다양한 분자량을 가진 저분자량 수용성 키토산을 얻기 위해 젖산염이 결합되어 있는 키토산 올리고당을 한외여과막 장치를 이용하여 분리하였고, 새로운 염 제거법으로 유리 아민기를 가진 LMWSC를 제조하였다. 젖산염이 제거된 LMWSC의 특성과 탈아세틸화도가 적외선 분광기(Infrared spectroscopy, IR) 및 핵자기공명장치($^1H-Nuclear$ Magnetic Resonance, $^1H-NMR$)에 의해 확인되었다. 분자량을 나타내는 다분산지수(PDI)는 $1.278{\sim}1.499$로 비교적 좁은 분자량분포를 나타내었다. 유전자 전달체로서의 가능성을 확인하기 위하여, 성공적으로 분자량에 따라 분리된 키토산 올리고당과 염이 제거된 LMWSC의 유전자 전이효율이 293T cell을 이용하여 확인하였다. 또한 유전자 전이효율을 향상시키기 위해 제조된 LMWSC 유도체가 Balb/C mice를 이용하여 평가되었다.
본 연구에서는 folic acid(FA)가 복합화된 저분자량 수용성 키토산(LMWSC) 나노입자(water soluble chitosan-folic acid nanoparticle, WSCFA)를 제조하고, 또한 DNA와 나노복합체 합성 및 특성을 분석함으로써 in vitro에서 세포내 독성을 평가하였다. WSCFA 합성을 확인하기 위하여 분광학적 분석 방법을 사용하여 분석하였으며, WSCFA 나노입자는 110 nm 이하의 입자 크기인 구형의 형태를 가지고 있음을 알 수 있었다. In vitro 세포내 독성 실험에서, WSCFA-DNA 복합체는 세포내 독성을 전혀 나타내지 않음으로 높은 세포 생존율을 보여주었다. 전기영동 실험을 통해 WSCFA의 DNA 응축능력을 확인하였고, in vitro에서의 전이효율은 형광 광도계에 의해 평가하였다.
The random insertion of useful gene in genome has been a common method to produce transgenic animals. This method is inefficient for induction of high levels gene expression in transgenic animals. To improve this limit, we tried to develop the system which target the gene at the specific genomic region. Thus, in our experiment, the vector system to target the human thrombopoietin (TPO) gene was developed. Targeting vector including TPO, neo and DT genes was transfrcted into bovine embryonic fibroblasts (bEF) or bovine ear skin fibroblasts (bESF). First of all, we determined concentration of the geneticin (G418) for selection of transfected cell lines. Our results showed that 1200 and 900 $\mu\textrm{g}$/ml of G418 were the most proper for selection of transfscted bEF and bESF cells. In this study, lipofectamine was used as a transfection reagent. Thus, the proper ratio of DNA:lipofectamine for transfection was also required to elevate targeting efficiency in primary mammalian cells. Our result indicates that the most proper ratios of DNA:lipofectamine were 4:2 and 1:2 in bEF and bESF cells. According to the optimized these conditions, single colonies were picked following transfection and were analyzed by PCR. More than 90% of the single colonies have TPO gene. However, there were no colonies with targeted TPO at the specific genomic region. Therefore, further experiments to select the specifically targeted colonies and to find more efficient methods such as reducing selection time and shortening a size of TPO gene are required.
We synthesized a novel cationic dendrimer consisting of a poly(amidoamine) dendrimer (PAMAM, generation 4) backbone with both L-arginine (Arg) at the termini and 6-aminohexanoic acid (Ahx) between the original core polymer and the peripheral Arg units. The sequential chemical modification of PAMAM G4 with Ahx and Arg resulted in higher transfection efficiency with much less cytotoxicity. PAMAM G4-Ahx-Arg formed stable polyplexes at weight ratios of 8:1 or higher (polymer: plasmid DNA), and the mean polyplex diameter was $180{\pm}20nm$. PAMAM G4-Ahx-Arg showed much higher transfection ability than PAMAM G4 or PAMAM G4-Ahx. Furthermore, PAMAM G4-Ahx-Arg was much less cytotoxic than PEI25KD and PAMAM G4-Arg. In addition to Arg grafting of the PAMAM dendrimer, which endows a higher transfection capability, the addition of Ahx spacer increased dendrimer hydrophobicity, introduced flexibility into the conjugated amino acids, and reduced cytotoxicity. Overall, it appears that the concomitant modification of PAMAM with Ahx and Arg could lead to new PAMAM conjugates with better performances.
Gene therapy has emerged as a new concept of therapeutic strategies to treat diseases which do not respond to the conventional therapies. The principle of gene therapy is to Introduce genetic materials into patient cells to produce therapeutic proteins in these cells. Gene therapy is now at the stage where a number of clinical trials have been carried out to patients with gene-deficiency disease or cancer. Genetic materials for gene therapy are generally composed of gene expression system and gene delivery system. For the clinical application of gene therapy in a way which conventional drugs are used, researches have been focused on the design of gene delivery system which can offer high transfection efficiency with minimal toxicity. Currently, viral delivery systems generally provide higher transfection efficiency compared with non-viral delivery systems while non-viral delivery systems are less toxic, less immunogenic and manufacturable in large scale compared with viral systems. Recently, novel strategies towards the design of new non-viral delivery system, combination of viral and non-viral delivery systems and targeted delivery system have been extensively studied. The continued effort in this area will lead us to develop gene medicine as "gene as a drug" in the near future.
