Saccharomyces yeast spores are more resistant to drying and storage than vegetative cells. For the mass production of yeast spores, compressed yeast was directly inoculated into a sporulation medium (SM). The effects of inoculum size and the addition of rice wine cake (RWC) into SM on the sporulation were examined using flasks. With $1\%$ inoculum of compressed yeast, $1.45{\times}10^8/ml$ of asci was obtained. The addition of $0.5\%$ RWC into SM improved the cell growth and spore yield, and the number of asci formed was $2.31{\times}10^8/ml$. The effects of culture temperature, temperature-shift, and concentrations of inoculum, potassium acetate, and RWC on the sporulation were also evaluated using a jar fermentor. The optimum temperature for spore formation was $22^{\circ}C$ where the number of asci formed was $2.46{\times}10^8/ml$. The shift of culture temperature from initial $30^{\circ}C$ for 1 day to $22^{\circ}C$ for 3 days increased the number of asci formed to $2.96{\times}10^8/ml$. The use of $2\%$ (w/v) inoculum of compressed yeast, $2\%$ potassium acetate, and $1\%$ (w/v) RWC in SM with the shift of culture temperature of initial $30^{\circ}C\;to\;22^{\circ}C$ resulted in $90\%$ sporulation ratio and formation of $6.18{\times}10^8\;asci/ml$.
Temperature-sensitive revertant could grow on acetic acid at 23$^{\circ}C$ but not at 33$^{\circ}C$, MX9-11RX8, isolated from mutant deficient in the activity of isocitrate lyase and its properties were investigated. The activity of isocitrate lyase and specific rate of isocitrate lyase synthesis decreased according to in-crease culture temperature from 23 to 33 $^{\circ}C$ in acetic acid as carbon source. A rapid cessation of in-crease enzyme activity observed when the temperature was shift up from 23 to 33$^{\circ}C$ but cell growth was continued. On the other hand, the revertant also exhibited temperature-sensitive in n-hexade-cane medium as carbon source, and the amount of isocitric acid was nearly equal produced to that at 23 $^{\circ}C$ when the temperature shift up from 23 to 33 $^{\circ}C$.
Lee Myoung-Ro;Bae Song-Mee;Kim Tong-Soo;Lee Kwang-Jun
Journal of Microbiology
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v.44
no.4
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pp.375-382
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2006
From its initial colonization to causation of disease, Streptococcus pneumoniae has evolved strategies to cope with a number of stressful in vivo environmental conditions. In order to analyze a global view of this organism's response to heat shock, we established a 2-D electrophoresis proteome map of the S. pneumoniae D39 soluble proteins under in vitro culture conditions and performed the comparative proteome analysis to a 37 to $42^{\circ}C$ temperature up-shift in S. pneumoniae. When the temperature of an exponentially growing S. pneumoniae D39 culture was raised to $42^{\circ}C$, the expression level of 25 proteins showed changes when compared to the control. Among these 25 proteins, 12 were identified by MALDI-TOF and LC-coupled ESI MS/MS. The identified proteins were shown to be involved in the general stress response, energy metabolism, nucleotide biosynthesis pathways, and purine metabolism. These results provide clues for understanding the mechanism of adaptation to heat shock by S. pneumoniae and may facilitate the assessment of a possible role for these proteins in the physiology and pathogenesis of this pathogen.
Aromatic L-amino acid transaminase is an enzyme that is able to transfer the amino group from L-glutamate to unnatural aromatic ${\alpha}-keto$ acids to generate ${\alpha}-ketoglutarate$ and unnatural aromatic L-amino acids, respectively. Enrichment culture was used to isolate thermophilic Bacillus sp. T30 expressing this enzyme for use in the synthesis of unnatural L-amino acids. The asymmetric syntheses of L-homophenylalanine and L-phenylglycine resulted in conversion yields of >95% and >93% from 150 mM 2-oxo-4-phenylbutyrate and phenylglyoxylate, respectively, using L-glutamate as an amino donor at $60^{\circ}C$. Synthesized L-homophenylalanine and L-phenylglycine were optically pure (>99% enantiomeric excess) and continuously pre-cipitated in the reaction solution due to their low solubility at the given reaction pH. While the solubility of the ${\alpha}-keto$ acid substrates is dependent on temperature, the solubility of the unnatural L-amino acid products is dependent on the reaction pH. As the solubility difference between substrate and product at the given reaction pH is therefore larger at higher temperature, the thermophilic transaminase was successfully used to shift the reaction equilibrium toward rapid product formation.
In glycoprotein, Terminal sialic acid residues of N-linked glycan are imperative things because they prevent the recognition from asialoglycoprotein-receptor that affect the half-life of glycoproteins. So establishment of culture process for enhancing sialic acid is important to maximize sialic acid contents of glycoprotein. In this study, we investigated effects of biphasic culture of Chinese hamster ovary (CHO) cells producing albumin-erythropoietin to increase sialylation. Biphasic cultures were performed with shift of $CO_2$ concentrations and temperatures at day 5 when viable cell density was decreased and sialidase was started to be released by cell lysis. The examined temperature set points were 33, 35 and $37^{\circ}C$ respectively and the $CO_2$ concentration was 1, 5, 10 and 15%. We confirmed that sialidase activity was the lowest in biphasic culture that was shifted from normal culture condition to 1% of $CO_2$ and $33^{\circ}C$ on day 5. However, the temperature and concentration of $CO_2$ have little effect on activity of ${\alpha}2,3$-sialyltransferase. Also, sialic acid contents were enhanced 1.13-fold higher than that in control culture. In conclusion, Biphasic cultivation in CHO cells led to inhibition of sialidase activity and increases of sialylated glycan.
