant. Survival rates of Pacific oyster trochophores were higher in DMSO and ethylene glycol, while those of pearl oyster trochophores were higher in glycerol and 1,2-propanediol. In case of trochophores from Pacific oyster, when 0.2 M sucrose was added in each cryoprotectant the survival rates were increased significantly.
Journal of Practical Agriculture & Fisheries Research
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v.13
no.1
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pp.131-136
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2011
For the establishment of seed production technique of warm water abalone species Haliotis sieboldii, development of the fertilized eggs and its biological minimum temperature were determined. The durations of each development stages at the six rearing temperature regimes were expressed as an exponential equation: 4 celled stage 1/h = 0.1346T - 2.1709(r2 = 0.88) Morula stage 1/h = 0.0176T - 0.2184 (r2 = 0.89) Trochophore 1/h = 0.0063T - 0.0512 (r2 = 0.98) Veliger 1/h = 0.0045T - 0.0295 (r2 = 0.99) 2nd c.t. 1/h = 0.0008T - 0.0047 (r2 = 0.99) According to the equation, the biological minimum temperature for Haliotis sieboldii was estimated to be 9.7 ℃.
Kim, Young Dae;Lee, Chu;Min, Byung Hwa;Kim, MeeKyung;Kim, Gi Seung;Choi, Jae-Suk;An, Won Gun;Nam, Myung-Mo
The Korean Journal of Malacology
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v.30
no.4
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pp.311-319
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2014
Early sexual maturation through temperature stimulation was induced in female and male of yezo scallop. Gonadosomatic index (GSI) in female showed $9.12{\pm}2.9$ in January, $14.89{\pm}2.9$ in February and $21.3{\pm}1.4$ in March in experiment I. GSI in experiment I showed a significant increase (P < 0.05) and in experiments II and III were not show significant variations (P > 0.05). It also showed significant between the control and the experiments I, II, and III in February (P < 0.05) measurements. Experiment I has showed good results in sexual maturation and spawning when compared with other experiments II and III and the control. Histological observation showed that ovary condition was in a growing stage in all the experiments I, II, and III. In February, ovary condition through histological observation was a late mature stage in all the experiments I, II, and III except the control of a growing stage. GSI and gonad weight were $4.4{\pm}0.88$ and 2.8 g, respectively in November whereas it was $15.1{\pm}2.8$, and 11.7 g, respectively in January and $21.7{\pm}5.4$, and 19.4 g, respectively in February after rearing at a water bath of $12^{\circ}C$ depending on the condition of experiment I. It was possible early releasing of eggs and sperms of yezo scallop in February instead of the middle of April to the end of May being spawning period. Fertilized eggs have become a gastrula stage through a spiral cleavage and then become a trochophore larvae after 36 hours. After 10 days, D-shaped larvae have changed into an umbo stage larvae and attached to juveniles in the post larvae after 20-23 days.
Relative growth and composition of larval development stages in brood pouch of the melania snail, Semisulcospira libertina libertina were investigated based on monthly field samples for a year. Total number of specimens examined was 1,200. Size values (mean$\pm$S. D.) of shell height (SH), shell diameter (SD), total weight (TW), meat weight (MW) and shell weight (SW) were $15.96\pm3.41\;mm$, $7.82\pm1.38\;mm$, $0.55\pm0.31\;g$, $0.24\pm0.15\;g$ and $0.39\pm0.23\;g$, respectively, Water temperature (WT) of the sampling site varied from $1.3^{\circ}C\;to\;22.5^{\circ}C$. Relative growth equations among SH, SD, TW, MW and SW of S. libertina libertina specimens pooled were as follows: SD=0,3583SH+2.1648 $(R^2=0.8391)$, $TW=0.0005SH^{2.4853}\;(R^2=0.8391)$,$MW:\;0.0005SH^{2.849}\;(R^2= 0.8391)$ and $SW=0.0004SH^{2.3798}\;(R^2=0.7057)$. Female S. libertina libertina had larvae in its brood pouch throughout the year, Average number of larvae in the brood pouch varied from $91\pm33(July)$ to $396\pm174\;(November)$, decreasing in spring and increasing in autumn. In the monthly composition of larval stage in the brood pouch, trochophore, pre-veliger, veliger and juvenile showed maximum as $66.7\%$ in May, $70.7\%$ in November, $60.9\%$ in February and $13.9\%$ in January, respectively. Percent composition of the juveniles decreased in spring and autumn. In conclusion, S. libertina libertina is likely to have two main parturition periods, March to May and September and October.
