Tolaasin is a peptide toxin produced by Pseudomonas tolaasii and causes a brown blotch disease forming brown, slightly sunken spots and blotches on the cultivated mushrooms. It is a lipodepsipeptide consisting of 18 amino acids and its molecular mass is 1,985 Da. It forms a pore in plasma membranes, resulting in the disruption of membranes of fungal, bacterial, plant, and animal cells as well as mushroom tissue. In order to measure the toxicity of tolaasin, erythrocytes of blood were used to evaluate the tolaasin-induced hemolysis. Hemolytic activity of tolaasin was measured by observing the absorbance change either at 420 nm, representing the release of hemoglobins from red blood cells(RBCs), or at 600 nm, representing the density of residual cells. The hemolytic activity of culture-extract of P. tolaasii increased at early-stationary phase of growth and was maximal at late stationary phase. The hemolytic activity of tolaasin appeared high in the RBCs of dog and rat. The RBCs of rabbit and hen were less susceptible to tolaasin. The effects of various cations were also measured. $Cd^{2+}$ and $La^{3+}$. as well as $Zn^{2+}$ appeared inhibitory to the tolaasin-induced hemolysis. The effects of various anions on tolaasin-induced hemolysis were measured and carbonate showed the greatest inhibition to the hemolysis. However, phosphate stimulated the tolaasin-induced hemolysis and no effects were observed by chloride and nitrate.
AL1-gene, necessary for the replication of the genome of a gemini virus TGMV, was inserted in the opposite direction to the promoter CaMV35S resulting in the construction of a plant transformation binary vector pAR35-2. The vector pAR35-2 contains the chimeric gene cassette involving the duplicated promoter CaMV35S, opposite direction of AL1-gene fusioned with hygromycin resistant gene, and the gene cassette of the neomycin phosphotransferase II gene. The plasmid was transferred to tobacco and tomato plants by leaf disk infection via Agrobacterium. The transgenic plants were selected and grown on the MS-agar medium containing kanamycin and hygromycin. The shoots induced from the calli were regenerated to the whole transgenic plants. The antisense AL1-gene was detected in the genomic DNA isolated from the leaves by using the PCR mediated Southern blot analysis. The expression of the antisense AL1-gene was also observed using the RT-PCR mediated Southern blot analysis. The observation of chloroplasts in guard cell pair indicated that the transgenic tomato plants were diploid.
This study was carried out to investigate activity difference in the superoxide dismutase (SOD) and peroxidase (POD) of tomato callus transformed with Agrobacterium containing the GUS gene. Than those of other two tomato cultivars, the hypocotyl explant of JA101 was shown to have higher POD and SOD specific activity of 23 unit/mg protein and 2,156 unit/mg protein, respectively. Relatively high frequency of callus formation was obtained from the hypocotyl explant on MS medium containing 1 mg/L 2,4-D for 30 days and its POD(47 unit/mg protein) and SOD (95,786 unit/mg protein) specific activities were higher than other 2,4-D concentration. The hypocotyl explant and callus cocultivated with Agrobacterium for 72 hours were transferred to MS medium supplemented with 1 mg/L 2,4-D, 30 mg/L kanamycin, 30 g/L sucrose and 4 g/L Gelrite. The hypocotyl explants transferred to the medium formed callus with 45.5% effeciency after 8 weeks. The transformation efficiency confirmed by GUS assay was 21.6%. POD specific activity of the transformed callus (54 unit/mg protein) were somewhat lower than the non-transformed callus (64 unit/mgg protein) and SOD specific activity of the transformed callus (30,300 unit/mg protein) were also lower than the non-transformed callus (37,077 unit/mg protein). However there was no significant difference in POD and SOD isozyme patterns between the transformed and the non-transformed calluses. From these results, it revealed that there was no difference of antioxidant enzyme activities between the transformed callus and the non-transformed callus in tomato.
