Barley yellow dwarf virus (BYDV) is an economically important plant pathogen that causes stunted growth, delayed heading, leaf yellowing, and purple leaf tip, thereby reducing the yields of cereal crops worldwide. In the present study, a reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) assay was developed for the detection of BYDV in oat leaf samples. The RT-RPA assay involved incubation at an isothermal temperature (42℃) and could be performed rapidly in 5 min. In addition, no cross-reactivity was observed to occur with other cereal-infecting viruses, and the method was 100 times more sensitive than conventional reverse transcription polymerase chain reaction. Furthermore, the assay was validated for the detection of BYDV in both field-collected oat leaves and viruliferous aphids. Thus, the RT-RPA assay developed in the present study represents a simple, rapid, sensitive, and reliable method for detecting BYDV in oats.
Kim, Na-Kyeong;Lee, Hyo-Jeong;Ryu, Tae-Ho;Cho, In-Sook;Ju, Ho-Jong;Jeong, Rae-Dong
식물병연구
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제27권2호
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pp.79-83
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2021
The aim of the present study was to develop a sensitive and specific detection method for the rapid detection of apple scar skin viroid (ASSVd) in apple leaves. The resulting reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) assay can be completed in 10 min at 42℃, is 10 times more sensitive than conventional reverse transcription polymerase chain reaction, and can specifically amplify ASSVd without any cross-reactivity with other common apple viruses, including apple stem grooving virus, apple stem pitting virus, and apple chlorotic leaf spot virus. The reliability of the RT-RPA assay was assessed, and the findings suggested that it can be successfully utilized to detect ASSVd in field-collected samples. The RT-RPA assay developed in the present study provides a potentially valuable means for improving the detection of ASSVd in viroid-free certification programs, especially in resource-limited conditions.
Kim, Na-Kyeong;Lee, Hyo-Jeong;Kim, Sang-Min;Jeong, Rae-Dong
The Plant Pathology Journal
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제38권2호
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pp.159-166
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2022
Barley yellow dwarf virus (BYDV) has been a major viral pathogen causing significant losses of cereal crops including oats worldwide. It spreads naturally through aphids, and a rapid, specific, and reliable diagnostic method is imperative for disease monitoring and management. Here, we established a rapid and reliable method for isothermal reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) combined with a lateral flow strips (LFS) assay for the detection of BYDV-infected oat samples based on the conserved sequences of the BYDV coat protein gene. Specific primers and a probe for RT-RPA reacted and optimally incubated at 42℃ for 10 min, and the end-labeled amplification products were visualized on LFS within 10 min. The RT-RPA-LFS assay showed no cross-reactivity with other major cereal viruses, including barley mild mosaic virus, barley yellow mosaic virus, and rice black streaked dwarf virus, indicating high specificity of the assay. The sensitivity of the RT-RPA-LFS assay was similar to that of reverse transcription polymerase chain reaction, and it was successfully validated to detect BYDV in oat samples from six different regions and in individual aphids. These results confirm the outstanding potential of the RT-RPA-LFS assay for rapid detection of BYDV.
Kim, Sung-Woong;Lee, Hyo-Jeong;Cho, Kang Hee;Jeong, Rae-Dong
The Plant Pathology Journal
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제38권4호
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pp.417-422
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2022
Apple stem grooving virus (ASGV) is a destructive viral pathogen of pome fruit trees that causes significant losses to fruit production worldwide. Obtaining ASGV-free propagation materials is essential to reduce economic losses, and accurate and sensitive detection methods to screen ASGV-free plantlets during in vitro propagation are urgently necessary. In this study, ASGV was sensitively and accurately quantified from in vitro propagated apple plantlets using a reverse transcription droplet digital polymerase chain reaction (RT-ddPCR) assay. The optimized RT-ddPCR assay was specific to other apple viruses, and was at least 10-times more sensitive than RT-real-time quantitative PCR assay. Furthermore, the optimized RT-ddPCR assay was validated for the detection and quantification of ASGV using micropropagated apple plantlet samples. This RT-ddPCR assay can be utilized for the accurate quantitative detection of ASGV infection in ASGV-free certification programs, and can thus contribute to the production of ASGV-free apple trees.
