The uncaped genomic RNA of bovine viral diarrhea virus (BVDV) initiates translation by recruitment of eukaryotic translation initiation factors at the internal ribosome entry site (IRES). N-terminal protease ($N^{pro}$) is the first translation product of the open reading frame (ORF). By using the vaccinia virus SP6 RNA polymerase transient expression system, we showed previously that deletion of $N^{pro}$ region reduced translation by 21%. To better understand the biological significance of $N^{pro}$ for translation, we carried out a mutational analysis of the $N^{pro}$ region of BVDV cloned in the intercistronic region of a bicistronic reporter plasmid. We constructed a bicistronic expression vector in which the entire 5 UTR and the mutated $N^{pro}$ region (${\Delta}386-901$, ${\Delta}415-901$ and ${\Delta}657-901$) was cloned between two reporter genes, chloramphenicol acetyltransferase (CAT) and luciferase (LUC). In vivo translation analyses showed that $N^{pro}$ region was dispensible for efficient translation. The results indicate that the $N^{pro}$ region is not essential for BVDV RNA translation and the 3' boundary of BVDV IRES is expanded into $N^{pro}$ region, suggesting that $N^{pro}$ may not play a major role in BVDV replication.
FANCJ is a DNA helicase which contributes genome stability by resolving G-quadruplex DNA from 5' to 3' direction. In addition to main ATPase helicase core, FANCJ has the protein binding region at its C-terminal part. BRCA1 and BLM are the binding partner of FANCJ and these protein-protein interactions contribute genomic stability and the proper response to replication stress. As the first attempt for studying FANCJ-BLM interaction, we prepared BLM binding region of FANCJ and characterized with CD and NMR spectroscopy. FANCJ (881-941) with N-ter 6xHis was purified as the oligomer. Secondary structure prediction based on CD data revealed that FANCJ (881-941) composed with ${\beta}$ sheet, turn and coils.$^1H-^{15}N$ HSQC spectra showed nonhomogeneous peak intensities with less number of peaks comparing than the number of amino acids in the construct. It indicated that optimization should be necessary for detailed further structural studies.
The nucleotide sequence of pZMO1, a small cryptic plasmid of Zymomonas mobilis ATCC10988 was determined. Analysis of 1,680 bp of sequence revealed $69\%$ identity with Shigella sonnei plasmid, pKYM and $61\%$ identity with Nostoc sp. ss DNA replicating plasmid. Analysis of a deduced amino acid sequence of an orf of pZMO1 revealed $75\%$ identity and $90\%$ similarity with the repA gene of Synechocystis sp. plasmid pCA2.4. The upstream region of the repA gene of pZMO1 possesses six directed repeat sequences and two inverted repeat sequences at downstream of the IR consensus sequence of nick region of rolling circle replication (RCR) plasmid. A typical terminator hairpin structure was found at the downstream region of repA gene. Degradation of single-stranded plasmid DNA by S1 nuclease was detected by Southern hybridization. It suggests that pZMO1 replicates by a rolling circle mechanism in Z. mobilis ATCC10988 cells.
This study focused on the variations in the non-coding sequences between ctxB and rstR of various CTX phages. The non-coding sequences of CTX-1 and CTX-cla are phage type-specific. The length of the non-coding region of CTX-1 and CTX-cla is 601 and 730 nucleotides, respectively. The non-coding sequence of CTX phage could be divided into three regions. There is a phage type-specific Variable region between two homologous Common regions (Common regions 1 and 2). The non-coding sequence of RS1 element is similar to CTX-1 except that Common region 1 is replaced by a short RS1-specific sequence. The non-coding sequences of CTX-2 and CTX-cla are homologous, indicating the non-coding sequence of CTX-2 is derived from CTX-cla. The non-coding region of CTX-O139 is similar to CTX-cla and CTX-2; however, it contains an extra phage type-specific sequence between Common region 2 and rstR. The variations in the non-coding sequences of CTX phages might be associated with the difference in the replication efficiency and the directionality in the integration into the V. cholerae chromosome.
Japanese encephalitis virus (JEV) persistence was established and maintained in Vero cell culture for over 1 year. Eleven clones of plaque morphology mutant JEV, with large and small plaque sizes, were obtained from the cell culture supernatant. Genomic RNA replication efficiency of the mutants in naive Vero cell appeared to correspond to their different plaque sizes. No significant changes in envelop protein ORF or in non-coding regions at both ends of the RNA genome suggested that there could be an unidentified factor(s) playing role in JEV attenuation. Unlike to the replication of wild-type JEV, the mutants did not induce severe degree of cytopathic effect in Vero cells upon infection. While obvious decrease of Bcl-2 and its mRNA expression and sharp increase of p53 in naive Vero cells infected with either wild-type JEV or the large plaque-forming mutant, those changes were not observed with the small plaque-forming one. Together with these observation, internucleosomal DNA fragmentation and chromosomal DNA profile in the Vero cells infected with the mutants suggest that an overall changes in cytopathic effect in the plaque morphology mutants-infected cells should be primarily due to the reduced genomic RNA replication and the compromised degree of p53-independent apoptosis by the virus infection at least in part.
