Staphylococcus aureus로부터 분리한 R-plasmid pSBK203의 복제개시 단백질인 Rep의 작용부위인 ori 및 dsDNA로의 전환을 위해 요구되는 minus origin부위를 밝히고자 시도하였다. Escherichia coli vecotr를 이용하여 pSBK203의 복제관련 부위를 최소한도로 포함하는 재조합 E.coli-Bacillus subtilis shuttle vector를 구성, 분리하고 여기에 포함된 pSBK203부위의 염기 서열을 분석함으로써 ori를 확인하였다. pSBK203의 복제개시 부위 ori는 rep의 구조 유전자 ORF내에서 약 50bp의 크기로 발견되었으며 지금까지 알려진 staphylococcal plasmid들중에서 pT181족 plasmid들의 ori와 높은 상동성을 갖는 것으로 분석되었다. 복제 과정에서 ssDNA로 먼저 만들어진 (+)쇄가 dsDNA로 전환되기 위해 필요한 신호로 작용하는 것으로 알려저 있는 minus origin (M-O)인 긴 palindrome 구조, 즉 pal 부위가 rep 우전자의 상류에서 2개 연이어 존재하는 것이 발견되었다. 이중에서 pOX6, pC194, 및 pE194 등과 같은 다른 staphylococcal plasmid들의 pal 부위와 비교적 높은 상동성을 갖는 paLA 는 plasmid 유지에 별 영향을 미치지 못하는 반면 다른 plasmid에서 유사 서열이 보고되지 않은 palA는 plasmid 유지에 필수적이라는 사실이 밝혀졌다.
Chung, Kun-Sub;Rafael, F.R.;Oh, Sang-Suk;Richardson, T.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제1권1호
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pp.31-36
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1991
Yeast expression plasmids containing an appropriate leader sequence and bovine $\beta$-casein cDNA were constructed to produce $\beta$-casein for the study of its functional characteristics. Two kinds of expression systems for $\beta$-casein were constructed using pCGYl444 as a precursor plasmid. This plasmid is a yeast-E. coli shuttle vector which contains the chelatin promoter. The plasmid pISB202 contains the invertase leader sequence and $\beta$-casein gene. The plasmid pDEB303 contains the original bovine $\beta$-casein leader sequence gene. These two plasmids were introduced into S. cerevisiae AB116 which is a strain deficient in the major yeast proteinases. Each clone was grown in minimal media for 24 h before induction by $CuSO_4$. The cells were thus grown under expression conditions. Both strains harbouring pISB202 and pDEB303 expressed bovine $\beta$-casein. The $\beta$-casein was detected using immunochemical staining after western blot. Secretion of $\beta$-casein was detected in the culture broth. The estimated amount of secreted $\beta$-casein was approximately 50 ${\MU}g$/l.
재조합 플라스미드 pAL850에 함유된 Bacillus circulans KCTC3004 $\alpha$-amylase 유 전자를 pUB110을 이용하여 shuttle 플라스미드 pALS111을 만들어 Bacillus 세포에 이동. 발현시켰다. Bacillus subtilis(고초균)와 Bacillus megaterium(거대균)으로 형질전환된 pALS111로부터 $\alpha$-amylase는 세포증식과 비례하여 생산되었다. 형질전화주가 생산하는 $\alpha$ -amylase의 최대활성을 유전자 공여 균주인 B. circulans와 비교했을 때 고초균은 약 95배, 거대균은 약 34배 정도의 높은 활성을 나타내었다. 그리고 대장균 형질전환주는 분비율이 10% 정도인데 반하여 고초균 형질전화주는 생산된 효소전부를 , 거대균 형질전환주는 약 98%를 세포외로 분비함을 보임으로써 고초균과 거대균은 실용적인 면에서 대장균보다 우월 함을 나타내었다, pALS111의 각 숙주 내에서의 안정성을 살펴본 결과 거대균에서는 92%, 고초균에서는 76%, 대장균에서는 38% 로 나타났다. SDS-PAGE와 zymogram을 통해 추정 된 대장균과 고초균, 거대균에서 발현된 효소의 분자량은 약 55,000으로 확인되었다. 이들 형질전환주가 생산하는 $\alpha$-amylase는 starch 에 작용하여 주된산물로서 maltotriose 이상의 다양한 maltooligosaccharide들을 생산함이 확인 되었다.