Gene therapy is a method for the treatment of diseases with introducing the gene-engineered materials into a patient with gene-deficiency disease (e.g. cystic fibrosis) or cancer to produce a therapeutic protein in a patient's cells. Successful gene therapy requires establishing both gene expression systems and delivery systems. Viral and non-viral vectors have been used for gene delivery. Viral vectors have a high transfection efficiency, but are limited in relations to issues of safety, toxicity and immunogenecity. Non-viral vectors are easy to prepare and relatively safe. However, non-viral vectors have a low transfection efficiency. Cationic liposomes are the most available among non-viral vectors. Cationic liposomes have been used to transfect cells both in vitro and in vivo experiments. Besides, several formulations containing cationic lipid are being used in clinical trials in cases of cystic fibrosis or cancer. A crucial subject to the further development of gene delivery vectors will be a long-term gene expression with following characteristics; protecting and deliverying DNA efficiently, non-toxic and non-immunogenic, and easy to produce in large scale.
Objective: To investigate the effect of down-regulation of Sentrin/SUMO-specific protease 1 (SENP1) expression on the apoptosis of human Burkitt lymphoma cells (Daudi cells) and potential mechanisms. Methods: Short hairpin RNA (shRNA) targeting SENP1 was designed and synthesized and then cloned into a lentiviral vector. A lentiviral packaging plasmid was used to transfect Daudi cells (sh-SENP1-Daudi group). Daudi cells without transfection (Daudi group) and Daudi cells transfected with blank plasmid (sh-NC-Daudi group) served as control groups. Flow cytometry was performed to screen GFP positive cells and semiquantitative PCR and Western blot assays were employed to detect the inference efficiency. The morphology of cells was observed under a microscope before and after transfection. Fluorescence quantitative PCR and Western blot assays were conducted to measure the mRNA and protein expression of apoptosis related molecules (caspase-3, 8 and 9). After treatment with $COCl_2$ for 24 h, the mRNA and protein expression of hypoxia inducible factor -$1{\alpha}$ (HIF-$1{\alpha}$) was determined. Results: Sequencing showed the expression vectors of shRNA targeting SENP1 to be successfully constructed. Following screening of GFP positive cells by FCM, semiqualitative PCR showed the interference efficiency was $79.2{\pm}0.026%$. At 48 h after transfection, the Daudi cells became shrunken, had irregular edges and presented apoptotic bodies. Western blot assay revealed increase in expression of caspase-3, 8 and 9 with prolongation of transfection (P<0.05). Following hypoxia treatment, mRNA expression of HIF-$1{\alpha}$ remained unchanged in three groups (P>0.05) but the protein expression of HIF-$1{\alpha}$ markedly increased (P<0.05). However, in the sh-SENP1-Daudi group, the protein expression of HIF-$1{\alpha}$ remained unchanged Conclusion: SENP1-shRNA can efficiently inhibit SENP1 expression in Daudi cells. SENP1 inhibition may promote cell apoptosis. These findings suggest that SENP1 may serve as an important target in the gene therapy of Burkitts lymphoma.
Kim, Tae-Shin;Yang, Cao;Lee, Young-Seung;Park, Soo-Bong;Park, Chun-Keun;Lee, Dong-Seok
Reproductive and Developmental Biology
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제32권2호
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pp.81-87
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2008
Production of transgenic animals for studying specific gene has been limited due to a low efficiency, lack of skilled researchers and the need for expensive equipment. Currently, the boar spermatozoa as a vector to deliver exogenous DNA into the oocyte were used to improve the efficiency of transfection rate. In this study, we revealed that the optimal conditions for DNA uptake in spermatozoa by liposome were to 90 min of incubation, $17^{\circ}C$, $10^5$ spermatozoa, 4 ng/ml of exogenous DNA and 0.5% (v/v) liposome, without damage to fertility. In addition, the developmental rate to the blastocyst stage of embryo in control group was significantly higher than those embryos with exogenous DNA and liposome, whereas there were no significant differences in embryo development between the liposome and type of DNA. The transfection rates of embryo using treated spermatozoa with both liposome and circular DNA were higher than those using linear DNA. These findings raise the possibility thattreated spermatozoa with liposome/DNA complexes could be used in in vitro fertilization, and the exogenous DNA transferred into the oocytes. Taken together, we demonstrated that liposome a vector for the uptake of exogenous DNA in boar spermatozoa could improve the efficiency of sperm-mediated gene transfer in creating transgenic pig and the other domestic transgenic animals.
A practical approach was proposed to produce transgenic chimeric chickens using blastodermal cells (BCs). The chicken BCs were mechanically dissociated and transferred into the recipient eggs that had been exposed to 500 rads irradiation of$^{60}Co$ and windowed on the equatorial plane. Chimeric chickens were generated using two models: the crosses (MXL) from Black Minors (ii,EE,b/b) ♂${\times}$Barred Leghorns (ii,ee,B/-) ♀ as donors and White Leghorns (WL, II) as acceptors (Model 1), or the Black Heifengs (BH, ii,EE,bb) as donors and Hua-xing white (HW, II) as recipients (Model 2). The treated eggs were incubated in their original shells in normal conditions until hatching. Green fluorescent protein (GFP) gene was transferred into the BCs derived from MXL and BH via lipofectamine and the pEGFP-C1, and transfection efficiency into the BCs was examined under a fluorescent microscope. Potential transgenic chimeras were selected based on the proposed methods in this study. Using the fresh BCs, the best rate of phenotypic chimeras was 6.7% and 26.0% in model-1 groups, and model-2 groups, respectively. We also described the optimized conditions for transfection. Although 30% of the BCs transfected in vitro emitted green light under an inverted fluorescent microscope, no embryos injected with the transfected BCs expressed foreign GFP gene at 3-4 days.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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