CHANG Young Jin;CHOI Youn Hee;CHANG Yun Jeong;CHOI Seok Won
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.33
no.6
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pp.559-564
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2000
We studied to find out the effect of water temperature on the egg development of pearl oyster, Pincata fucata martensii and Pacific oyster, Crassostrea gigas. The optimum water temperatures for egg development were $20{\~}25^{\circ}C$ in P. fucata martensii and $15{\~}25^{\circ}C$ in C. gigas. The required time from fertilization to D-shaped lana was $41.7\;hours\;at\;20^{\circ}C$ and 27.5 hours at $25^{\circ}C$ in P. fucata martensii, and 35.3 hours at $15^{\circ}C$, 26.3 hours at $20^{\circ}C$ and 17.6 hours at$ 25^{\circ}C$ in C. gigas, respectively. The relationships between the water temperature ($WT:^{\circ}C$) and the required time (h: hour) from fertilization to each developmental stage were given as follows; P. fucata martensii Up to 8-cell $$1/h=0.0463WT-0.6945 (r^2=0.9702)$$ Up to morula $$1/h=0.0196WT-0.2184 (r^2=0.8118)$$ Up to trochophore $$1/h=0.0076WT-0.0802 (r^2=0.8756)$$ Up to D-shaped larva $$1/h=0.0031WT-0.0380 (r^2=0.9075)$$ C. gigas Up to 8-cell $$1/h=0.0210WT-0.1123 (r^2=0.9862)$$ Up to morula $$1/h=0.0143WT-0.1077 (r^2=0.9833)$$ Up to trochophore $$1/h=0.0052WT-0.0218 (r^2=0.9857)$$ Up to D-shaped lawn $$1/h=0.0029WT-0.0170 (r^2=0.9689)$$ Biological minimum temperature for egg development of P. fucata martensii and C. gigas was calculated as $$12.3^{\circ}C and 5.7{\circ}C$$, respectively.
The spawning of the abalone, Haliotis discus hannai, was induced In October 1969 by air ex-position for about 30 minutes. At temperatures of from 14.0 to $18.8^{\circ}C$, the youngest trochophore stage was reached within 22 hours after the egg was laid. The trochophore was transformed into the veliger stage within 34 hours after fertilization. For $7\~9$ days after oviposition the veliger floated in sea water and then settled to the bottom. The peristomal shell was secreted along the outer lip of the aperture of the larval shell, and the first respiratory pore appears at about 110 days after fertilization. The shell attained a length of 0.40 mm in 15 days, 1.39 mm in 49 days, 2.14 mm in 110 days, 5.20 mm in 170 days and 10.00 mm in 228 days respectively. Monthly growth rate of the shell length is expressed by the following equation :$L=0.9981\;e^{0.18659M}$ where L is shell length and M is time in month. The density of floating larvae in the culture tank was about 10 larvae per 100 co. The number of larvae attached to a polyethylene collector ($30\times20\;cm$) ranged from 10 to 600. Mortality of the settled larvae on the polyethylene collector was about $87.0\%$ during 170 days following settlement. The culture of Nauicula sp. was made with rough polyethylene collectors hung at three different depths, namely 5 cm, 45 cm and 85 cm. At each depth the highest cell concentration appeared after $15\~17$ days, and the numbers of cells are shown as follows: $$5\;cm\;34.3\times10^4\;Cells/cm^2$$$$45\;cm\;27.2\times10^4\;Cells/cm^2$$$$85\;cm\;26.3\times10^4\;Cells/cm^2$$ At temperatures of from 13.0 to $14.3^{\circ}C$, the distance travelled by the larvae (3.0 mm In shell length) averaged 11.36 mm for a Period of 30 days. Their locomation was relatively active between 6 p.m. and 9 p.m., and $52.2\%$ of them moved during this period. When the larvae (2.0 mm in shell length) were kept in water at $0\;to\;\~1.8^{\circ}C$, they moved 1.15cm between 4 p.m. and 8 p.m. and 0.10 cm between midnight and 8 a.m. The relationships between shell length and body weight of the abalone sampled from three different localities are shown as follows: Dolsan-do $W=0.2479\;L^{2.5721}$ Huksan-do $W=0.1001\;L^{3.1021}$ Pohang $W=0.9632\;L^{2.0611}$
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[게시일 2004년 10월 1일]
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