Human and bovine dopamine transporters (DAT) demonstrate discrete functional differences in the dopamine (DA) transport and cocaine binding. The functional analyses on the chimeras of human and bovine DAT have revealed that the region from the $133^{rd}{\;}to{\;}186^{th}$ residue(encompassing the $3^{rd}$ trans-membrane domain (TM) is responsible for the substrate transport and cocaine binding. The present studies have been done to find out the specific amino acid(s) which is essential for the binding of cocaine to DAT by interchanging the amino acids in that region between human and bovine DAT. When isoleucine, the $152^{nd}$ residue of chimera B3 (bovine DAT sequence) was transformed back to valine, the human DAT residue at the identical position, the cocaine binding was remarkably recovered to 98% of the human DAT values. In addition, the cocaine binding of the human DAT was decreased by 57% by substituting isoleucine for valine at position 152. When isoleucine at position 152 of the chimera B3 was converted to the other amino acids to provide an possible molecular basis for the functional role of the $152^{nd}$ residue, only the conversion to alanine among acids tested significantly the cocaine by 34%, but these effect were not as much as those by the conversion to valine. In conclusion, valine at position 152 is a crucial amino acid for the interaction of cocaine to the DAT.
L-alanine dehydrogenase from Bacillus subtilis exhibits allosteric kinetic properties in the presence of $ZN^{2+}$. $ZN^{2+}$ induces the binding of substrate (L-alanine) to be cooperative at pH 8.0. The effect of pH variation between pH 7.0 and pH 10.0 on the inhibition by $ZN^{2+}$ correlates with the pH effect on the $K_m$ values for L-alanine within these pH range indicating that $ZN^{2+}$ and substrate compete for the same site. No such cooperativity is induced by $ZN^{2+}$ when the reaction is carried out at pH 10. At this higher pH, $ZN^{2+}$ binds with the enzyme with lower affinity and noncompetitive with respect to L-alanine. Inhibition of L-alanine dehydrogenase by $ZN^{2+}$ depends on the ionic strength. Increase in KCI concentration reduced the inhibition, but allosteric property in $ZN^{2+}$ binding is conserved. A model for the regulatory mechanism of L-alanine dehydrogenase as a noncooperative substrate-cooperative cofactor allosteric enzyme, which is compatible in both concerted and the sequential allosteric mechanism, is proposed.
Gyeong Soo Ko;Thang Quyet Nguyen;Seri Koh;Wonchull Kang
Journal of the Korean Chemical Society
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v.68
no.1
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pp.32-39
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2024
Glycerol dehydrogenase (GlyDH) plays a crucial role in the glycerol metabolism pathway by catalyzing the oxidation of glycerol to dihydroxyacetone (DHA). Previous studies of GlyDH have predominantly focused on unraveling the structural features of the active site and its binding interactions with ligand. However, the structural details of GlyDH in complex with both NAD+ and the substrate bound have remained elusive. In this study, we present the crystal structures of Klebsiella pneumoniae GlyDH (KpGlyDH) in the absence and presence of NAD+ at a resolution of 2.1 Å. Notably, both structures reveal the binding of the substrate, ethylene glycol, to the zinc ion. Interestingly, a significant change in the coordination number of the zinc ion is observed, with three in the absence of NAD+ and four in its presence. These findings shed light on the structural aspects of GlyDH and its interactions with NAD+ and the substrate.
Kinetic parameters of various substrates and inhibitors were measured to elucidate the binding requirements of the active site of intracellular adenosine deaminase (ADA) in Aspergillus oryzae. 3'-Deoxyadenosine was the best substrate according to the value of relative kcat/$K_m$. Purine riboside was found to be the strongest inhibitor with the $K_i$ value of $3.7{\times}10^{-5}$M. Adenine acted neither as a substrate nor as an inhibitor, suggesting the presence of ribose at N-9 of adenosine was crucial to binding. ADA also catalyzed the dechlorination of 6-chloropurine riboside, generating inosine and chloride ions. Substrate specificity of 6-chloropurine riboside was 0.86% of adenosine. Purine riboside, a competitive inhibitor of ADA, inhibit the dechlorination with similar $K_i$ value, suggesting that the same binding site was involved in deamination and dechlorination. Among the sulfhydryl group reagents, mercurials, pchloromercuribenzoate (PCMB), mersalyl acid and $HgCl_2$ inactivated the enzyme. Mersalyl acid-inactivated ADA was reactivated by thiol reagents, but PCMB-inactivated enzyme was not. When ADA was treated with the mercurial reagents, the inhibition constants and inhibition patterns were determined. Each inhibition was competitive with substrate. The $K_i$ values of these mercurial reagents were lower in 10 mM phosphate buffer than in 100 mM phosphate buffer, showing phosphate dependency.
human tyrosinase (hTyr) catalyzes first and the rate limiting step in the synthesis of polymerized pigment, melanin which determines skin, hair and eye colors. Mutation of hTyr often brings about decrease of melanin production and further albinism. Meanwhile, a number of cosmetic companies providing skincare products for woman in Asia-Pacific region have tried to develop inhibitors to bright skin color for several decades. In this study, we built a 3D structure by comparative modeling technique based on the crystal structure of tyrosinase from bacillus megaterium as a template to serve structural information of hTyr. According to our model and sequence analysis of type 3 copper protein family proteins, two copper atoms of active site located deep inside are coordinated with six strictly conserved histidine residues coming from four-helix-bundle. Cavity which accommodates substrates was like funnel shape of which entrance was wide and expose to solvent. In addition, protein-substrate and protein-inhibitor complex were modeled with the guide of van der waals surface generated by in house software. Our model suggested that only phenol group or its analogs can fill the binding site near nuclear copper center because inside of binding site has narrow shape relatively. In conclusion, the results of this study may provide helpful information for designing and screening new anti-melanogensis agents.