A cDNA clone encoding the ribosomal protein S20 has been isolated from the Schizosaccharomyces pombe cDNA library by colony hybridization. The insert contained in the original plasmid pYJ10 was transferred intro shuttle vector pRS316 generate plasmid pYJll. The dDNA insert of plasmid pYJll, contains 484 nucleotides and encodes a protein of 118 amino acids with a calculated mass of 13,544 daltons. The deduced amino acid sequence of S. pombe ribosomal protein S20 is very homologous with fruit fly, rat, and budding yeast counterparts. It is also homologous with Xenopus S22 ribosomal protein. S. pombe ribosomal protein S20 appears to be relatively hydruphobic except the C-terminal region. The 728 bp upstream region of the S20 gene was amplified from chromosomal DNA and transferred into the BamHI/EcoRI site of the promoterles $\beta$-galactosidase gene of the vector YEp357R, which resulted in fusion plasmid pYS20. The synthesis of $\beta$-galactosidase from the fusion plasmid appeared to be the highest in the mid-exponential phase. The S. pombe cells with the fusion plasmid grown at 35$\^{C}$ gave lower $\beta$-galactosidase activity than the cells grown at 30$\^{C}$. Computer analysis showed the consensus sequence CAGTCACA in the upstream regions of various ribosomal protein genes in S. pombe, which would be involved in the coordinated expression of small ribosomal proteins.
A Bacillus subtilis mannanase gene was subcloned into an Escherichia coli- Corynebacterium lactofermentum shuttle vector pHE83, and the resultant plasmid pHE83M was transferred into an endogenous plasmid-free strain of C. lactofermentum. Mannanase produced by the recombinant C. lactofermentum (pHE83M) was secreted extracellulary at the level of 86%, and the remaining activity of mannanase was detected in the cell-free extract. The maximum mannanase productivity of the recombinant strain reached 8.1 unit/mL in the culture filtrate of LB medium. According to the zymogram of mannanase on SDS-PAGE, it was found that the mannanase produced by the recombinant C. lactofermentum could be maintained stably with a migration identical to the mannanase produced by the parental strain, B. subtilis WL-3.
The deletion of sti from the Streptomyces plasmid pIJ101 made its derivative pHZ1358 an efficient vector for gene disruption and replacement. Here, pHZ1358 was further optimized by the construction of a derivative plasmid pJTU1278, in which a cassette carrying multiple cloning sites and a lacZ selection marker were introduced for convenient plasmid construction in E. coli. In addition, the oriT region of pJTU1278 was also deleted, generating a vector (pJTU1289) that can be used specifically for PCR-targeting. The efficient usage of these vectors was demonstrated by the deletion of the gene involved in avermectin biosynthesis in S. avermitilis.
B. amyloliquefaciens의 $\alpha$-amylase 유전자가 S. cerevisiae 내에서 형질발현하는 가를 조사하기 위하여 본, 연구에서 YRp7 plasmid에 B. amyloliquefaciens amylase유전자를 cloning하여 만든 pEA24를 형질전환시켰다. 먼저 YRp7 plasmid를 이용하여 형질전환 최적 조건을 검토하여 본 바, PH 7과 8사이, 반응온도 3$0^{\circ}C$에서 40%의 polyethylene glycol(MW 4,000)을 처리한 후 2 %의 agar를 함유한 재생배지에 중층도말 하였을 때 형질전환율이 가장 높았다. 형질전환주로부터 생성된 amylase의 활성을 측정한 결과, S. cerevisiae에서 약간의 amylase활성을 나타내어 최고 B. amyloliquefaciens의 2% 정도였고, 세포외효소는 검출되지 않았다. 이들 형질전환 주가 가지고 있는 pEA24 plasmid의 안정성을 조사한 결과 YRp7보다 불안정하였으며, 추출한 DNA를 전기영동하여 그 band를 확인하였다.
Le, Huong Giang;Kim, Min Jae;Jeon, Hye Sung;Yoo, Ji Yeon;Kang, Yun Ji;Kim, Tae Jin;Kim, Jeong Hwan
한국미생물·생명공학회지
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제50권1호
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pp.63-70
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2022
Two small cryptic plasmids, pHG1 and pHG2, were isolated from Levilactobacillus zymae (formerly Lactobacillus zymae) GU240 and characterized. pHG1 is 1,814 bp in size with a GC content of 37.4% and contains two open reading frames. orf1 can potentially encode a protein of 101 amino acids (aa) with 99% identity with the copy number control protein of Lacticaseibacillus paracasei. orf2 can potentially encode a protein of 230 aa with 99% identity with a replication protein from multiple species. Six inverted repeats (IR I-VI) and six direct repeats (DR I-VI) were found in pHG1. pHG2 is 2,864 bp in size, with a GC content of 39.6%. pHG2 has two orfs. orf1 might encode a protein with 99% identity with the TrsL transmembrane protein. orf2 might encode a protein with 99% identity with plasmid recombination proteins from lactic acid bacteria. Both pHG1 and pHG2 may be useful as frames for constructing lactic acid bacteria-Escherichia coli shuttle vectors.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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