An efficient protocol was established for high frequency somatic embryogenesis through a callus culture of Coelogyne cristata. The best frequency of callusing was obtained from a PLB segment (3-5 mm) cultured on MS medium supplemented with coconut water (CW) and a combination of both 3 $mg{\cdot}L^{-1}$ of 2,4-D and BA. When the calli were sub-cultured on the MS medium without any PGRs, the average number of somatic embryos were higher than those with PGRs treatment. NAA is the most critical factor among PGRs, which dramatically hindered for the formation of a somatic embryo. The efficacy of the addition of coconut powder (CP) for somatic embryogenesis was almost the same in all treatments. However, the number of somatic embryos formed distinctly depended on age of the callus. The somatic embryos converted into healthy plants with well-developed shoots on the same medium. Plantlets showed the best responses of root and shoot growth when transferred to $\frac{1}{2}$ MS medium containing 1.5 $g{\cdot}L^{-1}$ of activated charcoal. All plants with above 3.0-cm-high were successfully acclimatized in the greenhouse.
El Ansari, Zineb Nejjar;El Bouzdoudi, Brahim;Errabii, Tomader;Saidi, Rabah;El Kbiach, Mohammed L'bachir
Journal of Plant Biotechnology
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v.48
no.1
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pp.44-53
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2021
The present work aims to study the induction of somatic embryogenesis in cork oak (Quercus suber L.) from immature zygotic embryos and young apical leaves obtained from 2-month-old seedlings through acorn germination on sterilized peat. The immature zygotic embryos were grown for 1 month on the mineral solution of MS in the presence of 4.52 µM 2,4-D and 30 g/L sucrose. They were then transferred to the same mineral solution with no added growth regulators. In the third subculture, yellow somatic embryos, characterized by two voluminous cotyledons, were differentiated from the radicle of the immature zygotic embryos. The induction of somatic embryogenesis in young leaves required a series of transfers on different culture media containing 30 g/L sucrose and 100 mg/L myo-inositol. Secondary or recurrent somatic embryogenesis occurred within the immature somatic embryo radicles after 1 month of culture on growth regulator-free medium containing WPM macronutrients, MS micronutrients, and vitamins.
Kim, Hee Young;Seong, Eun Soo;Lee, Jae Geun;Yoo, Ji Hye;Hwang, In Seong;Kim, Myong Jo;Lim, Jung Dae;Kim, Na Young;Yu, Chang Yeon
Korean Journal of Medicinal Crop Science
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v.20
no.6
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pp.461-465
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2012
This study was carried out to select the appropriate medium (especially, carbon and nitrogen source, potassium phosphate and pH) for somatic embryogenesis in order to develop the rapid mass production system in suspension culture of Oplopanax elatus Nakai. Direct somatic embryos were obtained from root explants in the hormone free suspension culture (MS). Combination of $NH_4NO_3$ and $KNO_3$ at the ratio of 1650 (mg/${\ell}$) : 1900 (mg/${\ell}$) obtained the better result to produce somatic embryo in suspension culture. MS medium supplemented with $170mg/{\ell}$$KH_2PO_4$. The addition of 1 and 3% sucrose was effective for formation of embryogenic callus. Therefore, this report will be helped to improve the establishment for suspension culture in Oplopanax elatus Nakai.
Immature zygotic embryos from immature seeds of Wasabia japonica (cv Dalma) were isolated and cultured on modified MS medium supplemented with 2,4-D, IAA, and BA. Immature zygotic embryos were classified into torpedo shape and cotyledon stage. The highest rates of callus formation were obtained of 1.0mg/L IAA(torpedo stage, 90.0%)and 1.0mg/L 2,4D plus 0.1mg/L BA(cotyledany stage,84.3%). Somatic embryos after 60 days of culture. These numerous somatic embryo could be seperated and subcultured on the same media for further propagation. After 90 days of culture, most somatic embryos were developed well organized embryos which were able to produce into whole plants.
Oh, Myung-Jin;Na, Hye-Ryun;Choi, Hong-Keun;Liu, Jang Ryol;Kim, Suk-Weon
Plant Biotechnology Reports
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v.4
no.2
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pp.125-128
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2010
Culture conditions were established for high frequency plant regeneration via somatic embryogenesis from cell suspension cultures of Nymphoides coreana. Zygotic embryos formed pale-yellow globular structures and calluses at a frequency of 85.6% when cultured on half-strength Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 0.3 $mg\;l^{-1}$ of 2,4-D. However, the frequency of pale-yellow globular structures and white callus formation decreased slightly with an increasing concentration of 2,4-D up to 10 $mg\;l^{-1}$ with the frequency rate falling to 16.7%. Cell suspension cultures were established from zygotic embryo-derived calluses using half-strength MS medium supplemented with 0.3 $mg\;l^{-1}$ of 2,4-D. Upon plating onto half-strength MS basal medium, over 92.3% of cell aggregates gave rise to numerous somatic embryos and developed into plantlets. Regenerated plantlets were successfully transplanted into potting soil and achieved full growth to an adult plant in a growth chamber. The high frequency plant regeneration system for Nymphoides coreana established in this study will be useful for genetic manipulation and cryopreservation of this species.
