Park, Jong-Geun;Kim, Min;Choi, Yong-Keel;Yoon, Sung-Nyo
Journal of Microbiology
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v.34
no.1
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pp.1-6
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1996
The nucleic acid of Synechococcus sp. cyanophage was identified as double-stranded DNA by the result of digestion with enzymes such as exonucleases, DNase, and S1 nuclease, and by acridine orange staining. The cyanophage DNA was cleaved with several restriciton ehdonucleases such as ApaI, BamHI, Bg/II, HaeIII, Eco RI, HindIII, PstI, AND aPAI gave the clearest sets of bands on agarose gels and the fragment numbers for each were 12, 20, 29, 20, and 7, respectively. The sums of the size from Bam HI and PstI digestions were estimated approximately 227$\pm$4 kb, which are in agreement with the result of the pulsed field gel electrphoresis. This virus is thought to have the largest genosome among those of known cyanophages, which corresponds to the largest haed ot 90 nm when compared with the head sizes of cyanophages discovered since 1963.
The studies on detection of the Strawberry mottle virus (SMoV) have been conducted in Poland for breeding programme purpose and for producers of strawberry plant material. Leaf samples collected from infected strawberry plants were grafted on Fragaria sp. Indicators which were maintained in greenhouse for further study. Seven Fragaria vesca var. semperflorens 'Alpine' indicators infected by SMoV were used for the study aimed on molecular characterization of virus isolates. Partial RNA2 was amplified from total nucleic acids using the RT-PCR method. The obtained amplicons separately digested with BfaI, FauI, HaeIII, HincI, and TaqI enzymes showed different restriction profiles. The nucleotide sequences analysis of RNA2 fragment confirmed the genetic diversity of the SMoV isolates as their similarity ranged from 94.7 to 100%. Polish isolates shared 75.7-99.2% identity with sequence of the virus strains from the Czech Republic, the Netherlands, and Canada. Phylogenetic analysis resulted in grouping of the isolates found in Poland together with one of the Czech strain whereas two other from the Czech and the strains from the Netherlands and Canada created the separate cluster.
Roots of Glycine max and Miscanthus sinensis and soil samples were collected from various field sites at Goesan, Chungbuk in Korea. Microscopic observations of the roots indicated high colonization rates of both arbuscular mycorrhizal fungi(AMF) and other fungi. The partial small subunit of ribosomal DNA genes were amplified with the genomic DNA extracted from their roots by nested polymerase chain reaction(PCR) with universal primer NS1 and fungal specific primers AML Restriction fragment length polymorphism(RFLP) was analyzed using the combinations of three restriction enzymes, HinfI, AluI and AsuC21. Nucleotides sequence analysis revealed that ten sequences from Miscanthus sinensis and one sequence from Glycine max were close to those of arbuscular mycorrhizal fungi. Also, 33% of total clones amplified with NS31-AM1 primers from M. sinensis and 97% from G. max were close to Fusarium oxysporum or other pathogenic fungi, and they were successfully distinguished from AME Results suggested that these techniques could help to distinguish arbuscular mycorrhizal fungi from root pathogenic fungi in the plant roots. Especially, DNA amplified by these primers showed distinct polymorphisms between AMF and plant pathogenic species of Fusarium when digested with AsuC21.
Hypoderma spp. larvae cause subcutaneous myiasis in several animal species. The objective of the present investigation was to identify and characterize morphologically and molecularly the larvae of Hypoderma spp. collected from cattle (Bos taurus taurus) and red deer (Cervus elaphus) in the district of Castelo Branco, Portugal. For this purpose, a total of 8 larvae were collected from cattle (n=2) and red deer (n=6). After morphological identification of Hypoderma spp. larvae, molecular characterization was based on PCR-RFLP and mitochondrial CO1 gene sequence analysis. All larvae were morphologically characterized as the third instar larvae (L3) of H. actaeon. Two restriction enzymes were used for molecular identification of the larvae. TaqI restriction enzyme was not able to cut H. actaeon. However, MboII restriction enzyme differentiated Hypoderma species showing 210 and 450 bp bands in H. actaeon. Furthermore, according to the alignment of the mt-CO1 gene sequences of Hypoderma species and to PCR-RFLP findings, all the identified Hypoderma larvae were confirmed as H. actaeon. This is the first report of identification of Hypoderma spp. (Diptera; Oestridae) from cattle and red deer in Portugal, based on morphological and molecular analyses.