Disbudded epicotyl cuttings from light-grown 6-day-old seedings of Vigna angularis Owhi et Ohashi were preincubated in $2\;\times\;10^{-4}M$ IAA solution for 48 hr to promote adventitious root formation in upright or inverted direction and then incubated in upright direction for 96 hr. Adventitious root formation occurred only at the morphological base of the cuttings which were preincubated in upright direction, while at the both ends in inverted direction. IAA treatment enhanced the adventitious root formation in all cuttings regardless of their orientation during preincubation. To elucidate localized root development, the activity of enzymes involved in root initiation and development was measured 24 hr, 48 hr, and 148 hr after epicotyl incubation. IAA oxidase, peroxidase and catalase were assayed in the apical, middle and basal segment of the epicotyls, and their fresh weight and length were measured. Elongation occurred the most in the upper segment of the epicotyl while fresh weight gain was the most in the basal segment. At root initiation phase, 24 hr after incubation IAA peroxidase and catalase activities appeared high at rooting zone while IAA oxidase activity was low at both ends, IAA oxidase and peroxidase activities declined at the rooting zone during the adventitious root formation at 48 ht. Inversion of cuttings during preincubation caused a chrange of enzyme activities along their epicotyl cuttings. Only peroxidase activity showed a high correlation with root initiation. Therefore, the biochemical change is highly correlated with change in IAA level in the rooting zone of the epicotyl, resulting in root formation in unusual rooting zone of epicotyl.
Whereas cationic extracellular peroxidases (PODs) were observed in the suspension cultures of rose (Rosa sp. L. cv Pual's scarlet) grown under normal conditions, new anionic isozymes were induced within 24 hr by the treatment of low host-specific elicitor (10 mg glucan/L media) prepared from yeast cell wall. Prominent anionic (pI 6.1) and cationic POD (pI 8.4) were purified and characterized to understand the physiological role of the enzymes. Both enzymes were purified (ca.200 fold) by the ammonium sulfate precipitation, ion exchange chromate-graphy and gel filtration chromatography. The Km values of the purified anionic POD for ferulic acid and $\textrm{H}_2\textrm{O}_2$ were 4.64 mM and 0.72 mM, whereas those of the cationic POD were 1.38 mM and 0.48 mM, respetively. The activity of the anionic POD as NADH oxidase was twice higher than that of cationic POD. The NADH oxidation in the anionic POD fraction was inhibited by 60% on the addition of 0.1 mM coniferyl alcohol, while that in the cationic fraction was inhibited by 15%.
Tobacco mosaic virus(TMV) coat protein cDNA was transformed to Nicotiana tabacum cv. NC82 and the transgenic tobacco plants resistant to TMV infection were isolated in the next generation. The expression of TMV coat protein cDNA and genetic stability of the fifth generation of TMV resistant transgenic tobacco plants at the higher temperature were investigated. The TMV coat protein cDNA was amplified by genomic PCR in all the TMV resistant transgenic tobacco plants. The TMV coat protein expressed in the transgenic tobacco plants was detected at very low level by immunoblot hybridization. Even in tansgenic plants that showed the viral symptom only on very late sucker growth (delay type plants), the coat protein expression in the suckers was much less than that of susceptible tobacco infected with TMV. The TMV coat protein expressed in the transgenic tobacco plants was below 0.01% of total protein. Transcription and expression of the coat protein cDNA in delay type plants were observbed at high temperature (38$^{\circ}C$), and TMV replication was suppressed at both 28$^{\circ}C$ and 38$^{\circ}C$. This indicates that unlike the resistance conferred by 'N' gene. TMV resistance of transgenic tobacco plant won't break down at high temperature.
The bialaphos is a potent inhibitor of glutamine synthease in higher plants and is used as a non-selective herbicide. We have used the bialaphos resistant gene(Bar) encoding for an acetyltransferase isolated from Streptomyces hygroscopicus SF1293. Callus derived from mature seeds of rice(Oryza sativa L. cv. Dong Jin) were co-cultivated with Agrobacterium tumefaciens EHA101 carring a plasmid pGPTV-HB containing genes for hygromycin resistance (HygR) and Bar. Transgenic plants showing in vitro resistance to 50 mg/L hygromycin and 10 mg/L bialaphos were obtained by using a two-step selection/regeneration procedure. Transformation efficiency of rice was about 30% which was as high as reported in other dicotyledons. Progenies ($\textrm{T}_{1}$ generation) derived from primary transformant of 17 lines were segregated with a 3 resistant : 1 sensitive ratio in medium containing hygromycin and bialaphos. Stable integration of Bar gene into chromosomal DNA was proven by Southern blot analysis of genomic DNA isolated from $\textrm{T}_{2}$ progenies. Transgenic plants ($\textrm{T}_{3}$) grown in the field were resistant to bialaphos (Basta) at a dosage lethal to wild type plants.