Indian citrus ringspot virus (ICRSV)-free plants of Kinnow mandarin (Citrus nobilis Lour x C. deliciosa Tenora) were raised from virus-infected plants using unfertilised ovules as explants. Plants were tested by indirect ELISA and RT-PCR before using their explant. An amplified product of 539 bp was obtained by RT- PCR in ICRSV infected plants. Unfertilized ovules were excised from unopened flower buds of plants tested postive for virus and were cultured on Murashige and Skoog's (MS) basal medium supplemented with various concentrations of kinetin (KN) or malt extract (ME). Maximum induction (31.94%) of embryogenic callus was observed on MS medium supplemented with KN ($9.29\;{\mu}M$). Transfer of embryogenic calli to similar media composition resulted in somatic embryogenesis in all cultures, with an average number of 60.36 globular, 17.39 heart and 7.71 cotyledonary-shaped somatic embryos per culture. All cotyledonary shaped embryos developed into complete plantlets within 60 days on transfer to similar medium. Embryogenic callus induction, somatic embryo formation, maturation, germination and plantlet formation were achieved on MS medium supplemented with KN ($9.29\;{\mu}M$) alone. The plantlets derived from somatic embryos were transferred to sterilized soil, sand and vermiculite (3:1:1) mixture. After acclimatization, the plantlets were transferred to screen house and were indexed for ICRSV employing indirect ELISA and RT-PCR and found free of virus. A distinct feature of this study is the induction of somatic embryogenesis from unfertilised ovules to produce virus-free plants.
An efficient protocol has been developed for rapid mass propagation of sweetpotato from shoot-tips derived embryogenic callus. Optimal embryogenic callus was induced from shoot apical meristem explants on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 1mg/L 2,4-D. The addition of casein hydrolysate in the media increased the embryogenesis efficiency of sweetpotato. Somatic embryos were easily induced from the embryogenic callus on MS basal medium containing 300-500mg/L casein hydrolysate without phytohormon. Treatment of casein hydrolysate (100∼300mg/L) with 1mg/L 2,4-D also improved the secondary embryonic efficiency from somatic embryos below 2mm in length. Plant regeneration was achieved via somatic embryogenesis and direct organogenesis. Regenerated planlets with well developed shoots and roots on MS basal medium were successfully transferred to soil.
Embryogenic callus was obtained from cotyledonary explants of Codonopsis lanceloata on Murashige & Skoog's medium supplemented with 1 mg/L 2,4-D. Suspension cultures of the embryogenic calli were grown on a shaker at 100 strokes/min, and then the calli were subcultured for 2 weeks in 2,4-D-free medium to produce somatic embryo. In somatic embryos at the globular stage, cotyledon initials began to differentiate themselves in the near distal end of the procambial strand. Dicotyledons, tricotyledon, tetracotyledon and fused cotyledon were differentiated from the distal ends of two, three, four and circular procambial strands, respectively. Nearly circular procambial strand in lower hypocotyls were independently differentiated into two, three, four procambial tissues at cotyledonary node and cotyledons to form somatic embryos with dicotyledon, tricotyledon, tetracotyledon. If the distal subepidermal cells of globular embryo exclusively became cotyledon initials, the torpedo or cotyledonary embryo was characterized by somatic embryos with fused cotyledon.
Conditions for somatic embryogenesis and plant regeneration from stem tissues of Euphorbia pulcherrima were esta-blished. Explants from leaf, petiole, stem were examined for their embryogenesis on MS solid medium supplemented with plant growth hormones in combination at various concentrations. From leaf or petiole explants, callus was indu-ced well but never proceeded to the embryonic stage in our expermental conditions. From stem explants, however, multiple shoots following callus induction emerged in about 6 to 8 weeks on MS agar medium supplemented with 1.5 mg/L of benzyladenine. Upon transfer, roots were developed on hormone-free MS solid medium.
Culture conditions for high frequency plant regeneration via somatic embryogenesis from embryogenic cell suspension cultures of Hovenia dulcis are described. Germinated somatic embryos were selected for induction of secondary embryogenesis. Friable embryogenic cells were induced directly from somatic embryos when transfer to 1/3 MS solid or liquid medium lacking plant growth regulators. The temperature strongly effected on induction of secondary embryognesis than other conditions in culture. All somatic embryos produced friable embryogenic cell clumps within 10 days when germinated somatic embryos cultured in 1/3 MS medium at $30^{\circ}C$ in suspension culture. No somatic embryos formed from embryogenic cell suspension cultures at $18^{\circ}C$. Numerous somatic embryos were induced and subsequently developed uniformly into germination stage from suspended cell clumps after 4 weeks of culture on $18^{\circ}C$. Plantlets conversion were observed on $18^{\circ}C$ when germinated somatic embryos were transferred to 1/3 MS solid medium without plant growth regulators or supplemented with 0.1-0.5 mg/l benzyladenine.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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