Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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2002.10a
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pp.27-30
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2002
Ralstonia eutrupha JMP134 is a well-known soil bacterium which can metabolite diverse aromatic compounds and xenobiotics, such as phenol, 2,4-dichlorophenoxy acetic acid (2, 4-D), and trichloroethylene (TCE), etc. Phenol is degraded through chromosomally encoded phenol degradation pathway. Phenol is first metabolized into catechol by a multicomponent phenol hydroxylase, which is further metabolized to TCA cycle intermediates via a meta-cleavage pathway. The nucleotide sequences of the genes for the phenol hydroxylase have previously been determined, and found to composed of eight genes phlKLMNOPRX in an operon structure. The phlR, whose gene product is a NtrC-like transcriptional activator, was found to be located at the internal region of the structural genes, which is not the case in most bacteria where the regulatory genes lie near the structural genes. In addition to this regulatory gene, we found other regulatory genes, the phlA and phlR2, downstream of the phlX. These genes were found to be overlapped and hence likely to be co-transcribed. The protein similarity analysis has revealed that the PhlA belongs to the GntR family, which are known to be negative regulators, whereas the PhlR2 shares high homology with the NtrC-type family of transcriptional activators like the PhlR. Disruption of the phlA by insertional mutation has led to the constitutive expression of the activity of phenol hydroxylase in JMP134, indicating that PhlA is a negative regulator. Possible regulatory mechanisms of phenol metabolism in R. eutropha JMP134 has been discussed.
Many aspergilli that belongs to ascomycetes have sexuality. In a homothallic or self-fertile fungus, a number of fruiting bodies or cleistothecia are formed in a thallus grown from a single haploid conidia or ascospores. Genome-sequencing project revealed that two mating genes (MAT) encoding the regulatory proteins that are necessary for controlling partner recognition in heterothallic fungi were conserved in most aspergilli. The MAT gene products in some self-fertile species were not required for recognition of mating partner at pheromone-signaling stage but required at later stages of sexual development. Various environmental factors such as nutritional status, culture conditions and several stresses, influence the decision or progression of sexual reproduction. A large number of genes are expected to be involved in sexual development of Emericella nidulans (anamorph: Aspergillus nidulans), a genetic and biological model organism in aspergilli. The sexual development process can be grouped into several development stages, including the decision of sexual reproductive cycle, mating process, growth of fruiting body, karyogamy followed by meiosis, and sporulation process. Complicated regulatory networks, such as signal transduction pathways and gene expression controls, may work in each stage and stage-to-stage linkages. In this review, the components joining in the regulatory pathways of sexual development, although they constitute only a small part of the whole regulatory networks, are briefly mentioned. Some of them control sexual development positively and some do negatively. Regarding the difficulties for studying sexual differentiation compare to asexual one, recent progresses in molecular genetics of E. nidulans enlarge the boundaries of understanding sexual development in the non-fertile species as well as in fertile fungi.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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2004.06a
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pp.236-241
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2004
In Escherichia coli, L-lysine biosynthetic pathway is composed of nine enzymatic reactions. It has been well established that most of the lysine biosynthetic genes are regulated by the lysine availability, even though they are all scattered around the chromosome without forming any multigenic operon structure. However, no transcriptional regulatory mechanism has been identified except for the activation of lysA gene by the LysR. In this study, changes in transcriptome profiles of wild type cells and lysR deletion mutant cells grown in the absence or presence of lysine were investigated by using DNA microarray technique. Microarray data analysis revealed three groups of genes whose expression varies depending on the availability of lysine or LysR or both. To further examine the regulatory patterns of lysine biosynthetic genes, lacZ operon fusions were constructed and their expression was measured under various conditions. Obtained results strongly suggest that there is an additional regulatory mechanism which senses the lysine availability and coordinates gene expression.
Escherichia coli has a PhoR-PhoB two-component regulatory system to detect and respond to the changes of environmental phosphate concentration. For the E. coli W3110 strain growing under phosphate-limiting condition, the changes of global gene expression levels were investigated by using DNA microarray analysis. The expression levels of some genes that are involved in phosphate metabolism were increased as phosphate became limited, whereas those of the genes involved in ribosomal protein or amino acid metabolism were decreased, owing to the stationary phase response. The upregulated genes could be divided into temporarily and permanently inducible genes by phosphate starvation. At the peak point showing the highest expression levels of the phoB and phoR genes under phosphate-limiting condition, the phoB- and/or phoR-dependent regulatory mechanisms were investigated in detail by comparing the gene expression levels among the wild-type and phoB and/or phoR mutant strains. Overall, the phoB mutation was epistatic over the phoR mutation. It was found that PhoBR and PhoB were responsible for the upregulation of the phosphonate or glycerol phosphate metabolism and high-affinity phosphate transport system, respectively. These results show the complex regulation by the PhoR-PhoB two-component regulatory system in E. coli.
