Background: B cell subset has been divided into B-1 cells and B-2 cells. B-1 cells are found most prominently in the peritoneal cavity, as well as constituting a small pro portion of splenic B cells and they are larger and less dense than B-2 cells in morphology. This study was designed to compare the differences in their proliferation and differentiation between B-1 and B-2 cell. Methods: We obtained sorted B-1 cells from peritoneal fluid and B-2 cells from spleens of mice. Secreted IgM was measured by enzyme-linked immunosorbent assay. Entering of S phase in response to LPS-stimuli was measured by proliferative assay. Cell cycle analysis by propidium iodide was performed. p21 expression was assessed by real time PCR. Results: Cell proliferation and cell cycle progression in B-1 and B-2 cells, which did not occur in the absence of LPS, required LPS stimulation. After LPS stimulation, B-1 and B-2 cells were shifted to Sand G2/M phases. p21 expression by resting B-1 cells was higher than that of resting B-2 cells. Conclusion: B-1 cells differ from conventional B-2 cells in proliferation, differentiation and cell cycle.
Tannase catalyzes the hydrolysis of gallic acid esters and hydrolysable tannins. Twenty-two Lactobacillus strains with tannase activity were isolated from 7 types of kimchi. A polymerase chain reaction-based assay targeting the recA gene assigned all isolates to either Lactobacillus plantarum or Lactobacillus pentosus. The tannase activities of isolates measured in whole cells and cell-free extracts varied even within each species. The activities of the isolates varied with the assay method, but both methods indicated that isolate LT7 (identified as L. pentosus) showed the highest activity. The results of thin layer chromatography and high performance liquid chromatography, respectively, showed that tannic acid and gallic acid degraded to pyrogallol in resting L. pentosus LT7 cells. Therefore, the putative biochemical pathway for the degradation of tannic acid by L. pentosus implies that tannic acid is hydrolyzed to gallic acid and glucose, with the formed gallic acid being decarboxylated to pyrogallol. This study revealed the possible production of pyrogallol from tannic acid by the resting cell reaction with L. pentosus LT7.
The eventual goal of this study is to elucidate roles of plant terpenoids (e.g., cymene, limonene and others) as natural substrates in the cometabolic biodegradation of PCBs and to develop an effective PCB bioremediation technology. The aim of this study was to examine how plant terpenoids, as natural substrates or inducers would affect the biodegradation of PCB congeners. Various PCB degraders that could grow on biphenyl and several terpenoids were tested for their PCB degradation capabilities. The PCB congener degradation activities were first monitored through resting cell assay technique that could detect degradation products of the substrate. The congener removal was also confirmed by concommitant GC analysis. The PCB degraders, Pseudononas sp. P166 and Caynebacterium sp. T104 were found to grow on both biphenyl and terpenoids ((S)-(-) limonene, p-cymene and ${\alpha}-terpinene$) whereas Arthrobacter B1B could not grow on the terpenoids as a sole carbon source. The strain B1B grown on biphenyl showed a good degradation activity for 4,4'-dichlorobiphenyl (DCBp) while strains P166 and T104 gave about 25% of B1B activity. Induction of degradation by cymene, limonene and terpine was hardly detected by the resting cell assay technique. This appeared to be due to relatively lower induction effect of these terpenoids compared with biphenyl. However, a subsequent GC analysis showed that the congener could be removed up to 30% by the resting cells of T104 grown on the terpenoids. This indicates that terpenoids, widely distributed in nature, could be utilized as both growth and/or inducer substrate for PCB biodegradation.
The pchAB genes of Pseudomonas sp. DJ-12 produce the enzymes of 4-chlorobipheny] (4CB) dioxygenase and dihydrodiol dehydrogenase which act on the first and second steps in degradation of 4CB and biphenyl. The genes were cloned in E coli XLI-Blue. The pcbAB genes of about 2.2 kb in size were contained in the pCUlO1 hybrid plasmid in the cloned cell of CUIOI. The genes were found to have their own promoter and three restriction sites for HindlII. 2,3-dihydroxybiphenyl was detected by the resting cell assay, as the metabolite transformed from biphenyl by the cloned cell of CUIOI. This means that the pcbAB genes are well expressed in E. coli. But dechlorination was unlikely involved in the pchAB gene expression but was believed to occur by functioning on 4CBA produced after ring-cleavage of 4CB.
