Intestinal absorption of dietary taurine is one of the regulatory component maintaining taurine homeostasis along with renal reabsorption, bile acid conjugation and secretion, and de nobo synthesis of taurine in mammals. Recent observations of decreased enterocytic levels of taurine in response to trauma, infection and surgical insults, postulate the possibility that intestinal taurine absorption might be impaired in such stressed conditions. The aim of the present study was to evaluate changes in enterocytic taurine transporter activity using the human intestinal colon carcinoma cell line, HT-29, in various stress-induced conditions. Pretreatment of the HT-29 cells with dexamethasone, a stress hormone(0.1,1,10 or 100$\mu$M) for 3 hrs, or with E coli heat-stable enterotoxin(10, 100, or 200nM) for 30 minutes in order to induce the condition of enterotoxigenic infection did not influence taurine uptake as compared to the value found in control cells. In contrast, pretreatment of the cells with cholera toxin(10, 100, 500, or 1000ng/ml)for 3hr or 24hr significantly decreased taurine uptake by HT-29 cells to 40~50% of the value found in untreated control cells. Kinetic studies of the taurine transporter activity were conducted in control and cholera toxin treated HT-29 cells with varying taurine concentrations(2~60$\mu$M) in the uptake medium. Pretreatment of the cells with cholera toxin(100ng/ml) for 3hr did not influence the Vmax, but resulted in a 55% increase in the Michaelis-Menten constant(Km) of the taurine transporter compared to those in control cells. These results suggest that cholera toxin-induced reduction in taurine transporter activity in HT-29 cells is associated with decreased affinity of the taurine transporter without altering the amount of transporter protein. Intestinal taurine absorption appears to be reduced in the condition of water-borne diseases caused by bacteria such as V. cholerae. This might influence the taurine status of infants and young children more readily, an age group in which the prevalence of intestinal infection is high and the role of intestinal absorption is crucial for maintaining the body taurine pool. (Korean J Nutrition 34(2) : 150-157, 2001)
Park, Jiyeon;Choi, Heeju;Lee, Hyejin;Ahn, Jung Hoon
Journal of Life Science
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v.30
no.5
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pp.420-427
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2020
A repebody, an artificial non-immunoglobulin protein scaffold, is expected to be a solution in the search for faster, cheaper, and customizable antibodies. However, the production of medical repebodies remains difficult due to their low yield and the complex purification processes required. The Pseudomonas fluorescens ABC transporter system has been suggested as an efficient and cost-effective method for repebody production, but the total yield is low because of the secreted protein's positive charge; thus, a repebody with a high isoelectric point needs to be changed into a more negatively charged protein for better secretion. To achieve this, we first attached oligo-aspartic acids to the N- and C-terminals of the repebody, but secretion efficiency was not enhanced significantly. Subsequently, we devised an alternative method for improved secretion efficiency by engineering fifteen positively charged amino acids to aspartic acid in the non-antigen binding sites of the repebody to give a high net negative charge. As a result, secretion efficiency was greatly enhanced from 21.2% (wildtype) to 58.5% (negatively supercharged). The negatively supercharged repebody was succussfully produced extracellularly by ABC transporter secretion system in P. fluorescens.
