The efficiency of transgenic livestock animal production may be improved by early selection of transgenci preimplantation embryos. To examine the possibility of GFP gene as a non-invasive marker for the early screening of transgenic embryo, the GFP gene was microinjected into rabbit zygotes and the later stages of preimplantation embryos were examined for the expression of GFP. The presence of injected DNA was detected by PCR analysis and the expression of GFP was detected by observing green fluorescence in embryos under a fluorescent microscope. Out of 108 GFP gene-injected rabbit zygotes, seventy three(67.6%) were fluorescence-positive. When 11 fluroresecence-positive blastocysts were analyzed for the presence of GFP gene by PCR, 6(54.5%) were positive, and all of the 8 flrouescence-negative blastocysts were also negative by PCR. The results indicate that the screening of transgene in rabbit embryos by PCR analysis and GFP detection could be a promising method for the preselection of transgenic embryos.
Cloning technology continues to capture widespread attention by the international news media and biomedical and agricultural industries. The future uses of this technology could potentially contribute to major advances in biomedical and agricultural sciences. Cloned transgenic dairy cattle possessing milk promoters directing transgenes will produce pharmaceutical proteins in their milk faster, more efficiently and less expensively than transgenic cattle created using microinjection techniques. Additionally, cloned transgenic fetuses and animals may become a source of cells, tissue and organs for xenotransplantation. Lastly, but maybe most importantly, enhanced production traits and disease resistance may be realized in animal agriculture by utilizing these new technologies. The recent advances in the cattle cloning technology are important but there are still major obstacles preventing widespread commercial use of this technology. The type of donor nucleus, recipient cytoplasm, and cloning procedures used will impact the potential number of clones produced and the uses of the technology. In addition, the new advances in cloning methodology have not improved the relatively low pregnancy rates or reduced the incidence of health problems observed in cloned offspring. These problems may require novel techniques to decipher their cause and new methods of preventing and/or diagnosing them in the preimplantation embryo. The commercial potential is enormous for cloning technology; however, little has been done to improve the efficiencies of the procedure. Improving procedural efficiencies is a critical developmental milestone especially for potential uses of cloning technology in animal agriculture.
Comparative maps, representing chromosomal locations of homologous genes in different species, are useful sources of information for identifying candidate disease genes and genes determining complex traits. They facilitate gene mapping and linkage prediction in other species, and provide information on genome organization and evolution. Here, the current gene mapping and comparative mapping status of the major livestock species are presented. Two techniques were widely used in comparative mapping: FISH (Fluorescence In Situ Hybridization) and PCR-based mapping using somatic cell hybrid (SCH) or radiation hybrid (RH) panels. New techniques, using, for example, ESTs (Expressed Sequence Tags) or CASTS (Comparatively Anchored Sequence Tagged Sites), also have been developed as useful tools for analyzing comparative genome organization in livestock species, further enabling accurate transfer of valuable information from one species to another.
Exogeneous DNA can reproducibly be delivered by co-injected spermatozoa and this transgenesis method is very efficient protocol. But, mosaic patterns of transgenic embryos and offspring were shown frequently. Whole blastomere integration is important in transgenic animal economics. (omitted)
Primordial germ cells (PGCs) in aves are the progenitor cells for the gametes. These cells first appear in the epiblast (Eyal-Giladi et al.. 1981). Then translocate and concentrate to endoderm of germinal crescent area in the junction of the area opaca and area pellucida lateral to the primitive streak in stage 4 through 7. They separate from the endoderm, temporarily circulate via the blood vascular system, leave the blood vessels, and finally settle down in the gonadal anlagen at stage 20-24 where they rapidly proliferate to form germ cells. Recently, several attempts have been made to introduce foreign gene into the avian genome to form a transgenic chicken. The stem cells most readily available as vehicles for genetic manipulation of germline in avian species are the PGCs. PGCs have recently been manipulated genetically and used successfully as a vector for gene transfer.
