This article provides comprehensive guidance on the maintenance, cleaning, regeneration, and storage of silica-based HPLC (High-Performance Liquid Chromatography) columns. The general considerations emphasize the importance of using in-line filters and guard cartridges to protect columns from blockage and irreversible sample adsorption. While these measures help, contamination by strongly adsorbed sample components can still occur over time, leading to an increase in back pressure, loss of efficiency, and other issues. To maximize column lifetime, especially with UHPLC (Ultra-High Performance Liquid Chromatography) columns, it is advisable to use ultra-pure solvents, freshly prepared aqueous mobile phases, and to filter all samples, standards, and mobile phases. Additionally, an in-line filter system and sample clean-up on dirty samples are recommended. However, in cases of irreversible compound adsorption or column voiding, regeneration may not be possible. The document also provides specific recommendations for column cleaning procedures, including the flushing procedures for various types of columns such as reversed phase, unbonded silica, bonded normal phase, anion exchange, cation exchange, and size exclusion columns for proteins. The flushing procedures involve using specific solvents in a series to clean and regenerate the columns. It is emphasized that the flow rate during flushing should not exceed the specified limit for the particular column, and the last solvent used should be compatible with the mobile phase. Furthermore, the article outlines the storage conditions for silica based HPLC columns, highlighting the impact of storage conditions on the column's lifetime. It is recommended to flush all buffers, salts, and ion-pairing reagents from the column before storage. The storage solvent should ideally match the one used in the initial column test chromatogram provided by the manufacturer, and column end plugs should be fitted to prevent solvent evaporation and drying out of the packing bed.
Various separation modes in HPLC, such as anion exchange (AE), reversed-phase (RP), and affinity (AF) chromatography were examined for the separation of selenium species in human blood serum and urine. While RP- and AE-HPLC were mainly used for the separation of small molecular selenium species, double column AF-HPLC achieved the separation of selenoproteins in blood serum efficiently. Further, the effluent of AF-HPLC was enzymatically hydrolyzed and then analyzed with RP HPLC for selenoamino acid study. The versatility of the hybrid technique makes the in-depth study of selenium species possible. For quantification, post column isotope dilution (ID) with $^{78}Se$ spike was performed. ORC ICP/MS (octapole reaction cell inductively coupled plasma/mass spectrometry) was used with 4 mL $min^{-1}$ Hydrogen as reaction gas. In urine sample, inorganic selenium and SeCys were identified. In blood serum, selenoproteins GPx, SelP and SeAlb were detected and quantified. The concentration for GPx, SelP and SeAlb was $22.8{\pm}3.4\;ng\;g^{-1}$, $45.2{\pm}1.7\;ng\;g^{-1}$, and $16.1{\pm}2.2\;ng\;g^{-1}$, respectively when $^{80}Se/^{78}Se$ was used. The sum of these selenoproteins ($84.1{\pm}4.4\;ng\;g^{-1}$) agrees well with the total selenium concentration measured with the ID method of $87.0{\pm}3.0\;ng\;g^{-1}$. Enzymatic hydrolysis of each selenium proteins revealed that SeCys is the major amino acid for all three proteins and SeMet is contained in SeAlb only.
A description of simple, isocratic and precise reversed phase HPLC methods is given for simultaneous quantification of pholcodine and ephedrine hydrochloride together with either carbinoxamine maleate or terfenadine in antitussive-antihistaminic oral pharmaceutical formulations. Separations were carried out on X-Terra and symmetry shield C18 column $(250\;{\times}\;4.6\;mm,\;5\;{\mu}m)$. The used isocratic elution systems were either $0.02\;M\;KH_2PO_4-acetonitrile$ in the ratio of 75 : 25 and pH adjusted to 7.70 with orthophosphoric acid or sodium hydroxide, for syrup (method A), or 0.02 octanesulphonic acid sodium salt solution-acetonitrile-acetic acid in the ratio of 75 : 25 : 0.5 for suspension (method B). The elution of both mixtures was achieved with a flow rate of 1 ml/min. Detection was carried out by UV absorbance at wavelengths of 220 and 250 nm for syrup and suspension, respectively. The quantification of the components in synthetic mixtures and actual syrup and suspension were calculated using the internal standard technique with metoclopramide HCl and codeine phosphate as internal standards (IS), respectively. The methods, for both mixtures, were validated and met all the requirements for the quality control analysis recommended by FDA and ICH.
Li, Qing Zhong;Huang, Qing Xian;Li, Shu Cui;Yang, Mei Zi;Rao, Bin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.16
no.5
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pp.355-360
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2012
A simple, sensitive and reproducible high-performance liquid chromatography (HPLC) method has been validated for determining concentrations of glutamate, glycine, and alanine in human plasma. Proteins in plasma were precipitated with perchloric acid, followed by derivatization with 6-aminoquinolyl-N-hydroxysuccinimidyl carbamate (AQC). Simultaneous analysis of glutamate, glycine, and alanine is achieved using reversed-phase HPLC conditions and ultraviolet detection. Excellent linearity was observed for these three amino acids over their concentration ranges with correlation coefficients (r)>0.999. The intra- and inter-day precision were below 10%. This method utilizes quality control samples and demonstrates excellent plasma recovery and accuracy. The developed method has been successfully applied to measure plasma glutamate, glycine, and alanine in twenty volunteers.