The 7.1 Mdal Xbaf fragment of Bacillus pasteurii ATCC 11859 containing gene for urease was inserted into the Xbal site of bifunctional plasmid pGR71, and its urease gene was cloned and expressed in E. coil RRI. But the cloned gene was not expressed in Bacillus subtilis BR151 in consequence of deletion of inserted DNA fragment. The recombinant plasmid thus formed was named pGU66. The restriction map of the plasmid pGU66 was determined, and the size of the plasmid was estimated to be 12.6 Mdal by double digestion of restriction enzymes of the plasmid. The urease of the cloned strain was accumulated in periplasmic space and very similiar to that of donor strains in their enzymatic properties.
Although Mycobacterium tuberculosis complex strains remain responsible for the majority of diseases caused by mycobacterial infections worldwide, the increase in HIV infections has allowed for the emergence of other non-tuberculous mycobacteria as clinically significant pathogens. However, Mycobacterium species has a long period of incubation, and requires serious biochemical tests such as niacin, catalase, and nitrate test that are often tedious. The development of rapid and accurate diagnostics can aid in the early diagnosis of disease caused by Mycobacterium. The current DNA amplification and hybridization methods that have been developed target several genes for the detection of mycobacterial species such as hps65, 16S rDNA, rpoB, and dnaj. These methods produce rapid and accurate results. In this study, PCR-restriction fragment length polymorphism analysis(PCR-RFLP) based on the region of the rpoB gene was used to verify the identification of non-tuburculosis Mycobacterium species. A total of 8 mycobacterial reference strains and 13 clinical isolates were digested with restriction enzymes such as Msp I in this study. The results of using this process clearly demonstrated that all 13 specimens were identified by rpoB gene PRA method. The PCR-RFLP method based on the rpoB gene is a simple, rapid, and accurate test for the identification of Mycobacterium.
Phytoplasmas were discovered in diseased Elaeocarpus sylvestris trees growing on Jeju Island that showed symptoms of yellowing and darkening in the leaves. Leaf samples from 14 symptomatic plants in Jeju-si and Seogwipo-si were collected and phytoplasma 16S rRNA was successfully amplified by nested polymerase chain reaction using universal primers. The sequence analysis detected two phytoplasmas, which showed 99.5% identity to 'Candidatus Phytoplasma asteris' and 'Ca. P. malaysianum' affiliated to 16SrI and 16SrXXXII groups, respectively. Through polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism (RFLP) analyses using the AfaI (RsaI) restriction enzyme, the presence of two phytoplasmas strains as well as cases of mixed infection of these strains was detected. In a virtual RFLP analysis with 17 restriction enzymes, the 16S rRNA sequence of the 'Ca. P. asteris' strain was found to match the pattern of the 16SrI-B subgroup. In addition, the phytoplasmas in the mixed-infection cases could be distinguished using specific primer sets. In conclusion, this study confirmed mixed infection of two phytoplasmas in one E. sylvestris plant, and also the presence of two phytoplasmas (of the 16SrI and 16SrXXXII groups) in Jeju Island (Republic of Korea).