The Journal of the Convergence on Culture Technology
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v.6
no.3
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pp.341-346
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2020
Motion sickness or dizziness caused by visual and other sensory inconsistencies In virtual reality content seems to be a major problem. To solve the problem, research has been actively underway to satisfy the five senses. Among them, the most researches on the touch are many studies on hardness and texture, but the studies on temperature seem relatively small. Therefore, in this paper, we present a calculation model that can sense the temperature derived from the principle of heat energy moving from high temperature to low temperature, not the temperature of the material. Because heat energy is determined by the heat conductivity, temperature, and area of contact, which are the inherent characteristics of a material, the degree of heat felt by a person depends on the type of material, the temperature of the material and the area of contact with the object. The thermal energy shift per unit time of the material was calculated using the thermal conductivity law and the specific heat formula, and the thermal energy reproduction method that changes per unit time of the material was studied using the thermoelectric element.
Thioredoxin is a multifunctional protein that is ubiquitous in microorganisms, animals and plants. Previously, the expression of the Escherichia coli thioredoxin gene (trxA) was found to be negatively regulated by cAMP. In the present study, the effect of temperature on the expression of the E. coli trxA gene was investigated. In order to examine the temperature effect, the fusion plasmid pCL70 that harbors the E. coli trxA P1P2 promoter was used. The other two fusion plasmids, pJH3 and pMH521 that were constructed in different vectors which harbor the E. coli trxA P2 promoter, were also used. When the E. coli strain MC1061/pCL70 was grown in a rich medium at $25^{\circ}C$, $34^{\circ}C$ and $42^{\circ}C$, the cells grown at $42^{\circ}C$ gave the highest $\beta$-galactosidase activity. The E. coli MC1061/pJH3 and MC1061/pMG521 cells showed increased $\beta$-galactosidase activity after the shift of the culture temperature to $42^{\circ}C$. The wild-type trxA gene of the E. coli MC1061 cells produced much higher thioredoxin activity at the higher temperature. These results support the conclusion that the E. coli trxA gene is regulated in a temperature-dependent manner. Especially the expression from its P2 promoter appeared to be sensitive to temperature.
Physiological studies on the expression of Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis (Btt) gene coding for insecticidal protein in recombinant Escherichia coli 537 were carried out to identify optimal culture condition. It was necessary to shift culture temperature from 30 to $42^{\circ}C$ to express the gene. Expression of the Btt toxin gene by recombinant E. coli 537 began within one hour after induction. Complex nitrogen sources increased production of the insecticidal protein. The total insecticidal protein was 0.5 g/I when using yeast extract as a complex nitrogen source. Soybean hydrolysate showed apparently the highest induction efficiency. After induction, the cellular content of the insecticidal protein was 5.4 times higher than it had been before induction. The optimal cultivation strategy was found to grow cells for 7hours at $30^{\circ}C$ and then 5-8 hours at $42^{\circ}C$. The optimal cultivation pH for the production of insecticidal protein was 6.5. The Btt toxin produced by the recombinant E. coli 537 was found to have the same level of potency against Colorado potato beetle as the original toxin.
Bacitlus sphaericus ts-Dl290 was characterized comparatively with the wild type strain 1593 by themeasurements of the biosynthesis of total DNA, RNA and protein on the temperature-shift culturesat permissive temperature of $30^{\circ}C$ and at nonpermissive temperature of $42^{\circ}C$. The growth patterns of the wild type strain and ts-Dl290 were similar at $30^{\circ}C$, but at 4Z C the mutant almost did not grow (temperature-sensitivity). When the growth temperatures of both stains were shifted-up from $30^{\circ}C$ to $42^{\circ}C$ after a 4 hour culture, their growths were normal, but when shifted-down from $42^{\circ}C$ to $30^{\circ}C$ after a 4 h culture, the mutant did not grow. When shifted up from $30^{\circ}C$ to $42^{\circ}C$ after a 4 hculture, the DNA syntheses of the two strains were at a normal rate for 1 h, but after 1 h the biosynthesesdecreased. The rate of DNA synthesis of the wild type strain at the nonpermissive temperature was about 93%, and that of the mutant was about 50% of the ratio of the wild type strain, and the RNA synthesis of the wild type strain was maintained for 3 h, and that of the mutant for 2 h. Thereafter the RNA synthesis decreased, and the synthesis of proteins in the both strains were similarlykept high for 8 h. The reversibility of the DNA synthesis of the mutant at $42^{\circ}C$ was lessened whenthe culture times were increased.re times were increased.
Penicillin G amidase (PGA, benzylpenicillinaminohydrolase, EC 3.5.1.11) is industrially important enzyme which converts penicillin G to 6-aminopenicillanic acid (6-APA) and phenylacetic acid (PAA). The PGA in E. coli ATCC 11105 is secreted into the periplasm after removing signal sequences and becomes heterodimer which composed of two subunits, small subunit (24 kDa) and large subunit (65 kDa). In this study, the PGA gene was obtained from E. coli ATCC 11105 using PCR (polymerase chain reaction) technique. The active PGA was successfully secreated into periplasm in E. coli BL2 1(DE3) harboring pET-pga plasmid. The optimized fed-batch fermentation, consisting of a three-step shift of culture temperature from $37^{\circ}C$ to $22^{\circ}C$, gave a productivity of 19.6 U/mL with a cell growth of 62 O.D. at 600 nm.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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