The Vibrio vulnificus vuuA gene, of which expression is repressed by a complex of iron and ferric uptake regulator (Fur), was characterized to localize the Fur-binding site in its upstream regulatory region. In silico analysis suggested the presence of two possible Fur-binding sites; one is a classical Fur-box and the other is a previously reported distinct Fur-binding site. Site-directed mutagenesis and DNase I protection assays revealed the binding site for the iron-Fur complex, which includes an extended inverted repeat containing a homologous sequence to the classical Fur-box.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1996.07a
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pp.4-9
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1996
The majority of plants sense environmental signals, such as day length or temperature, to select their transition timing from vegetative growth t flowering. Here, we report the identification of a regulatory gene, OsMADS1, that controls the photoperiod sensitivity of flowering time. Constitutive expression of OsMADS1 in a long-day flowering plant, Nicotiana sylvestris, resulted in flowering in both short-day long-day conditions. Similarly, ectopic expression of the gene in a short-day flowering plant, N. tabacum cv. Maryland Mammoth, also induced flowering regardless of the day length. The transition time was dependent on the level of the OsMADS1 transcript in transgenic plants. These suggest that OsMADS1 is a key regulatory factor that determines the transition from shoot apex to floral meristem and that it can be used for controlling flowering time in a variety of plant species.
The Saccharomyces cerevisiae MGMT gene encodes a O6-methylguanine DNA methyltransferase that protects cells from mutation or death by DNA alkylating agents. Using an in vitro transcription system, we analyzed its promoter region to find regulatory elements for transcription initiation. DNase I footprinting and a transcription assay showed that a functional TATA box, 5'-TGATATAGCA-3', is located in the region spanning from -25 to -34. We also found one upstream repressing sequence (URS), -333 to -213, by promoter deletion and competition analysis. Gel mobility shift assays and Southwestern blot analysis using URS region indicate specific complex formations. These results indicate that several cis-acting and trans-acting elements might be involved in the transcriptional regulation of the S. cerevisiae MGMT gene.
We identified differentially expressed genes in RAW264.7 cells in response to single and double ligand treatments (LPS, $IFN{\gamma}$, 2MA, LPS plus $IFN{\gamma}$, and LPS plus 2MA). The majority of the regulated transcripts responded additively to dual ligand treatment. However, a significant fraction responded in a non-additive fashion. Several cytokines showing non-additive transcriptional responses to dual ligand treatment also showed non-additive protein production/secretion responses in separately performed experiments. Many of the genes with non-additive responses to LPS plus 2MA showed enhanced responses and encoded pro-inflammatory proteins. LPS plus $IFN{\gamma}$ appeared to induce both non-additive enhancement and non-additive attenuation of gene expression. The affected genes were associated with a variety of biological functions. These experiments reveal both dependent and independent regulatory pathways and point out the specific nature of the regulatory interactions.
This research was conducted to identify plant regulatory regions by gene tagging method. A promoterless GUS coding sequence was introduced to Populus nigra ${\times}$ P. maximowiczii via Agrobacterium strains(LBA4404/EHA101), and putative transgenic poplars were selected by culturing on medium containing G418($60mg/{\ell}$) and by GUS assay. Among them one positive plant was to amplify the native sequences flanking to the introduced GUS gene in plant genome by inverse PCR method and from this 730 by DNA product was obtained. After subcloning and sequencing, it has 88% homology to the Eucalyptus gunnii CAD(cinnamyl alcohol dehydrogenase) gene. The GUS gene fused with the putative promoter reinserted into poplar leaves by particle bombardment method to test the funtional promoter activity. Upon staining with X-gluc, many blue spots appeared on the leaf segments bombarded by the chimeric gene 2-3 days, thus the isolated DNA fragment contain some possible coding region as well as a putative regulatory sequences of poplar CAD gene.
OsMADS1 is a rice MADS box gene necessary for floral development. To identify the key cis-regulatory regions for its expression, we utilized transgenic rice plants expressing GUS fusion constructs. Histochemical analysis revealed that the 5.7-kb OsMADS1 intragenic sequences, encompassing exon 1, intron 1, and a part of exon 2, together with the 1.9-kb 5' upstream promoter region, are required for the GUS expression pattern that coincides with flower-preferential expression of OsMADS1. In contrast, the 5' upstream promoter sequence lacking this intragenic region caused ectopic expression of the reporter gene in both vegetative and reproductive tissues. Notably, incorporation of the intragenic region into the CaMV35S promoter directed the GUS expression pattern similar to that of the endogenous spatial expression of OsMADS1 in flowers. In addition, our transient gene expression assay revealed that the large first intron following the CaMV35S minimal promoter enhances flower-preferential expression of GUS. These results suggest that the OsMADS1 intragenic sequence, largely intron 1, contains a key regulatory region(s) essential for expression.
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