Kim, Yeon-Jo;Kim, Ji-Eun;Choi, Hui-Chul;Song, Hong-Ki;Kang, Tae-Cheon
BMB Reports
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v.48
no.6
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pp.348-353
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2015
In the present study, we investigated the characteristics of drug efflux transporter expressions following status epilepticus (SE). In the hippocampus and piriform cortex (PC), vasogenic edema peaked 3-4 days after SE. The expression of breast cancer resistance protein (BCRP), multidrug resistance protein-4 (MRP4), and p-glycoprotein (p-GP) were decreased 4 days after SE when vasogenic edema was peaked, but subsequently increased 4 weeks after SE. Multidrug resistance protein-1 (MRP1) expression gradually decreased in endothelial cells until 4 weeks after SE. These findings indicate that SE-induced vasogenic edema formation transiently reduced drug efflux pump expressions in endothelial cells. Subsequently, during recovery of vasogenic edema drug efflux pump expressions were differentially upregulated in astrocytes, neuropils, and endothelial cells. Therefore, we suggest that vasogenic edema formation may be a risk factor in pharmacoresistent epilepsy. [BMB Reports 2015; 48(6): 348-353]
The baculovirus/insect cell expression system is of great value in the study of structure-function relationships in mammalian glucose-transport proteins by site-directed mutagenesis and for the large-scale production of these proteins for mechanistic and biochemical studies. In order to exploit this, the effects of substitution at the highly conserved residue glutamine 282 of the human erythrocyte-type glucose transporter have been examined by in vitro site-directed mutagenesis. The modified human transport protein has been expressed in Spodoptera frugiperda 21 cells by using the recombinant baculovirus AcNPV-GTL. To assess the functional integrity of the expressed transporter, measurements of the transport inhibitor cytochalasin B binding were performed, involving the membranes prepared from 4 days post infection with no virus, with wild-type virus or AcNPV-GTL virus. Data obtained showed that there was little or no D-glucose-inhibitable binding in cells infected with the wild type or no virus. Only the recombinant virus infected cells exhibited specific binding, which is inhibitable by D- but not by L-glucose. However, there was a notable reduction in the affinity for the potent inhibitor cytochalasin B when binding measurements of AcNPV-GTL were compared with those of AcNPV-GT, which has no substitution. It is thus suggested that although the modified and unmodified human transporters differed slightly in their affinity for cytochalasin B, the glutamine substitution did not interfere the heterologous expression of the human transporter in the insect cells.
Recent studies have indicated a link between levels of cyclooxygenase-2 (COX-2) and development of the multidrug resistance (MDR) phenotype. The ATP-binding cassette sub-family G member 2 (ABCG2) is a major MDR-related transporter protein that is frequently overexpressed in cancer patients. In this study, we aimed to evaluate any positive correlation between COX-2 and ABCG2 gene expression using the COX-2 inducer 12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate (TPA) in human breast cancer cell lines. ABCG2 mRNA and protein expression was studied using real-time RT-PCR and flow cytometry, respectively. A significant increase of COX-2 mRNA expression (up to 11-fold by 4 h) was induced by TPA in MDA-MB-231 cells, this induction effect being lower in MCF-7 cells. TPA caused a considerable increase up to 9-fold in ABCG2 mRNA expression in parental MCF-7 cells, while it caused a small enhancement in ABCG2 expression up to 67 % by 4 h followed by a time-dependent decrease in ABCG2 mRNA expression in MDA-MB-231 cells. TPA treatment resulted in a slight increase of ABCG2 protein expression in MCF-7 cells, while a time-dependent decrease in ABCG2 protein expression was occurred in MDA-MB-231 cells. In conclusion, based on the observed effects of TPA in MDA-Mb-231 cells, it is proposed that TPA up-regulates ABCG2 expression in the drug sensitive MCF-7 breast cancer cell line through COX-2 unrelated pathways.
The baculovirus/Spodoptera frugiperda (Sf) cell system has become popular for the production of large amounts of the human erythrocyte glucose transporter, GLUT1, heterologously. However, it was not possible to show that the expressed transporter in insect cells could actually transport glucose. The possible reason for this was that the activity of the endogenous insect glucose transporter was extremely high and so rendered transport activity resulting from the expression of exogenous transporter very difficult to detect. Sf21-AE cells are commonly employed as the host permissive cell line to support the baculovirus AcNPV replication and protein synthesis. The cells grow well on TC-100 medium that contains 0.1 % D-glucose as the major carbon source, strongly suggesting the presence of endogenous glucose transporters. However, unlike the human glucose transporter, very little is known about properties of the endogenous sugar transporter(s) in insect cells. Thus, the uptake of 2-deoxy-D-glucose (2dGlc) by Sf21-AE cells and the inhibition of 2dGlc transport in the insect cells by fructose and cytochalasin B were investigated in the present work. The binding assay of cytochalasin B was also performed, which could be used as a functional assay for the endogenous glucose transporter(s) in the insect cells. Sf21-AE cells were infected with the recombinant virus AcNPV-GT or no virus, at a multiplicity of infection (MOI) of 5. Infected cells were resuspended in PBS plus and minus 300 mM fructose, and plus and minus 20 $\mu$M cytochalasin B for use in transport assays. Uptake was measured at 28$^{\circ}C$ for 1 min, with final concentration of 1 mM deoxy-D-glucose, 2-[1,2-$^3$H]- or glucose, L-[l,$^3$H]-, used at a specific radioactivity of 4 Ci/mol. The results obtained demonstrated that the sugar uptake in uninfected cells was stereospecific, and was strongly inhibited by fructose but only poorly inhibitable by cytochalasin B. It is therefore suggested that the Sf21-AE glucose transporter has very low affinity for cytochalasin B, a potent inhibitor of human erythrocyte glucose transporter.