The aim of this study was to examine how plant terpenoids, as natural growth substrates or inducers, would affect the biodegradation of PCB congeners. Various PCB degraders that could grow on biphenyl and several terpenoids were tested for their PCB degradation capabilities. Degradation activities of the PCB congeners, 4,4-dichlorobiphenyl (4,4-DCBp) and 2,2-dichlorobiphenyl (2,2-DCBp), were initially monitored through a resting cell assay technique that could detect their degradation products. The PCB degraders, Pseudomonas ((S)-(-) limonene, p-cymene and $\alpha$-terpinene) whereas Arthrobacter sp. B1B could not grow on the terpenoids as a sole carbon source. The B1B strain grown on biphenyl exhibited good degradation activity for 4,4-DCBp and 2,2-DCBp, while the activity of strains P166 and T104 was about 25% that of the B1B strain, respectively. Concomitant GC analysis, however, demonstrated that strain T104, grown on (S)-(-) limonene, p-cymene and $\alpha$-terpinene, could degrade 4,4-DCBp up to 30%, equivalent to 50% of the biphenyl induction level. Moreover, strain T104 grown on (S)-(-) limonene, could also degrade 2,2-DCBp up to 30%. This indicates that terpenoids, widely distributed in nature, could be utilized as both growth and/or inducer substrate(s) for PCB biodegradation in the environment.
Kim, Jung Sik;Shin, Dong-Chul;Woo, Min-Yeong;Kwon, Myung-Hee;Kim, Kyongmin;Park, Sun
IMMUNE NETWORK
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v.12
no.5
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pp.207-212
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2012
T cell immunoglobulin mucin domain (TIM)-3 is an immunomodulatory molecule and upregulated in T cells by several cytokines. TIM-3 also influences mast cell function but its transcriptional regulation in mast cells has not been clarified. Therefore, we examined the transcript level and the promoter activity of TIM-3 in mast cells. The TIM-3 transcript level was assessed by real-time RT-PCR and promoter activity by luciferase reporter assay. TIM-3 mRNA levels were increased in HMC-1, a human mast cell line by TGF-${\beta}1$ stimulation but not by stimulation with interferon (IFN)-${\alpha}$, IFN-${\lambda}$, TNF-${\alpha}$, or IL-10. TIM-3 promoter -349~+144 bp region relative to the transcription start site was crucial for the basal and TGF-${\beta}1$-induced TIM-3 promoter activities in HMC-1 cells. TIM-3 promoter activity was increased by over-expression of Smad2 and Smad4, downstream molecules of TGF-${\beta}1$ signaling. Our results localize TIM-3 promoter activity to the region spanning -349 to +144 bp in resting and TGF-${\beta}1$ stimulated mast cells.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.17
no.3
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pp.127-135
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2016
Two-pore domain potassium (K2P) channels are the targets of physiological stimuli, such as intracellular pH, bioactive lipids, and neurotransmitters, and they set the resting membrane potential. Some types of K2P channels play a critical role in both apoptosis and tumoriogenesis. Among the K2P channels, no antagonists of the TREK2 channel have been reported. The aim of the present study was to determine if the TREK2 channel is blocked and whether cell proliferation is influenced by flavonoids in the TREK2 overexpressing HEK293 cells (HEKT2). The electrophysiological current was recorded using single channel patch clamp techniques and cell proliferation was measured using a XTT assay. The electrophysiological results showed that the TREK2 channel activity was reduced to $91.5{\pm}13.1%$ (n=5) and $82.2{\pm}13.7%$ (n=5) by flavonoids, such as epigallocatechin-3-gallate (EGCG) and quercetin in HEKT2 cells, respectively. In contrast, the EGCG analogue, epicatechin (EC), had no significant inhibitory effects on the TREK2 single channel activity. In addition, cell proliferation was reduced to $69.4{\pm}14.0%$ (n=4) by ECGG in the HEKT2 cells. From these results, EGCG and quercetin represent the first known TREK2 channel inhibitors and only EGCG reduced HEKT2 cell proliferation. This suggests that the flavonoids may work primarily by inhibiting the TREK2 channel, leading to a change in the resting membrane potential, and triggering the initiation of a change in intracellular signaling for cell proliferation. TREK2 channel may, at least in part, contribute to cell proliferation.