Total of 78 strains were characterized based on the morphological characteristics of colonies isolated on Schroth, and New & Kerr's media for selection of hypervirulent wild-type Agrobacterium spp from galls, hairy root-like process and soil of Populus, Malus, Salix and Diopyros in Korea. Among them, 48 strains were able to induce tumors in carrot disc. Hypervirulent A. tumefaciens SP101 and SM042 were identified as biotype 1 and biotype 2, respectively, These strains formed fast growing, larger tumors as compared to those induced by other strains. The binary vector pGA643 with kanamycin resistant gene was mobilized from E. coli MC100 into A. tumefaciens strain SM042 isolated from soil, and/or disarmed vector PC2760 using a triparental mating method with E. coli HB101/pRK2013, and transconjugants, A. tumefaciens SM643 and PC643 were obtained in minimal media containing kanamycin and tetracycline. Tobacco tissues were cocultivated with conjugant Agrobacterium and then transferred to selective medium with 2,4-D and kanamycin to induce the transformants. Calli were formed more efficiently in cocultivation with A. tumefaciens SM643 than that with A. tumefaciens PC643. Most of calli transformed with A. tumefaciens PC643 were friable and regenerated into normal plantlets, while the calli transformed with A. tumefaciens SM643 were compact, hard, and mixed with friable calli. The friable calli formed normal shoots, while compact calli did not form shoots but only grew to typical compact tumor calli. When the shoots formed directly from tobacco stems without callus induction after transformation by A. tumefaciens SM643 with wild-type Ti-plasmid, normal transformed plants can be induced without using disarmed Ti-plasmid.
To develop simple and efficient transformation methods of monocotyledonous plane, electroporation-mediated delivery of DNA into intact embryogenic cell clumps was investigated in zoysiagrass and rice. Calli of zoysiagrass, induced from 3-week-old immature embryos, were suspension-cultured in MS basic medium supplemented with 1.0 mg/t 2.4-D and used for elechuporation. Calli, derived from immature inflorescences of 20 mm lenth of rice, were also suspension-cultured on N6 basic medium supplemented with 1.0 mg/L 2.4-D. Suspension-cultured embryogenic cell clumps were electroporated in liqid MS medium added with a Plasmid DNA (30 $\mu\textrm{m}$/ml), pGA1074, encoding ${\beta}$-glucuronidiase (GUS). DNA delivery into the cells through cell walls and cell membrane was confirmed by the transient expression of the GUS gene. Cell clumps of zoysiagrass and rice, electroporated with 400 volt at 800 pF capacitance, expressed GUS gene activity at a mean frequency of 25 units (one unit = one clony of blue cells) per 200 ${\mu}\ell$ of packed cell volume. Untreated cells and healed non-embryogenic cells did not exhibit GUS activity These results indicate that electroporation-mediated transformation can use intact embryogenic cells (thus avoiding the use protoplasts) in zoysiagrass and rice.
Some factors of wounding methods, solidifying agents, origin of leaf explants, cone. of acetosyring-one, and MES affecting regeneration and transformation by Agrobacterium tumefaciens were investigated to establish an efficient transformation system of apple. Wounding by cutting the leaves merely showed the tendency of regeneration and transformation with higher efficiency compared with that of wounding by non-traumatic forcep when carrying out co-cultivation for three days after bacterial inoculation. While examining the solidifying agents of medium with the combination of agar (A)+Gelrit $e^{ }$ (G) in g. $L^{-1}$ , the higher concentration of Gelrit $e^{ }$ increased the efficiency of regeneration. However, there was no difference in the efficiency of transformation from the treatments of 2.5 G, 3.5 A+1.2 G, and 7.0 G. The origin of leaf explants showed no difference statistically in the efficiency of regeneration and transformation, but that from the shoots of proliferation medium showed the tendency with higher efficiency. The concentration of above 0.1 mM acetosyringon had an increase in the efficiency of regeneration and transformation and the concentration of 0.15 mM had the highest efficiency of transformation in the treatment of acetosyringone with different concentration. There was no effect of MES on regeneration and transformation.ion.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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