Bifidobacterium bifidum OFR9 that exhibits acquired resistance to rifampicin and fluoroquinolones was selected by MNNG and multi-step mutation method. To investigate the resistance mechanism to rifampicin in the strain, RNA polymerase from B. bifidum parent strain and rifampicin-resistance OFR9 was partially purified and its sensitivity to rifampicin was assayed. The profile of RNA polymerase preparation of B. bifidum parent and B. bifidum OFR9 is similar to that of E. coli RNA polymerase that includes the basic subunits of ${\beta}$`, ${\beta},\;{\sigma},\;{\alpha}$ but which are a little different in size when they are compared with E. coli RNA polymerase subunits. RNA polymerase isolated from the parent strain was inhibited by 1${\mu}$g/ml rifampicin but that from B. bifidum OFR9 was not affected by 100${\mu}$g/ml concentration of rifampicin. RNA polymerase activity of B. bifidum OFR9 was maintained over 90% through that rifampicin concentration. This result is consistent with MIC values of in vitro test. It can be concluded that the mechanism of rifampicin resistance in B. bifidum OFR9 is due to an alteration of RNA polymerase.
The preparation of Clostridium butyricum is used as a normalizing agent for human intestinal flora. When the microbe is simultaneously used with rifampicin, it is inactivated by the antibiotic. To develop rifampicin-resistant mutants, rifampicin-sensitive strain Miyairi II 588 of C. butyricum was treated with nitrosoguanidine (NTG). To ensure stable resistance to rifampicin, we examined whether the resistance was plasmid-mediated or chromosome-mediated. It was found that the resistance of four mutant strains was not mediated by its inherent plasmid, but by the chromosomal mutation. These strains were examined for the susceptibility and resistance to other antituberculosis agents and antibiotics. The results showed that these mutants were resistant to the high concentration of the antituberculosis agents.
Bifidobacterium infantis K-525 isolated from healthy Korean was susceptible to rifampicin and fluoroquinolones and resistant to other antituberculosis agents. When the preparation of this strain is taken as a therapeutics for human intestinal disorders with rifampicin or fluoroquinolones, its therapeutic effect can not be expected. So, B, infantis RFR-525 resistant to rifampicin was obtained by treating the parent B. infantis 525 with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine. B. infantis OFR-525 was produced by serial passage of B. infantis RFR-525 on agar with 2-fold minimal inhibitory concentration of ofloxacin. B. infantis OFR-525 was resistant to antituberculosis agents and fluoroquinolones up to 4∼128 fold higher than that for the original strain. The resistance of B. infantis OFR-525 against rifampicin and ofloxacin was maintained in vivo and in vitro. Conclusively, B. infantis OFR-525 can be regarded as a promising strain which can be developed as the preparation for the treatment of the intestinal disorders of the tuberculosis patients under rifampicin and ofloxacin therapy.
The preparation of Streptococcus faecalis RSI is used as a medicinal preparation for human intestinal disorders. But the microbe in this preparation is very sensitive to rifampicin. If this preparation is taken with rifampicin, its therapeutic effect can not be expected. To develope rifampicin resistant mutants, the rifampicin sensitive strain S. faecalis RSI was treated with Nmethyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine(MNNG). Twelve strains of the MNNG-induced mutants showed distinct resistance to rifampicin and five mutants were selected for further studies. They also exhibited identical characteristics with the parent S. faecalis RSI when they were tested for lactic acid formation and growth inhibition of E. coli. From in vitro test, it was identified that rifampicin is not inactivated by certain factors of the rifampicin resistant mutants. Conclusively, the rifampicin resistant mutants are efficient strains that have insensitivity against rifampicin and original biochemical characteristics of the parent strain.
Bifidobacterium bifidum, one strain of medical preparations being on the market for human intestinal disorder, is very sensitive to rifampicin. If this preparation is taken with rifampicin, its therapeutic effect can't be expected. To develope rifampicin resistant mutants, B. bifidum was treated with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine(MNNG). All of thirty strains grown on the plates containing 10 $\mu\textrm{g}$/ml rifampicin were over 1, 000 times more resistant to rifampicin than parental strain and they were identified as B. bifidum by fructose-6-phosphoate phosphoketolase test. Three strains out of thirty, which produced almost same amount of organic acid as parental strain, were selected for further studies. They showed identical growth inhibition activity aganist E. coli compared with that of parental strain. And rifampicin was not inactivated.
Lactobacillus sporogenes was treated with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (NTG) to obtain resistant mutants to rifampicin. Fifty-eight strains of the NTG-induced mutants showed distinct resistance to rifampicin and nine mutants were selected for further studies. They also exhibited identical characteristics with the parent Lactobacillus sporogenes when they were tested for spore formation, acid formation and growth inhibition of E. coli. From in vitro test it was identified that rifampicin is not inactivated by certain factors of the rifampicin resistant mutants. It is suggested that they can be utilized as efficient normalizing agents for human intestinal flora when they are simultaneously taken with rifampicin
Rifampicin (RIF) and isoniazid (INH) are the most important drug for the treatment of Mycobacterium tuberculosis. Mutations correlated to rifampicin and isoniazid-resistance have been detected in rpoB gene and katG gene, respectively. Of the rifampicin-resistant isolates, 90% showed mutations in rpoB gene at codon 507 to 533. Isoniazid-resistant isolates analysed had a mutation in katG at codon 315. The aim of this study is to develop a pyrosequencing-based approach for rapid detection of ripampin or isoniazid resistant M. tuberculosis based on characterization of all possible mutation in the target region. For this study, the DNA selected from 35 cases of MTB PCR positive clinical sample such as bronchial washing, sputum, and pleural fluid. RIF or INH resistant was analyzed by pyrosequencing data of rpoB and katG gene. 28 (80%) and 7 (20%) of 35 MTB PCR positive DNAs were occured rifampicin-sensitivity and resistant, respectively. For INH, 30 (85.7%) and 5 (14.5%) cases were detected isoniazid-sensitivity and resistant, respectively. When pyrosequencing analysis was compared with ABI sequencing analysis, both analysis were presented same result, but pyrosequencing analysis was more rapid than ABI sequencing analysis. In conclusion, we found that pyrosequencing technology offers high accuracy, specificity, short turn around time and a high throughput in detection of rifampicin or isoniazid resistance in M. tuberculosis.