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.25
no.4
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pp.603-607
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2011
The purpose of this study is to investigate the effects of Carthami Flos on interstitial cells of Cajal in the gastrointestinal tract. Many regions of the tunica muscularis of the gastrointestinal (GI) tract display spontaneous contraction. These spontaneous contractions are mediated by periodic generation of electrical slow waves. Recent studies have shown that the interstitial cells of Cajal (ICCs) act as pacemakers and conductors of electrical slow waves in gastrointestinal smooth muscles. We investigated the cytotoxicity activity, antioxidant activity, and pacemaking activity. The cytotoxicity activity was measured by MTT (3-[4,5-dimethylthiazol-2-yl]-2,5-diphenyltetrazolium bromide) assay. Antioxidant activities were determined by DPPH (1.1-diphenyl-2-picrylhydrazyl) radical scavenging capacity assay and DCFH-DA (2,7-dichlorofluorescein diacetate) method. The effects of Carthami Flos on the pacemaker potentials in cultured ICCs from murine small intestine were investigated by using whole-cell patch-clamp techniques at $30^{\circ}C$. The addition of Carthami Flos (5, 10, $30{\mu}g$/ml) depolarized the resting membrane potentials in a concentration dependent manner. These results suggest that the GI tract can be targets for Carthami Flos, and their interaction can affect intestinal motility.
Yippee-like proteins, which have been identified as the homolog of Drosophila yippee protein containing a zinc-finger domain, are known to be highly conserved among eukaryotes. However, their functional roles are still poorly understood. Recently we initiated ordered differential display (ODD)-polymerase chain reaction (PCR) to isolate genes of which expressions are altered following activation of human T cells. On the ODD-PCR image, one PCR-product detected in unstimulated T cells was not detectable at the time when the activated T cells traversed near $G_1/S$ boundary following activation by immobilized anti-CD3. Cloning and nucleotide sequence analysis revealed that the PCR-product was yippee-like 5 (YPEL5) gene, which was known as a human homolog of the Drosophila yippee gene. Northern blot analysis confirmed the amount of ${\sim}2.2$ kb YPEL5 mRNA expression detectable in unstimulated T cells was sustained until 1.5 hr after activation and then rapidly declined to undetectable level by 5 hr. Ectopic expression of YPEL5 gene in human cervix epitheloid carcinoma HeLa cells caused a significant reduction in cell proliferation to the level of 47% of the control. Expression of GFP-YPEL5 fusion protein in HeLa cells showed its nuclear localization. These results demonstrated that the expression level of human YPEL5 mRNA was negatively regulated in the early stage of T cell activation, and suggested that YPEL5 might exert an inhibitory effect on the cell proliferation as a nuclear protein.
Kim, Chi-Kyung;Sung, Tae-Kyung;Nam, Jung-Hyun;Kim, Chang-Young;Lee, Jae-Koo
Korean Journal of Microbiology
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v.32
no.1
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pp.40-46
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1994
The pcb genes of Pseudomonas sp. DJ-12 coded for the catabolism of polychlorinated biphenyl (PCBs) and biphenyl. The products of the pcbCD genes were 2,3-dihydroxy-4'-chlorobiphenyl dioxygenase and meta-cleavage product (MCP) hydrolase, which acted on degradation of 2,3-dihydroxy-4'-chlorobiphenyl to 4-chlorobenzoate. The pcbCD genes were cloned in E. coli XLl-Blue, and then the pcbD gene was further subcloned. As a metabolite transformed from 2,3-dihydroxybiphenyl by the cloned cell of E coli CU103, benzoate was detected by the resting cell assay. The enzyme activities of 2,3-dihydroxybiphenyl dioxygease and MCP hydrolase produced in the cloned cells E. coli CU103 and CU105 were about 17 and 3 times higher than those of Pseudomonas sp. DJ-12, respectively.
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