Bovine parainfluenza virus type 5 (bPIV5) was isolated from cattle with downer cow syndrome in 2012, and included both respiratory and neurotropic pathogens from a variety of animals. In the current study, we conducted serosurveillance using sera obtained from seven Korean farms and optimized a reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) assay to detect bPIV5. The overall seropositive rate for Korean cattle was 21.4% (163/760). A farm located near the city of Milyang in Gyeoungnam province had a markedly elevated seropositive rate for bPIV5 compared to that of the other six farms. The regional seropositive rates were 4.2% (8/192) for Haman, 19.5% (18/55) for Hwasung, 73.9% (65/88) for Milyang, 26.0% (50/192) for Namwon, 1.0% (1/96) for Uljin, 13.5% (13/96) for Yeongju, and 32.7% (8/41) for Yongin. The sensitivity and specificity of three RT-PCR primer sets used to amplify the conserved fusion gene of bPIV5 were also evaluated. An RT-PCR assay using the bPIVFR3 primer set was 10-fold more sensitive than the assays using the two other primer sets and did not result in non-specific amplification. These results demonstrated that the bPIFR3 primer set can be used to detect bPIV5.
Kim, Eunjin;Park, Mi-Jeong;Jang, Yeongseon;Ryoo, Rhim;Ka, Kang-Hyeon
한국균학회지
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제49권3호
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pp.285-294
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2021
In general, mycoviruses remain latent and rarely cause visible symptoms in fungal hosts; however, some viral infections have demonstrated abnormal mycelial growth and fruiting body development in commercial macrofungi, including Lentinula edodes. Compared to other cultivated mushrooms, L. edodes is more vulnerable to viral infections as it is still widely cultivated under near-natural conditions. In this study, we investigated whether Korean wild strains of L. edodes were infected by RNA mycoviruses that have previously been reported in other parts of the world (LeSV, LePV1, LeV-HKB, LeNSRV1, and LeNSRV2). Using specific primer sets that target the RNA-dependent RNA polymerase genes of each of the RNA mycovirus, reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) was used to detect viral infection. Viral infection was detected in about 90% of the 112 wild strains that were collected in Korea between 1983 and 2020. Moreover, multiple infections with RNA mycoviruses were detected in strains that had normal fruiting bodies. This work contributes to our understanding of the distribution of RNA mycoviruses in Korea and the impact of multiple viral infections in a single strain of L. edodes.
Infectious pancreatic necrosis virus (IPNV)는 치어에 감염되어 치명적인 질병을 유발하는, 양식산업에 있어 중요한 어류 병원체이다. 본 연구에서는 IPNV를 신속, 정확하게 진단하는 방법을 개발하고자 IPNV의 항원성 단백질인 VP2 유전자 부분에서 선택한 primers를 이용하여 역전사-중합효소연쇄반응법(Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction, RT-PCR)을 실시하였다. RT-PCR 증폭법으로 순수분리도니 IPNV dsRNA 40 ng 정도의 적은 양도 확인 할 수 있었으며, IHNV와 같은 다른 어류 병원체의 게놈을 RT-PCR templates로 사용하였을 경우는 어떠한 PCR 산물도 검출되지 않는 특이성을 보였다. 특히 유전자의 분리없이 조직 그 자체를 대상으로 RT-PCR을 행하는 in situ RT-PCR 방법으로 IPNV가 감염된 넙치 (Paralichthy olivaceus) 치어의 조직에서 IPNV 감염을 신속하게 확인할 수 있었다. 따라서 RT-PCR 및 in situ RT-PCR 방법은 IPNV를 신속, 정확하게 진단하는데 활용될 수 있을 것으로 생각된다.
A new reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) method for the Potato leafroll virus (PLRV) was developed and compared with conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) to address its advantages over RTPCR. RT-LAMP primers were designed from the open reading frame 3 (ORF3) sequence of PLRV. The RT-LAMP reactions were conducted without or with a set of loop primers. By real-time monitoring using Turbimeter, the RT-LAMP (with loop primers) detects PLRV in less than 30 min, compared to 120 min of RT-PCR. By adding fluorescent reagent during the reaction, final products of the RT-LAMP were fluorescently visualized under UV light or could be differentiated by naked-eye inspection under normal light. The RT-LAMP was extremely sensitive, about 2000-fold more sensitive than RT-PCR. This study presents great potential of the RT-LAMP for diagnosis and PLRV epidemiology because RT-LAMP method is speedy, sensitive, inexpensive, and convenient.
피부에서 melanin은 자외선 차단의 주요한 역할을 한다. Tyrosinase는 멜라닌 생합성과정에서 초기 단계에 관여하는 중요한 효소로서 이것의 조절을 통한 피부 멜라닌화 억제에 관해 많은 연구가 되어져왔다. 본 연구에서는 해녀콩 추출물에서 mushroom tyrosinase 활성억제, B16F10 melanoma 세포를 이용한 dopa oxidase 활성억제 및 멜라닌 합성 억제 효과를 확인하였다. Tyrosinase mRNA 발현에서의 억제 효과를 확인하기 위하여 RT-PCR을 이용하였으며, $CHCI_3$ 층에서 분리해낸 A 분획에서 tyrosinase mRNA 발현을 억제시킴을 확인하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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