The ionization of tyrosine residue is known to be involved in the stabilization of transition-state in catalysis of astacin based upon the astacin-transition state analog structure. Two tyrosine residues, Tyr-216 and Tyr-219, are conserved in all MMPs related with astacin family, We replaced Tyr-216 and Tyr-219 into phenylalanine, respectively and the zinc binding properties, kinetic parameters, and pH dependence of each mutant are determined in order to examine the role of tyrosine residue in matrilysin catalysis. Both mutants contain two zinc atoms per mol of enzyme, indicating that either tyrosime does not affect the zinc binding property of the enzyme. Y216F and Y219F mutants are highly active and the kcat/Km values are only decreased 1.1-1.5-fold compared to the wild-type enzyme. The decrease in the activity of the mutants is essentially due to the increase in Km value. The pH dependencies of the kcat/Km values for both mutants are similar to the corresponding dependencies obtained with the wild type enzyme. The pKa values at the alkaline side of both mutants are not changed. These kinetic and pH dependence results indicate that the ionization of active site tyrosine residue of matrilysin is not reflected in the kinetics of peptide hydrolysin as catalyzed by astacin.
A hyperthermostable endoglucanase from Pyrococcus horikoshii with the capability of hydrolyzing crystalline cellulose was analyzed. A protein engineering study was carried out to obtain a reduced-size mutant. Five amino acid residues at both the N- and C-terminus were found to be removable without any loss of activity or thermal stability. Site-directed mutagenesis was also performed on R102, N200, E201, H297, Y299, E342, and W377, residues possibly involved in the active center or in the recognition and binding of a cellulose substrate. The activity of the resulting mutants was considerably decreased, confirming that the mutated residues were all important for activity. A reduced-size enzyme, as active as the wild-type endoglucanase, was successfully obtained, plus the residues critical for its activity and specificity were confirmed. Consequently, an engineered enzyme with a reduced size was obtained, and the amino acids essential for activity were confirmed by site-directed mutagenesis and comparison with a known three-dimensional structure.
Kim, Joung-Mok;Choi, Jung-Do;Kim, Bok-Hwan;Yoon, Moon-Young
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.26
no.2
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pp.260-264
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2005
The nature of the active site of Tobacco acetohydroxyacid synthase (AHAS) in the substrate- and cofactorbinding was studied by kinetics and fluorescence spectroscopy. The substrate saturation curve does not follow Michaelis-Menten kinetics at different temperatures (7, 21 and 37 ${^{\circ}C}$), pH (6.5, 7.5 and 8.5) and buffers (Tris-HCl and MOPS). The concentration of one half of the maximum velocity ($S_{0.5}$) decreased in the following order: pyruvate $\gt$ ThDP $\approx$$Mg^{+2}$$\gt$ FAD. However, the catalytic efficiency (K$_{cat}/S_{0.5}$) inversely decreased in the following order; FAD $\gt$$Mg^{+2}$$\approx$ThDP $\gt$ pyruvate, indicating that the cofactors by in decreasing order; FAD, $Mg^{+2}$, ThDP, affect the catalysis of AHAS. The dissociation constant ($K_d$) of the intrinsic tryptophan fluorescence decreased with the same tendency of the concentration of one half of the maximum velocity ($S_{0.5}$) decreasing order. This data provides evidence that the substrate and cofactor binding natures of the active site, as well as its activation characteristics, resemble those of other ThDP-dependent enzymes.
Protein phosphatase 1 (PP1) is involved in various signal transduction mechanisms as an extensive regulator. The PP1 catalytic subunit (PP1c) recognizes and binds to PP1-binding consensus residues (FxxR/KxR/K) in NBCe1-B. Consequently, we focused on identifying the function of the PP1-binding consensus residue, $^{922}FMDRLK^{927}$, in NBCe1-B. Using site-directed mutagenesis and co-immunoprecipitation assays, we revealed that in cases where the residues were substituted (F922A, R925A, and K927A) or deleted (deletion of amino acids 922-927), NBCe1-B mutants inhibited PP1 binding to NBCe1-B. Additionally, by recording the intracellular pH, we found that PP1-binding consensus residues in NBCe1-B were not only critical for NBCe1-B activity, but also relevant to its surface expression level. Therefore, we reported that NBCe1-B, as a substrate of PP1, contains these residues in the C-terminal region and that the direct interaction between NBCe1-B and PP1 is functionally critical in controlling the regulation of the ${HCO_3}^-$ transport. These results suggested that like IRBIT, PP1 was another novel regulator of ${HCO_3}^-$ secretion in several types of epithelia.
Two O-methyltransferases, OMTII-1 and OMTII-4 of meadow rue Thalictrum tuberosum showed a high sequence identity. Of 364 amino acids only one residue is not the same, which is Tyr21 or Cys21. Even if the 21st residues in these OMTs are not included in the binding sites of the enzymes, binding affinities of the enzyme homodimers over the same substrate are very different. While the binding affinity of one homodimer over caffeic acid is 100%, that of the other is 25%. Authors tried to predict the three-dimensional structures of Thalictrum tuberosum O-methyltransferases using homology-based modelling by a comparison with caffeic acid O-methyltransferase, and explain the reason of the phenomenon mentioned above based on their three dimensional structural studies. In the enzyme homodimer, the better binding affinity may be caused by the shorter distance between the 21st residue and the binding site of the other monomer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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