Seo, Hak Soo;Li, Jinjie;Lee, Sun-Young;Yu, Jae-Woong;Kim, Kil-Hyun;Lee, Suk-Ha;Lee, In-Jung;Paek, Nam-Chon
Molecules and Cells
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v.24
no.2
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pp.185-193
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2007
Symbiotic nitrogen fixation with nitrogen-fixing bacteria in the root nodules is a distinctly beneficial metabolic process in legume plants. Legumes control the nodule number and nodulation zone through a systemic negative regulatory system between shoot and root. Mutation in the soybean NTS gene encoding GmNARK, a CLAVATA1-like serine/threonine receptor-like kinase, causes excessive nodule development called hypernodulation. To examine the effect of nts mutation on the gene expression profile in the leaves, suppression subtractive hybridization was performed with the trifoliate leaves of nts mutant 'SS2-2' and the wild-type (WT) parent 'Sinpaldalkong2', and 75 EST clones that were highly expressed in the leaves of the SS2-2 mutant were identified. Interestingly, the expression of jasmonate (JA)-responsive genes such as vspA, vspB, and Lox2 were upregulated, whereas that of a salicylate-responsive gene PR1a was suppressed in the SS2-2 mutant. In addition, the level of JA was about two-fold higher in the leaves of the SS2-2 mutant than in those of the WT under natural growth conditions. Moreover, the JA-responsive gene expression persists in the leaves of SS2-2 mutant without rhizobia infection in the roots. Taken together, our results suggest that the nts mutation increases JA synthesis in mature leaves and consequently leads to constitutive expression of JA-responsive genes which is irrelevant to hypernodulation in the root.
The Streptomyces peucetius OIM (Overproducing Industrial Mutant) strain is a recursively-mutated and optimally-screened strain used for the industrial production of polyketide antibiotics, such as doxorubicin (DXR). Using the S. peucetius OIM mutant strain as a surrogate host, a model minimal polyketide pathway for aloesaponarin II, an actinorhodin shunt product, was cloned in a high-copy conjugative plasmid, followed by functional pathway expression and quantitative metabolite analysis. The level of aloesaponarin II production was noted as being significantly higher in the OIM strain than in the wild-type S. peucetius, as well as in the regulatory network-stimulated S. coelicolor mutant strain. Moreover, the aloesaponarin II production level was seen to be even higher in a down-regulator $wblA_{spe}$-deleted S. peucetius OIM strain, implying that the rationally-engineered S. peucetius OIM mutant strain could be used as an efficient surrogate host for the high expression of foreign polyketide pathways.
Production of eight avermectin components was improved in Streptomyces avermitilis wild type strain (ATCC31267) and high producing mutant strain (ATCC31780) when transformed with a foreign regulatory gene, afsR2 of Streptomyces lividans. Wild type and the high producing strain of S. avermitilis transformed with multiple copies of afsR2 improved total avermectin productions by 2.3 fold and 1.5 fold, respectively. In both of wild type and the high producing transformants carrying afsR2, glycerol was proved to be the best carbon source for the stimulation of avermectin production.
Our previous report demonstrated that the rhp51$^+$, a recA and RAD51 homolog of the fission yeast, encodes three transcripts of 1.9, 1.6 and 1.3 kb which have at least six polyadenylation sites. The 3'-end of the gene alone can direct the formation of multiple, discrete 3'ends of the transcripts. To identify the regulatory element required for the 3'-end formation of -rhp51$^+$ deletion mapping analysis was performed. Northern blot analysis revealed that the 254-bp DNA fragment including 4 distinct poly (A) sites downstream from the Hindlll site, is crucial for normal 3'-end formation. Deletion of the 3'-terminal AU rich region caused appearance of read-through RNA, leading to enhancement of survival rate of the rhp51 deletion mutant in response to DNA damaging agent, methylmethane sulfonate (MMS). The results imply that the rhp51$^+$ system may be useful for molecular analysis of the 3'-end formation of RNA in the fission yeast.
T cell receptor (TCR) signaling plays a critical role in T cell development, survival and differentiation. In the thymus, quantitative and/or qualitative differences in TCR signaling determine the fate of developing thymocytes and lead to positive and negative selection. Recently, it has been suggested that self-reactive T cells, escape from negative selection, should be suppressed in the periphery by regulatory T cells (Tregs) expressing Foxp3 transcription factor. Foxp3 is a master factor that is critical for not only development and survival but also suppressive activity of Treg. However, signals that determine Treg fate are not completely understood. The availability of mutant mice which harbor mutations in TCR signaling mediators will certainly allow to delineate signaling events that control intrathymic (natural) Treg (nTreg) development. Thus, we summarize the recent progress on the role of TCR signaling cascade components in nTreg development from the studies with murine model.