Silymarin is an antihepatotoxic substance isolated from the fruits of silybum mariamum. Possibly due to their antioxidant and membrane stabilizing properties, the compounds was shown to protect various organs and cells against a number of insults (Kvasnicka et al., 2003). Among the main silymarin components, [silybin($SB_A,\;SB_B$, isosilybin ($ISB_A,\;ISB_B$) silydianin (SD) and silychristin (SC)], silybin is the major pharmacologically active compound. Korean Pharmaceutical Codex (2nd ed.) describes silybin as the main substance of Cardus Marianus extract as supportive treatment of chronic inflammatory liver disorders. The aim of this work was to analyze silybin from various preparations containing cardus marianus extract, nicotinamide, and riboflavin (CNR). Nine commercial products were tested using reversed-phase HPLC-PDA assay. The limits of detection and quantification were $0.2\;{mu}g/ml$ and $1\;{mu}g/ml$, respectively. Calibration curve showed a good linearity ($r^2$=1.00000) in the range of $1{\sim}500\;{\mu}g/ml$ of silybin standard solutions.
A high-performance liquid chromatographic (HPLC) method was developed to determine buprofezin residues in hulled rice and fruits. The buprofezin residue was extracted with acetone and the extract was stepwise purified by liquid-liquid partition and Florisil column chromatography. For rice samples, acetonitrile/n-hexane partition was additionally employed to remove nonpolar lipids. Reversed phase HPLC using an octadecylsilyl column was successfully applied to separate buprofezin from sample co-extractives, as detected by ultraviolet absorption at 250 nm. Recovery experiment at the limit of quantitation validated that the proposed method could evidently determine the buprofezin residue at the level of 0.02 mg/kg. Mean recoveries from hulled rice, apple, pear, and persimmon samples fortified at three tenfold levels were in the range of 80.8~85.2%, 89.1~98.4%, 88.8~95.7% and 90.8~96.2%, respectively. Relative standard deviations of the analytical method were all less than 5%, irrespective of sample types. A selected-ion monitoring LC/mass spectrometry with positive electrospray ionization was also provided to sensitively confirm the suspected residue.
A high performance liquid chromatographic (HPLC) method was developed for the qualitative and quantitative determination of benzophenanthridine alkaloids from the methanol extracts of Hylomecon hylomeconoides and H. vernale (Papaveraceae). Achiral and chiral methods were adapted for the separation of 6-methoxydihydrosanguinarine (1), 6-acetonyldihydrosanguinarine (2) and dihydrosanguinarine (3). The achiral reversed phase HPLC method made it possible the simultaneous separation and determination of 1, 2 and 3 within 20 min on ODS column using acetonitrile-phosphate buffer (50 mM, pH 7.0) (50 : 50, v/v). The separation and determination of 1 and 2 enantiomers was available using chiral columns. The same amount of (+) and (-)-enantiomers of 1 was found from the methanol extract of specimen, indicated that 1 could be the artifact produced by the reaction of sanguinarine with methanol. H. hylomeconoides showed higher level of 1 and 3 in compared with H. vernale, especially in root samples permitting the possibility of chemical discrimination between two species.
In this work, antioxidant substance homoorientin from Pseudosasa japonica and Phyllostachys bambusoides leaves wereextracted using ultrasonic system, and analyzed by reversed-phase high performance liquid chromatography (RP-HPLC) on-line ABTS (2,2'-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) antioxidant screening method. Also, the various experimental variables were the frequency and time of ultrasonic system. From the results, homoorientin was high extracted at the experimental condition of low frequency 35 kHz and time 60 min. And the content of homoorientin in Phyllostachys bambusoides was remarkably higher than that in the Pseudosasa japonica extract.
Betulinic acid and alphitolic acid, the triterpenoids of Zyziphi Fructus, were isolated with silica gel column chromatography and used as the standard substances for the analysis. The compounds were determined with HPLC and HPTLC. They were separated on reversed phase column (Nova-Pak C18) with 0.05M Na2HPO4-methanol (19:81) in HPLC and detected at 210nm. Separation on HPTLC precoated silica gel F254 plates was carried out with chloroform-methanol (6:1) and the separated compounds were reacted with p-anisaldehyde and detected at 540nm. The contents of betulinic acid and alphitolic acid in Zyziphi Fructus from four different regions in Korea were in the range of 2.9~3.8% and 3.2~3.9%, respectively.
A reversed-phase high-performance liquid chromatographic method is described for the simultaneous determination of three antibacterial flavonoids, artocarpanone, artocarpin, and cycloartocarpin in ethyl acetate extracts from Artocarpus heterophyllus heartwoods. Separation was achieved using a TSK-gel ODS-80Tm column ($5{\mu}m$, $4.6{\times}150mm$) at $25^{\circ}C$ with a gradient elution system of methanol and water as follows: 0-8 min, 60:40; 8-27 min, 80:20; 27-35 min, 60:40, v/v, at a flow rate of 1 mL/min, and a quantitative UV detection at 285 nm. The method was validated by measuring the key parameters, including specificity, linearity, sensitivity, accuracy, repeatability and reproducibility. A high degree of specificity and sensitivity was achieved. The calibration curves for all three flavonoids showed good linearity with a coefficient of determinations ($R^2$) of ${\geq}0.9995$. The recoveries of the method were from 98-104%, with good reproducibility and repeatability (RSD values of less than 2%) were also achieved. Ethyl acetate was the best solvent for extraction of these three flavonoids using the heat reflux conditions for 1 h. This optimized sample preparation and HPLC method can be practically used for a routine standardization process of the extracts from the A. heterophyllus heartwoods.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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