We isolated and sequenced a human retina cDNA fragment that encodes 25 kDa thiol peroxidase. A search of a databank showed that the 25 kDa thiol peroxidase from retina is the same type of thiol peroxidase which exists in human brain and red blood cells. This type of tbiol peroxidase was distributed in all of the tested tissues including retina. This result suggests a physiological role for the 25 kDa thiol peroxidase as an important antioxidant.
Fomenko, Dmitri E.;Marino, Stefano M.;Gladyshev, Vadim N.
Molecules and Cells
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제26권3호
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pp.228-235
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2008
Thiol-dependent redox systems are involved in regulation of diverse biological processes, such as response to stress, signal transduction, and protein folding. The thiol-based redox control is provided by mechanistically similar, but structurally distinct families of enzymes known as thiol oxidoreductases. Many such enzymes have been characterized, but identities and functions of the entire sets of thiol oxidoreductases in organisms are not known. Extreme sequence and structural divergence makes identification of these proteins difficult. Thiol oxidoreductases contain a redox-active cysteine residue, or its functional analog selenocysteine, in their active sites. Here, we describe computational methods for in silico prediction of thiol oxidoreductases in nucleotide and protein sequence databases and identification of their redox-active cysteines. We discuss different functional categories of cysteine residues, describe methods for discrimination between catalytic and noncatalytic and between redox and non-redox cysteine residues and highlight unique properties of the redox-active cysteines based on evolutionary conservation, secondary and three-dimensional structures, and sporadic replacement of cysteines with catalytically superior selenocysteine residues.
Cellular redox state is known to be perturbed during ischemia and that $Ca^{2+}$ and $K^2$ channels have been shown to have functional thiol groups. In this study, the properties of thiol redox modulation of the ATP-sensitive $K^2$ ($K_{ATP}$) channel were examined in rabbit ventricular myocytes. Rabbit ventricular myocytes were isolated using a Langendorff column for coronary perfusion and collagenase. Single-channel currents were measured in excised membrane patch configuration of patch-clamp technique. The thiol oxidizing agent 5,5'-dithio-bis-(2-nitro-benzoic acid) (DTNB) inhibited the channel activity, and the inhibitory effect of DTNB was reversed by dithiothreitol (disulfide reducing agent; DTT). DTT itself did not have any effect on the channel activity. However, in the patches excised from the metabolically compromised cells, DTT increased the channel activity. DTT had no effect on the inhibitory action by ATP, showing that thiol oxidation was not involved in the blocking mechanism of ATP. There were no statistical difference in the single channel conductance for the oxidized and reduced states of the channel. Analysis of the open and closed time distributions showed that DTNB had no effect on open and closed time distributions shorter than 4 ms. On the other hand, DTNB decreased the life time of bursts and increased the interburst interval. N-ethylmaleimide (NEM), a substance that reacts with thiol groups of cystein residues in proteins, induced irreversible closure of the channel. The thiol oxidizing agents (DTNB, NEM) inhibited of the $K_{ATP}$ channel only, when added to the cytoplasmic side. The results suggested that metabolism-induced changes in the thiol redox can also modulate $K_{ATP}$ channel activity and that a modulatory site of thiol redox may be located on the cytoplasmic side of the $K_{ATP}$ channel in rabbit ventricular myocytes.
A 23-kDa molecular mass of antioxidant protein was purified from human liver. This protein exhibited the preventive effect against the inactivation of glutamine synthetase by a metal-catalyzed oxidation system. This antioxidant activity was supported by a thiol-reducing equivalent such as dithiothreitol in a similar manner to that of the 25-kDa thiol-specific antioxidant protein (TSA) from human red blood cells (HR). However, a thioredoxin-linked peroxidase activity of thiol-specific antioxidant protein of human liver (HLTSA) (0.91 ${\mu}mol/min/nmol$ of HLTSA) was much lower than that of thiol-specific antioxidant protein of human red blood cells (HRTSA) (16.4 ${\mu}mol/min/nmol$ of HRTSA). This HLTSA is also immnologically distinct from HRTSA Amino acid sequences of the three tryptic peptides (P1, P2, P3) of HLTSA were found to be completely homologous to segments of the known Mer5-like protein, which belongs to the known TSA family.