Animal experiments need numerous kinds of animal which are suitable for every research. About 300 mouse strains are developed up to the present, but they do not give satisfaction to every researchers. So we must build up the methods of breading animals which are newly developed and of maintenance of characteristics which were developed before. To maintain experimental animal is not only proceeding the generation but also increasing the animal populations, it needs geneticai control. Genetic factors which influence to reproduction are very important to maintain colony. These factors include lethal gene, chromosomal abberation, sterility gene, etc.. With the recent development of transgenic technology, scientists now can deliberately creat numerous specific animal models. To know how to manage the colony which has genetic defect on reproduction and transgenic mice is one of the key to study in vitro fertilization.
Transgenic animals are produced primarily by microinjecting exogenous DNA into the male pronuclei of a zygote. Microinjection method for gene transmitting is successful in mice but not efficient in farm animals, limiting it's general utility such as a large scale facility and labour. Based on our finding that sperm cells bind with exogenous DNA, sperm was used as a vector for producing transgenic animals to introduced green fluorescence protein(GFP) gene. (omitted)
We compared the composition of phospholipid fatty acids (PLFA) to assess the microbial community structure in the soil and rhizosphere community of non-transgenic watermelons and transgenic watermelons in Miryang farmlands in Korea during the spring and summer of 2005. The PLFA data were seasonally examined for the number of PLFA to determine whether there is any difference in the microbial community in soils from two types of watermelons, non-transgenic and transgenic. We identified 78 PLFAs from the rhizosphere samples of the two types of watermelons. We found eight different PLFAs for the type of plants and sixteen PLFAs for the interaction of plant type and season. The PLFA data were analyzed by analysis of variance separated by plant type (P<0.0085), season (P<0.0154), and the plant type${\times}$season interaction (P<0.1595). Non-parametric multidimensional scaling (NMS showed a small apparent difference but multi-response permutation procedures (MRPP) confirmed that there was no difference in microbial community structure for soils of both plant types. Conclusively, there was no significant adverse effect of transgenic watermelon on bacterial and fungal relative abundance as measured by PLFA. We could reject our hypothesis that there might be an adverse effect from transgenic watermelon with our statistical results. Therefore, we can suggest the use of this PLFA methodology to examine the adverse effects of transgenic plants on the soil microbial community.
Transgenic animals production tools have been valuable for research and purpose. The current methods of gene transfer, microinjection and nuclear transfer, which are widely used in transgenic animal production, but all most methods has only had limited success in production of larger species. Here, we report the possibility of a sperm-mediated gene transfer method in porcine embryos. Oocytes were collected from ovaries harvested at a local slaughterhouse were matured in 500${mu}ell$ drops of TCM-199 under mineral oil at 38.5$^{\circ}C$ in a humidified atmosphere of 5%CO2 in air. After 42-43h of in vitro maturation oocytes were denuded. for sperm injection into the cytoplasm of the porcine oocytes, sperm suspension in NIM medium are subjected extraction with TritonX-100 before mixing with a green fluorescent gene (GFP). Sperm with Tritonx-100 were prepared by adding TritonX-100 to a final volume of 0.05% in the sperm suspension and mixing by trituration for 60s before two wishes in NIM medium at 2$^{\circ}C$. A(ter wishing, sperm were mixed with TritonX-100 at $25^{\circ}C$ followed by washes at 2$^{\circ}C$. Sperm were resuspended in ice cold NIM to a final volume of 400${mu}ell$ and 2-20ng/${mu}ell$ DNA were triturated on ice for 60s. All microinjection was performed in HEPES-buffered CZB medium at room temperature within 2h. After culture in NCSU-23 for 72h, percent of porcine embryos transfected GFP gene are 20.7%(6/29) in 20ng/${mu}ell$ sperm-DNA mixed group and other groups were 3.7 %(2/54)and 4.7%(3/67). These data suggests that sperm-mediated gene transfer method should be used to the production tool of transgenic pig efficiently.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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