The filamentous soil bacterium Streptomyces coelicolor is known to produce four distinct antibiotics. The simultaneous global regulation for the biosynthesis of those four antibiotics was previously confirmed by absA and absB mutations that blocked all four antibiotics' biosynthesis without influencing their morphological differentiation. To study the complex regulatory cascade that controls the secondary metabolism in Streptomyces, a new abs-like mutation was characterized. namely absR, which is slightly leaky on a complete R2YE medium, yet tight on a minimal medium. A genetic analysis of the absR locus indicated that it is located at 10 o'clock on the genetic map, near the site of absA. A cloned copy of the absA gene that encoded bacterial two-component regulatory kinases did not restore antibiotic biosyntheis to the absR mutant. Accordingly, it is proposed that absR is another abs-type mutation which is less tight than the previously identified absA or absB mutations income medium conditions, and can be used to characterize another global regulatory gene for secondary metabolete formation in S. coelicolor.
JU HYUN-MOK;HWANG IN-GYUN;WOO GUN-JO;KIM TAE SUNG;CHOI SANG HO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.6
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pp.1337-1345
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2005
Vibrio vulnificus is the causative agent of foodborne diseases such as gastroenteritis and life-threatening septicemia. Microbial pathogenicity is a complex phenomenon in which expression of numerous virulence factors is frequently controlled by a common regulatory system. In the present study, a mutant exhibiting decreased cytotoxic activity toward intestinal epithelial cells was screened from a library of V. vulnificus mutants constructed by a random transposon mutagenesis. By a transposon-tagging method, an open reading frame, fexA, a homologue of Escherichia coli areA, was identified and cloned. The nucleotide and deduced amino acid sequences of the fexA were analyzed, and the amino acid sequence of FexA from V. vulnificus was $84\%\;to\;97\%$ similar to those of AreA, an aerobic respiration control global regulator, from other Enterobacteriaceae. Functions of the FexA were assessed by the construction of an isogenic mutant, whose fexA gene was inactivated by allelic exchanges, and by evaluating its phenotype changes in vitro and in mice. The disruption of fexA resulted in a significant alteration in growth rate under aerobic as well as anaerobic conditions. When compared to the wild-type, the fexA mutant exhibited a substantial decrease in motility and cytotoxicity toward intestinal epithelial cell lines in vitro. Furthermore, the intraperitoneal $LD_{50}$ of the fexA mutant was approximately $10^{1}-10^{2}$ times higher than that of parental wild-type. Therefore, it appears that FexA is a novel global regulator controlling numerous genes and contributing to the pathogenesis as well as growth of V. vulnificus.
While the underlying molecular mechanism remains to be elucidated, recent studies suggest that polar auxin transport is a key controlling factor in triggering differential growth responses to gravity. Identification of regulatory components in auxin-mediated differential cell expansion would improve our understanding of the gravitropic response. In this study, we identify a mutant designated aux1-like(later changed to aux1), an allele of the aux1 mutant that exhibits a severely disrupted root gravitropic response, but no defects in developmental processes. In Arabidopsis, AUX1 encodes an auxin influx carrier. Since in-depth characterization of the gravitropic response caused by mutations in this gene has been performed previously, we focused on identifying the downstream genes that were differentially expressed compared to wild-type plants. Consistent with the mutant phenotype, the transcription of the auxin-responsive genes IAA17 and GH3 were altered in aux1 plants treated with IAA, 2, 4-D and NAA. In addition, we identified two expansin genes EXP10 and EXPL3 that exhibited different expression in wild-type and mutant plants.
Purpose: $HCO_3{^-}$ is the most important ion to buffer the acidity of saliva. The transport of $HCO_3{^-}$ is mediated by electrogenic $Na^+/HCO_3{^-}$ cotransporter 1 (NBCe1), which expressed in various tissues including salivary glands, kidney and pancreas, etc. This experiment was performed to investigate regulatory site of NBCe1involved in the pH regulation using various mutants of NBCe1. Materials and Methods: Human parotid gland NBCe1 (hpNBCe1) and mutants by deletion of 1~285 bp and 1~1,035 bp were prepared. After microinjection of each cRNA to oocytes of Xenopus laevis, they were incubated for 2~3 days. The function of each protein was tested by electrophysiological method. Results: When oocytes were exposed to the $HCO_3{^-}$ buffered solution, 1~285 bp deleted mutant hpNBCe1 evoked a marked hyperpolarization ranging from -90 mV to -160 mV (average: -134 mV; n=12) compared to the full length of hpNBCe1. Although 1~1,035 bp deleted mutant hpNBCe1 was also expressed in the plasma membrane, but it did not show any changes of membrane potentials. Conclusion: Our deletion mutant study demonstrated that 1~285 bp of the NBCe1 is the major domain to determine $HCO_3{^-}$ transport ratio.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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