Seo, Young-Soo;Lee, Ki-Yeon;Cho, Young-Hak;Park, Keun
Journal of the Korean Society for Precision Engineering
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v.29
no.11
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pp.1256-1263
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2012
The present study covers the ultrasonic patterning process to replicate micro-patterns on a polymer substrate. The ultrasonic patterning process uses ultrasonic waves to generate frictional heat between an ultrasonic horn and the polymer substrate, from which the surface region of the polymer substrate is softened sufficiently for the replication of micro-patterns. The ultrasonic patterning process can divided into two categories according to the direction of vibration transmission: direct patterning and indirect patterning. The direct patterning uses a patterned horn, and the ultrasonic vibration is transferred directly from the patterned horn to the substrate. On the contrary, the indirect patterning process uses a plain horn, and the micro-patterns are engraved on a mold that is located below the substrate. Thus, the micro-patterns are replicated as an indirect manner. In this study, these direct and indirect patterning processes are compared in terms of the replication characteristics. Additionally, the possibility of double-side patterning is also discussed in comparison with the conventional single-side patterning process.
Chang Seok Kee;Oh Il Ung;Jeong Jayoung;Ahn Kwang Soo;Sohn Yeowon
YAKHAK HOEJI
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v.49
no.3
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pp.217-224
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2005
Human Immunodeficiency Virus type 1 (HIV-l) based lentivirus vector has demonstrated great potential as gene therapy vectors mediating efficient gene delivery and long-term transgene expression in both dividing and nondividing cells. However, for clinical studies it must be confirmed that vector preparations are safe and not contaminated by replication competent lentivirus (RCL) related to the parental pathogenic virus, HIV-l. In this study, we would like to establish the method for titration and RCL detection of lentivirus vector. The titration was determined by vector expression containing the green fluorescent protein, GFP in transduced cells. The titer was $1{\times}10^7$ Transducing Unit/ml in the GFP expression assay and $8.9{\times}10^7$ molecules/ml in the real-time PCR. Also, for the detection of RCL, we have used a combination method of PCR and p24 antigen detection. First, PBS/psi and VSV-G region in the genomic DNA of transduced cells was detected by PCR assay. Second, transfer and expression of the HIV-1 gag gene was detected by p24 ELISA. In an attempt to amplify any RCL, the transduced cells were cultured for 3 weeks (amplification phase) and the supernatant of amplified transduced cell was used for the second transduction to determine whether a true RCL was present (indicator phase). Analysis of cells and supernatant at day 6 in indicator phase were negative for PBS/psi, VSV-G, and p24 antigen. These results suggest that they are not mobilized and therefore there are no RCL in amplification phase. Thus, real-time PCR is a reliable and sensitive method for titration and RCL detection of lentivirus vector.
Yeat-Escherichia coli shuttle vectors were constructed by combination of various functional segments such as autonomous replicating sequence (ARS1), centromere region (CEN3), origin of replication of 2 $\mu$m plasmid (2 $\mu$m OR). Transformation efficiency, stability and copy number of constructed vectors were analyzed in yeast strains, SHY4(cir$^+$) containing 2 $\mu$m plasmid and NNY1(cir$^{\circ}$) without it. The results showed that centromere containing plasmids were very stable and existed at one copy per cell; fused replication system (2$\mu$m OR and ARS1) containing Plasmids were more stable and higher copy number than one replicon containing plasmids ; presence of endogenous 2$\mu$m plasmid influenced on stability and copy number of 2 $\mu$m based plasmids.
$Potato$$virus$$X$ (PVX) contains $cis$-acting elements including stem-loop 1 (SL1) RNA at the 5' region; SL1 is conserved among all potexviruses. The SL1 at the positive-sense RNA, SL1(+), is required for PVX RNA replication, cell-to-cell movement, and translation. Previous research demonstrated that SL1(+) RNA also serves as the origin of assembly for encapsidation of PVX RNA. To identify the essential sequences and/or regions for capsid protein (CP) subunit recognition within SL1(+) RNA, we used electrophoretic mobility shift assays (EMSA), UV cross-linking, and yeast three-hybrid analyses. The EMSA and UV cross-linking analyses with PVX CP subunits and RNA transcripts corresponding to the SL1(+) RNA showed that the SL1(+) RNA formed complexes with CP subunits. We also conducted EMSA and yeast three-hybrid analyses with RNAs containing various mutations of SL1(+) RNA elements. These analyses indicated that SL1(+) RNA is required for the interaction with PVX CP and that the RNA sequences located at the loop C and tetra loop of the SL1(+) are crucial for CP binding. These results indicate that, in addition to being important for RNA accumulation, the SL1(+) RNA from the 5' region of the PVX genome is also required for specific binding of PVX CP.
RNase MRP is a ribonucleoprotein complex with a site-specific endonuclease activity. Its original substrate for cleavage is the small mitochondrial RNA near the mitochondrial DNA replication origin, thus it was proposed to generate the primer for mtDNA replication. Recently, it has been shown to have another substrate in the nucleus, such as pre-S.8S ribosomal RNA in nucleolus. The gene for the RNA component of RNase MRP (MRP RNA) was found to be encoded by the nucleus genome, suggesting an interesting intracellular trafficking of MRP RNA to both mitochondria and nucleolus after transcription in nucleus. In this study, genomic DNA encoding MRP RNA was microinjected into the nucleus of Xenopus oocytes, to analyze promoter regions involved in the transcription. It showed that the proximal sequence element and TATA box are important for basal level transcription; octamer motif and Sp1 binding sites are for elevated level transcription. Most of Xenopus MRP RNA was exported out to the cytoplasm following transcription in the nucleus. Utilizing various hybrid constructs, export of MRP RNA was found to be regulated by the promoter and the 5' half of the coding region of the gene. Interestingly, the transcription in nucleus seems to be coupled to the export of MRP RNA to cytoplasm. Intracellular transport of injected MRP RNA can be easily visualized by whole-mount in situ hybridization following microinjection; it also shows possible intra-nuclear sites for transcription and export of MRP RNA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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