산화적 스트레스에 대한 Bacillus subtilis의 thiol peroxidase 유전자의 생리적인 기능을 연구하기 위해 thiol peroxidase 유전자의 기능이 손상된 녹아웃 돌연변이주를 상동성 재조합에 의해 제조하였다. 호기적 조건에서 배양할 때 야생형과 녹아웃 돌연변이주 사이에는 성장속도에서 차이를 관찰할 수 없었다. 그러나 paraquat 처리할 때와는 달리 $H_2O_2$와 cumene hydroperoxide (CHP)에 의한 산화적 스트레스에 대해 역할을 하고 있음을 시사하는 결과이다.
Aminolysis of aryl thiol-2-furoates and thiol-2-thiophenates with benzylainines are investigated in acetonitrile at 50.0 ℃. Relatively large selectivity parameters, ρx(βx), ρz(βx) and ρxz (> 0) together with the valid reactivity-selectivity principle are consistent with a stepwise acyl transfer mechanism with rate-limiting expulsion of the leaving group, thiophenolate anion, from the tetrahedral intermediate, T±. The first-order kinetics with respect to the benzylamine concentration and the relatively large secondary kinetic isotope effect involving deuterated benzylamine nucleophiles suggest a four-center type transition state in which concurrent leaving group departure and proton transfer are involved.
Thiol peroxidase인 E.coli AhpC의 아미노산 서열을 database를 이용해 분석하여, TPx와 상동성이 있는 새로운 형태의 Thiol peroxidase를 찾아내었다. 그 중 병원성을 갖는 박테리아인 Haemophilus Influenzae에서 존재하는 TPx와 유사하고, GRX와 함께 fusion 되어있는 새로운 형태의 단백질의 유전자를 클로닝하여 E.coli에서 과발현시켜 분리정제 하였다. 정제된 TPx-GRX는 환원제로 thiol 성분을 갖는 MCO system(Fe, DTT, Oxygen)에 의하여 Glutamine Synthetase(GS)의 불활성화를 방어하는 티올 특이적 향산화활성을 갖고, peroxides를 제거하는 peroxidase 활성을 갖는 것을 밝혔다. 이 결과들로부터 TPx-GRX는 새로운 형태의 Thiol perosidase임을 알 수 있었다. 더 나아가서 이 결과들은 TPx-GRX가 병원성 박테리아에서 oxidative stress를 막는 생리적으로 중요한 역할을 할 것이라는 것을 시사한다.
고염에서 자라는 원시 박테리아인 Halococcus agglomeratus에서 Thiol-specific antioxidant 활성을 보이는 분자량이 22-kDa인 향산화 단백질을 순수 분리 정제하여 향산화 활성의 특성을 조사하였다. 그 결과 진핵 세포의 Thiol-specific antioxidant protein (TSA of TPx)과 유사한 활성을 갖는 것을 확인 할 수 있었다. 정제된 Thiol-specific antioxidant protein 은 환원제로 thiol 성분을 갖는 비효소적 금속 촉매 산화계( $Fe^{3+}$, $O^2$, DTT 또는 2-mercatoethanol : thiol- MCO system)에 의하여 Glutamine Synthetase (GS)의 불활성화를 방어하고 Ascorbate 같은 nonthiol 성환원제를 갖는 금속 촉매 산화계 ( $Fe^{3+}$, $O^2$, Ascorbatenol: nonthiol- MCO system)에 의해서는 GS의 불활성화를 방어하지 못하였다. 이것은 환원형 thiol성분이 항산화 단백질의 항산화 활성에 전자 공여체로 요구되어 지기 때문이라고 판단된다. 이 단백질은 다른 TPx와는 다르게 100%의 활성을 나타내려면 NaCl의 농도가 500mM이상이 되어야 한다. 이상의 결과는 원시 박테리아에도 TPx가 존재하여 활성 산소종을 제거하는 생화학적 역할을 수행함을 시사하고 있다.
We previously reported that a novel thiol peroxidase (p20) from Escherichia coli is a distinct periplasmic peroxidase that detoxifies hydroperoxides together with glutathione or thioredoxin. Until now, there was no experimental evidence for the presence of thioredoxin (Trx) in the periplasmic space. In an attempt to confirm the physiological function of p20 as a thiol peroxidase supported by Trx in the periplasmic space, we have purified a Trx activity from the periplasmic space of Escherichia coli and identified the Trx as the same protein as the cytoplasmic Trx. The presence of Trx in the periplasmic space of Escherichia coli suggests that p20 is a unique extracellular Trx-linked thiol peroxidase.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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