The disease tuberculosis, caused by Mycobacterium tuberculosis (MTB), remains a major cause of morbidity and mortality in developing countries. The evolution of drug-resistant tuberculosis causes a foremost threat to global health. Most drug-resistant MTB clinical strains are showing resistance to isoniazid and rifampicin (RIF), the frontline anti-tuberculosis drugs. Mutation in rpoB, the beta subunit of DNA-directed RNA polymerase of MTB, is reported to be a major cause of RIF resistance. Amongst mutations in the well-defined 81-base-pair central region of the rpoB gene, mutation at codon 450 (S450L) and 445 (H445Y) is mainly associated with RIF resistance. In this study, we modeled two resistant mutants of rpoB (S450L and H445Y) using Modeller9v10 and performed a docking analysis with RIF using AutoDock4.2 and compared the docking results of these mutants with the wild-type rpoB. The docking results revealed that RIF more effectively inhibited the wild-type rpoB with low binding energy than rpoB mutants. The rpoB mutants interacted with RIF with positive binding energy, revealing the incapableness of RIF inhibition and thus showing resistance. Subsequently, this was verified by molecular dynamics simulations. This in silico evidence may help us understand RIF resistance in rpoB mutant strains.
Shuyi Wang;Jingwen Hao;Jicheng Yang;Qianqian Zhang;Aihua Li
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.2
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pp.167-179
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2023
The rifampicin-resistant strain E9-302 of Edwardsiella ictaluri strain 669 (WT) was generated by continuous passage on BHI agar plates containing increasing concentrations of rifampicin. E9-302 was attenuated significantly by 119 times to zebrafish Danio rerio compared to WT in terms of the 50% lethal dose (LD50). Zebrafish vaccinated with E9-302 via intraperitoneal (IP) injection at a dose of 1 × 103 CFU/fish had relative percentage survival (RPS) rates of 85.7% when challenged with wild-type E. ictaluri via IP 14 days post-vaccination (dpv). After 14 days of primary vaccination with E9-302 via immersion (IM) at a dose of 4 × 107 CFU/ml, a booster IM vaccination with E9-302 at a dose of 2 × 107 CFU/ml exhibited 65.2% RPS against challenge with wild-type E. ictaluri via IP 7 days later. These results indicated that the rifampicin-resistant attenuated strain E9-302 had potential as a live vaccine against E. ictaluri infection. A previously unreported amino acid site change at position 142 of the RNA polymerase (RNAP) β subunit encoded by the gene rpoB associated with rifampicin resistance was identified. Analysis of the whole-genome sequencing results revealed multiple missense mutations in the virulence-related genes esrB and sspH2 in E9-302 compared with WT, and a 189 bp mismatch in one gene, whose coding product was highly homologous to glycosyltransferase family 39 protein. This study preliminarily explored the molecular mechanism underlying the virulence attenuation of rifampicin-resistant strain E9-302 and provided a new target for the subsequent study of the pathogenic mechanism of E. ictaluri.
Kim, Ho-Joong;Suh, Gee-Young;Chung, Man-Pyo;Kim, Jong-Won;Shim, Tae-Sun;Choi, Dong-Chull;Kwon, O-Jung;Rhee, Chong-H;Han, Yong-Chol
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.45
no.4
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pp.714-722
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1998
Background: Rifampicin (RFP) is a key component of the antituberculous short-course chemotherapy and the RFP resistance is a marker of multi-drug resistant (MDR) tuberculosis. RPoB gene encodes the $\beta$-subunit of RNA polymerase of M. tuberculosis which is the target of RFP. And the mutations of rpoB gene have been found in about 96% of rifampicin resistant clinical isolates of M. tuberculosis. So in order to find a rapid and clinically useful diagnostic method in identifying the RFP resistance, we compared the PCR -line probe method with PCR-SSCP for the detection of the rpoB gene mutation in cultured M. tuberculosis. Methods: 45 clinical isolates were collected from patients who visited Sung Kyun Kwan University Hospital. The RFP susceptibility test was referred to the referral laboratory of the Korean Tuberculosis Institute. 33 were rifampicin resistant and 12 were rifampicin susceptible. The susceptibility results were compared with the results of the PCR-BSCP and PCR-line probe method. Results: We could find rpoB mutations in 27/33(81.8%) RFP-resistant strains by PCR-line probe method, and in 23/33 (69.7%) by PCR-SSCP and there was no significant difference between two methods. There was no mutation in rifampicinn susceptible strains by both methods. Conclusion: PCR-line probe method would be a rapid, sensitive and specific method for the detection of rifampicin resistant Mycobacterium tuberculosis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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