The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.35
no.1
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pp.69-76
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2000
Members of the genus Acinetobacter are recognized as newer pathogens of the nosocomial infection with an increasing frequency in recent years. Strains that belonged to A. calcoaceticus A. baumannii complex (genomic species 1, 2, 3, and 13TU) were major groups associated with nosocomial infection. Phenotypic identification was unreliable and laborious method to classify Acinetobacter strains into 19 genomic species. Rapid and reliable identification of clinical isolates is essential to diagnosis and epidemiology of Acinetobacter. We investigated the suitability of amplified ribosomal DNA restriction analysis (ARDRA) to identify genomic species of 131 Acinetobacter isolates. The 16S rRNA genes (ribosomal DNA) were enzymatically amplified and the amplified PCR products were restricted independently with the enzymes, AluI, CfoI, and MboI. Genomic species of Acinetobacter was classified by the combinations of restriction patterns. The analysis was showed that restriction profiles were characteristic for each genomic species. One hundred fourteen isolates were identified as A. baumannii, twelve were identified as genomic species 13TU, and one was identified as genomic species 3. Four isolates were found to be unknown organisms. All of the isolates which were identified to A. baumannii by phenotypic tests were completely discriminated into A. baumannii and genomic species 13TU by ARDRA. This study demonstrates that ARDRA is a rapid and simple techniques for the identification of Acinetobacter species according to the genomic species.
Erwanto, Yuny;Abidin, Mohammad Zainal;Muslim, Eko Yasin Prasetyo;Sugiyono, Sugiyono;Rohman, Abdul
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.27
no.10
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pp.1487-1492
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2014
This research applied and evaluated a polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism (PCR-RFLP) using cytochrome b gene to detect pork contamination in meatballs from local markets in Surabaya and Yogyakarta regions, Indonesia. To confirm the effectiveness and specificity of this fragment, thirty nine DNA samples from different meatball shops were isolated and amplified, and then the PCR amplicon was digested by BseDI restriction enzyme to detect the presence of pork in meatballs. BseDI restriction enzyme was able to cleave porcine cytochrome b gene into two fragments (131 bp and 228 bp). Testing the meatballs from the local market showed that nine of twenty meatball shops in Yogyakarta region were detected to have pork contamination, but there was no pork contamination in meatball shops in Surabaya region. In conclusion, specific PCR amplification of cytochrome b gen and cleaved by BseDI restriction enzymes seems to be a powerful technique for the identification of pork presence in meatball because of its simplicity, specificity and sensitivity. Furthermore, pork contamination intended for commercial products of sausage, nugget, steak and meat burger can be checked. The procedure is also much cheaper than other methods based on PCR, immunodiffusion and other techniques that need expensive equipment.
Kang Ju-Hyung;Kim Bo-Hye;Lee Sun-Yi;Kim Yeong-Jin;Lee Ju-Won;Park Young Min;Ahn Soon-Cheol
Journal of Life Science
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v.15
no.6
s.73
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pp.851-856
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2005
Although valuable microbes have been isolated from the soil for the various productions of useful components, the microbes which can be cultivated in the laboratory are only $0.1-1\%$ of all microbes. To solve this problem, the study has recently been tried for making the valuable components from the environment by directly separating unculturable micrbial DNA in the soil. But it is known that humic acid originated from the soil interrupts various restriction enzymes and molecular biological process. Thus, in order to prevent these problems, this study modified the method separated soil DNA with phenol, CTAB and PEG. In order to compare the degree of purity for each DNA and the molecular biological application process, $A_{260}/A_{280}$ ratio, restriction enzymes, and PCR were performed. In case of DNA by the modified method, total yield of DNA was lower but $A_{260}/A_{280}$ ratio was higher than the previously reported methods. It was confirmed that the degree of purity is improved by the modified method. But it was not cut off by all kinds of tested restriction enzymes because of the operation of a very small amount of interrupting substances. When PCR was operated with each diluted DNA in different concentrations and GAPDH primer, the DNA by the modified method could be processed for PCR in the concentration of 100 times higher than by the previously reported separation method. Therefore, this experiment can find out the possibility of utilization for the unknown substances by effectively removing the harmful materials including humic acid and help establishing metagenomic DNA library from the soil DNA having the high degree of purity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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