In order to confirm the biological function of ORF10 in cephabacin biosynthesis gene cluster of Lysobacter lactamgenus as an ATP-binding-cassette (ABC) transporter, the gene for ORF10 was amplified and subcloned into pET-28a(+) expression vector. After gene induction with 0.5 mM IPTG at 30~! and further cultivation at $30^~$ !. for 8 hr, a lot of the recombinant ORF10 protein was produced as soluble form in cytoplasmic fraction as well as a membrane protein in the membrane fraction as likely as other ABC transporters. (omitted)
In order to clone the peptide synthetase gene form Lysobacter lactamgenus IFO 14,288, the gene fragments were amplified using primers for the adenylation domain and the thionylation domain of the peptide synthetase genes in other organisms by polymerase chain reaction (PCR). The resulting 0.5-kb fragment was cloned in a pGEM-T vector, and the nucleotide sequences were determined. Six different PCR products were obtained; three were identified to be a part of L-$\alpha$-aminoadipyl-L-cysteinyl-D-valine (ACV) synthetase and three to be other peptide synthetases. Using each of the two different classes of PCR products as mixed probes, a cosmid library of L. lactamgenus chromosomal DNA constructed in a pHC79 vector was screened by an in situ hybridization procedure, and one positive clone was selected which was bound by peptide synthetase gene fragments as well as ACV synthetase gene fragments. The partial sequence analysis formt he obtained pPTS-5 cosmid showed th presence of more than two open reading frames. These were for two putative membrane transporters, which were homologous with several integral membrane proteins including the ABC transporter ATP-binding protein of E. coli (YbjZ) and the metal ion uptake protein of Bacillus subtilis (YvrN). A 45% homology was also found between the two transporter proteins at the carboxy terminus. Through a hydropathy analysis and transmembrane analysis. 4-5 transmembrane domains were found in these two proteins. When the genes were expressed in Escherichia coli, the gene products inhibited the hose cell growth, probably due to the disturbance of the membrane transport system.
In order to develop procedures for the rapid isolation of recombinant sugar transporter in functional form from away from the endogenous insect cell transporter, gene fusion techniques were exploited. Briefly, BamH1-digested human HepG2 type glucose transport protein cDNA was first cloned into a transfer vector pBlueBacHis, containing a tract of six histidine residues. Recombinant baculoviruses including the human cDNA were then generated by allelic exchange following transfection of insect cells with wild-type BaculoGold virus DNA and the recombinant transfer vector. Plaque assay was then performed to obtain and purify recombinant viruses expressing the human transport protein. All the cell samples that had been infected with viruses from the several blue plaques exhibited a positive reaction in the immnuassay, demonstrating expression of the glucose transport protein. In contrast, no color development in the immunoassay was observed for cells infected with the wild-type virus or no virus. Immunoblot analysis showed that a major immunoreactive band of apparent Mr 43,000~44,000 was evident in the lysate from cells infected with the recombinant baculovirus. Following expression of the recombinant fusion protein with the metal-binding domain and enterokinase cleavage site, the fusion protein was recovered by competition with imidizole using immobilized metal charged resin. The leader peptide was then removed from the fusion protein by cleavage with porcine enterokinase. Final separation of the recombinant protein of the interest was achieved by passage over $Ni^{2+}$-charged resin under binding conditions. The expressed transport protein bound cytochalasin B and demonstrated a functional similarity to its human counterpart.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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